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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFECTO IN VITRO DEL LITIO SOBRE LA EXCITABILIDAD DE LA PREPARACIÓN FRÉNICO-DIAFRAGMA DE RATA Y SU RELACIÓN CON EL TEMBLOR]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[IN VITRO EFFECT OF LITHIUM ON THE EXCITABILITY OF A RAT PHRENIC NERVE-DIAPHRAGM MODEL AND ITS RELATION WITH TREMOR]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[One of the most common adverse effects detected with the use of lithium in clinical practice is tremor. Currently the explanation for this phenomenon is incomplete; therefore, its treatment is difficult. This study evaluated the lithium's effect on neuromuscular junction excitability using an in vitro preparation. In order to investigate a peripheral mechanism that could explain lithium induced tremor. The in vitro rat phrenic nerve-diaphragm preparation was exposed to increasing concentrations of Lithium (0,25 - 8 mmol/l). The preparation excitability was assessed under direct and indirect stimulation by measuring both the minimal stimulating frequency necessary to achieve a completely fused tetanus and the minimal stimulating voltage necessary to achieve a regular contractile response. We also looked for spontaneous contractile activity. Finally, nonparametric tests were used to detect differences between control and lithium groups. An increase on the minimal frequency necessary to achieve a completely fused tetanus compared with control was detected under direct stimulation (p=0,000) and under indirect stimulation (p=0,014). We did not detect a significant change on the minimal voltage necessary to achieve a regular contractile response nor a spontaneous activity in the preparation. In our experimental model Lithium does not increase the excitability of the neuromuscular phrenic nerve-diaphragm preparation; therefore, it does not predispose to tremor development. In view of our finding, our study suggests that lithium tremor is not caused by a peripheral mechanism of action of the drug.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	<font face="verdana" size="2"> 	    <p align="right"><b>ART&Iacute;CULO</b></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>EFECTO IN VITRO DEL LITIO SOBRE LA EXCITABILIDAD DE LA PREPARACI&Oacute;N FR&Eacute;NICO-DIAFRAGMA DE RATA Y SU RELACI&Oacute;N CON EL TEMBLOR</b>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>IN VITRO EFFECT OF LITHIUM ON THE EXCITABILITY OF A RAT PHRENIC NERVE-DIAPHRAGM  MODEL AND ITS RELATION WITH TREMOR</b>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">DAR&Iacute;O FERNANDO RIASCOS BERNAL<sup><b>a</b></sup>, HENRY ADOLFO ACEROS MU&Ntilde;OZ<sup><b>a</b></sup>*, ALEJANDRO OSSA E.<sup><b>b</b></sup>, GABRIEL PASCUAL AMAYA<sup><b>a</b></sup>, ESPERANZA HOLGU&Iacute;N HERN&Aacute;NDEZ<sup><b>a</b></sup> Y ARMANDO S&Aacute;NCHEZ GODOY<sup><b>a, c</b></sup> </p>      <br> Recibido:  Noviembre 9 de 2006. Aceptado: Diciembre 18 de 2006.     <p><sup><b>a</b></sup> Departamento de Ciencias Fisiol&oacute;gicas, Facultad de Medicina, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D. C.     <br> <sup><b>b</b></sup> Mayo Clinic, Rochester, Minnesota.     <br> <sup><b>c</b></sup> Facultad de Medicina, Universidad Militar Nueva Granada.      <p>* Correspondencia: <a href="haceros@javeriana.edu.co"/a>haceros@javeriana.edu.co</a>. Direcci&oacute;n postal: Departamento de Ciencias Fisiol&oacute;gicas, Facultad de Medicina, Pontificia Universidad Javeriana, Carrera 7 # 40-62  Edificio No. 31  Rafael Barrientos Conto, primer piso. Bogot&aacute;, D.C., Colombia.  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br><b>Resumen</b></p>     <p>En la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica un com&uacute;n efecto adverso del litio es la aparici&oacute;n de temblor en reposo. Actualmente no existe una explicaci&oacute;n satisfactoria de este fen&oacute;meno, por lo que se dificulta su manejo. El objetivo del presente estudio fue determinar el efecto del litio sobre la excitabilidad de la uni&oacute;n neuromuscular en una preparaci&oacute;n in vitro, con el fin de dilucidar un mecanismo perif&eacute;rico que contribuya al entendimiento de la etiolog&iacute;a del temblor inducido por litio. Para ello se expuso la preparaci&oacute;n fr&eacute;nico diafragma de rata a concentraciones ascendentes de litio (0,25 mmol/l a 8 mmol/l). La preparaci&oacute;n se someti&oacute; a estimulo directo e indirecto y se midieron, como indicadores de excitabilidad, la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para desencadenar un t&eacute;tanos perfecto, el voltaje m&iacute;nimo necesario para generar una respuesta regular y la presencia de actividad espont&aacute;nea de la preparaci&oacute;n. El grupo control se someti&oacute; al mismo tiempo y protocolo de estimulaci&oacute;n en ausencia de litio. Se utilizaron pruebas no param&eacute;tricas para evidenciar diferencias significativas. Se observ&oacute; un aumento en la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para desencadenar un t&eacute;tanos perfecto, comparada con el control, tanto con estimulaci&oacute;n directa (p=0) como indirecta (p=0,014); no se observ&oacute; un cambio significativo en el voltaje m&iacute;nimo necesario para generar una respuesta regular, ni se observ&oacute; actividad espont&aacute;nea en la preparaci&oacute;n. Los resultados nos permitieron concluir que el litio no aumenta la excitabilidad de la preparaci&oacute;n neuromuscular in vitro y, por lo tanto, no predispone a la aparici&oacute;n de temblor, lo cual sugiere que el temblor no se explica por un mecanismo perif&eacute;rico.     <p><b>Palabras clave</b>:  litio, reacciones adversas, temblor, uni&oacute;n neuromuscular, m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, preparaci&oacute;n neuromuscular.  <hr>      <p><b>Abstract</b></p>  One of the most common adverse effects detected with the use of lithium in clinical practice is tremor. Currently the explanation for this phenomenon is incomplete; therefore, its treatment is difficult. This study evaluated the lithium's effect on neuromuscular junction excitability using an in vitro preparation. In order to investigate a peripheral mechanism that could explain lithium induced tremor. The in vitro rat phrenic nerve-diaphragm preparation was exposed to increasing concentrations of Lithium (0,25 - 8 mmol/l). The preparation excitability was assessed under direct and indirect stimulation by measuring both the minimal stimulating frequency necessary to achieve a completely fused tetanus and the minimal stimulating voltage necessary to achieve a regular contractile response. We also looked for spontaneous contractile activity. Finally, nonparametric tests were used to detect differences between control and lithium groups. An increase on the minimal frequency necessary to achieve a completely fused tetanus compared with control was detected under direct stimulation (p=0,000) and under indirect stimulation (p=0,014). We did not detect a significant change on the minimal voltage necessary to achieve a regular contractile response nor a spontaneous activity in the preparation. In our experimental model Lithium does not increase the excitability of the neuromuscular phrenic nerve-diaphragm preparation; therefore, it does not predispose to tremor development. In view of our finding, our study suggests that lithium tremor is not caused by a peripheral mechanism of action of the drug.      <p><b>Key words</b>: lithium, adverse effects, tremor, neuromuscular junction, skeletal muscle, nerve muscle preparation.  <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p>El litio, un f&aacute;rmaco que actualmente se prescribe con frecuencia, es de elecci&oacute;n para el manejo del trastorno afectivo bipolar (1-4),  tambi&eacute;n es efectivo en el tratamiento de la depresi&oacute;n (5), especialmente en la resistente al tratamiento (6) y  su eficacia est&aacute; bien demostrada en la terap&eacute;utica a corto plazo de la man&iacute;a (3). Sin embargo, la mayor&iacute;a de pacientes presentan efectos adversos o t&oacute;xicos, reflejando su estrecho &iacute;ndice  terap&eacute;utico (7). El temblor es uno de los inconvenientes m&aacute;s molestos y frecuentes en los pacientes que lo reciben, no siendo necesario que las concentraciones de litio sean t&oacute;xicas para que este efecto se presente, pues se ha demostrado que pacientes con temblor inducido por litio presentan niveles s&eacute;ricos adecuados.      <p>El temblor inducido por litio es  irregular, no r&iacute;tmico, de la porci&oacute;n distal de las extremidades, variable en intensidad y en frecuencia  y puede presentarse tanto en reposo como en movimiento (aunque puede exacerbarse con la ejecuci&oacute;n de movimientos finos de las manos) (8). Hallett clasific&oacute; el temblor producido por litio como postural y lo defini&oacute; como un temblor fisiol&oacute;gico exagerado, con una frecuencia entre 8 y 12 Hz (9). Este temblor  puede empeorar o generalizarse,  a medida que la concentraci&oacute;n s&eacute;rica de litio se acerca a niveles t&oacute;xicos.     <p>La incidencia del temblor inducido por litio varia entre un 4% y un 65% en trece estudios analizados, con una muestra total de pacientes superior a mil y un porcentaje promedio del 26% (9). Es un  temblor que  no responde a L-dopa o a agentes anticolin&eacute;rgicos de acci&oacute;n central (10) y algunos estudios han sugerido que aunque los betabloqueadores pueden ser &uacute;tiles, sus efectos colaterales limitan su uso (11, 12). La vitamina B6 puede ser una alternativa que hasta ahora se ha evaluado en estudios preliminares (13).      <p>A pesar de la importancia y de la incidencia del temblor durante la terapia con litio, los mecanismos de acci&oacute;n que explican este fen&oacute;meno no son claros, hecho que dificulta su manejo. Y aunque existen estudios preliminares que sugieren una asociaci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de litio cerebral y el temblor en manos (14), la ausencia de estudios en tejidos perif&eacute;ricos no permite confirmar o descartar a&uacute;n,  un mecanismo perif&eacute;rico de manera conclusiva.      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El objetivo de este estudio fue determinar el efecto del litio sobre la excitabilidad de la uni&oacute;n  neuromuscular y la contracci&oacute;n del m&uacute;sculo estriado esquel&eacute;tico en una preparaci&oacute;n neuromuscular de rata in vitro, con el fin de dilucidar un posible mecanismo perif&eacute;rico que pueda contribuir al entendimiento de la etiolog&iacute;a del temblor inducido por este f&aacute;rmaco.      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p>Previa autorizaci&oacute;n del comit&eacute; de investigaci&oacute;n y &eacute;tica de la Facultad de Medicina de la Pontificia Universidad Javeriana, veinte ratas Wistar, machos, con un peso entre 250 y 400 g, se dividieron en cuatro grupos: grupo de estudio con estimulaci&oacute;n indirecta, grupo de estudio con estimulaci&oacute;n directa, grupo control con estimulaci&oacute;n indirecta y grupo control con estimulaci&oacute;n directa.  De cada animal experimental se obtuvo, seg&uacute;n el procedimiento descrito por Bulbring (15) el hemidiafragma y fr&eacute;nico izquierdos.  Cada preparaci&oacute;n fr&eacute;nico-diafragma in vitro se someti&oacute;  a siete diferentes concentraciones de litio en mmol/l (0; 0,25; 0,5; 1; 2; 4 y 8) en el grupo de estudio, o a siete ensayos sin litio en el grupo control, bajo el mismo protocolo de tiempo y estimulaci&oacute;n. Para evaluar la excitabilidad neuromuscular en cada concentraci&oacute;n de litio o ensayo se registraron por lo menos seis veces cada una de las variables dependientes: voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario para desencadenar una actividad contr&aacute;ctil regular (definido por la observaci&oacute;n de al menos tres contracciones consecutivas) y la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para desencadenar un t&eacute;tanos perfecto.         <p>Preparaci&oacute;n fr&eacute;nico-diafragma      <p>Ratas Wistar machos (250 a 400 g) se sedaron y decapitaron r&aacute;pidamente.  La preparaci&oacute;n fr&eacute;nico diafragma se aisl&oacute; de acuerdo con la t&eacute;cnica descrita por Bulbring (15) y  se coloc&oacute; en una c&aacute;mara para &oacute;rgano aislado de 50 ml que conten&iacute;a una soluci&oacute;n de Tyrode  a 37 °C y  pH fisiol&oacute;gico, verificado con un medidor de pH port&aacute;til Thermo Orion modelo 290A Plus.  La composici&oacute;n de la soluci&oacute;n de Tyrode en mmol/l fue  la siguiente: NaCl 145,42; KCl  2,68; CaCl<sub>2</sub> 1,8; NaHCO<sub>3</sub> 11,9; MgCl<sub>2</sub> 0,105; NaH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 0,416; D-glucosa 5,55. La soluci&oacute;n se oxigen&oacute; de manera continua.      <p>Estudio del voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario para obtener una serie de contracciones continuas y regulares      <p>La preparaci&oacute;n de hemidiafragma se estimul&oacute; a trav&eacute;s de un electrodo con punta de plata, directa o indirectamente (a trav&eacute;s del nervio fr&eacute;nico), utilizando un  estimulador Grass S44. Las contracciones isot&oacute;nicas del hemidiafragma, obtenidas tanto por est&iacute;mulo directo como indirecto, se registraron por un transductor de tensi&oacute;n Grass FT 03C, conectado a un pol&iacute;grafo Grass 7D y transmitidas a  un pol&iacute;grafo digital AD Instruments Power Lab/800, software Chart 4 para Windows. Cada preparaci&oacute;n se mantuvo de manera rutinaria durante 20 minutos en el ba&ntilde;o antes de iniciar los experimentos, bajo un est&iacute;mulo de 5 V de intensidad, 2 minutos de duraci&oacute;n y frecuencia de 0,1 Hz con estimulaci&oacute;n directa, o bajo un est&iacute;mulo de 1 V de intensidad, 2 minutos de duraci&oacute;n y frecuencia de 0,1 Hz con estimulaci&oacute;n indirecta. Durante este lapso la preparaci&oacute;n se lav&oacute; varias veces, hasta obtener una estabilidad que permitiese ajustar la sensibilidad del preamplificador y amplificador del pol&iacute;grafo. Una vez estable la preparaci&oacute;n, se estimul&oacute; el m&uacute;sculo (estimulaci&oacute;n directa) o el nervio fr&eacute;nico (estimulaci&oacute;n indirecta) con pulsos de 2 minutos de duraci&oacute;n, frecuencia de 1 Hz e intensidad progresiva partiendo de un voltaje de est&iacute;mulo que no produce respuesta, hasta obtener una respuesta contr&aacute;ctil regular. Se registr&oacute; el voltaje en milivoltios que inici&oacute; la respuesta mec&aacute;nica regular.      <p>En los grupos de estudio, este protocolo de estimulaci&oacute;n se realiz&oacute; en presencia de las  concentraciones de litio ya anotadas. La actividad contr&aacute;ctil se registr&oacute; quince minutos despu&eacute;s de agregar cada concentraci&oacute;n a la preparaci&oacute;n; no se utiliz&oacute; un mayor n&uacute;mero de concentraciones  con el fin de minimizar la degradaci&oacute;n tiempo dependiente de la preparaci&oacute;n.  En los grupos control el protocolo de estimulaci&oacute;n se repiti&oacute; el mismo n&uacute;mero de veces y durante el mismo tiempo que en el grupo de estudio,  pero en ausencia de litio.      <p>Estudio de la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para producir un t&eacute;tanos perfecto      <p>La preparaci&oacute;n se estabiliz&oacute; como se explic&oacute; en el punto anterior. Una vez estuvo estable,  se estimul&oacute; con pulsos de 5 V de intensidad y 2 minutos de duraci&oacute;n en el grupo de estimulaci&oacute;n directa,  o con pulsos de 1 V de intensidad y 2 minutos de duraci&oacute;n en el grupo de estimulaci&oacute;n indirecta, aumentando de manera progresiva la frecuencia de est&iacute;mulo desde 1 Hz hasta una frecuencia que produjese un t&eacute;tanos perfecto. La frecuencia que produjo t&eacute;tanos perfecto se registr&oacute;. En los grupos de estudio este protocolo de estimulaci&oacute;n se realiz&oacute; en presencia de las concentraciones de litio ya anotadas.  La actividad contr&aacute;ctil se registr&oacute; quince minutos despu&eacute;s de agregar cada concentraci&oacute;n a la preparaci&oacute;n. No se utiliz&oacute; un mayor n&uacute;mero de concentraciones  con el fin de minimizar la degradaci&oacute;n tiempo dependiente de la preparaci&oacute;n. En los grupos control el protocolo de estimulaci&oacute;n se repiti&oacute; el mismo n&uacute;mero de veces y durante el mismo tiempo que en el grupo de estudio, pero en ausencia de litio.      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la preparaci&oacute;n de las soluciones se utilizaron los siguientes elementos: cloruro de litio puro (PRS Panreac), cloruro de sodio (MERCK), cloruro de calcio. 2H<sub>2</sub>0 (MERCK), cloruro de magnesio (MERCK), cloruro de potasio (MERCK), D(+)-glucosa monohidratada (MERCK), fosfato monob&aacute;sico de sodio. 2H<sub>2</sub>0 (SIGMA) y bicarbonato de sodio (SIGMA).      <p>An&aacute;lisis estad&iacute;stico:      <p>Se digitaron los datos de voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario y frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para producir un t&eacute;tanos perfecto, contra las diferentes concentraciones de litio en una hoja de c&aacute;lculo de Excel, tanto con estimulaci&oacute;n directa como indirecta, de los grupos de estudio y  control. Se calcularon los porcentajes de cambio de las dos variables dependientes en los grupos de estudio y control,  tomando como referencia los datos obtenidos en la concentraci&oacute;n cero (0 meq/l) en el grupo de estudio,  o los datos obtenidos en el ensayo uno en el grupo control. Se realiz&oacute; la comparaci&oacute;n del porcentaje de cambio de las dos variables entre el grupo de estudio y el grupo control,  tanto con estimulaci&oacute;n directa como indirecta, mediante un an&aacute;lisis no param&eacute;trico de mediciones repetidas Kruskal Wallis; una comparaci&oacute;n del porcentaje de cambio entre dos concentraciones de litio en el grupo de estudio o dos ensayos en grupo control y,  entre una concentraci&oacute;n de litio y el ensayo control correspondiente mediante el an&aacute;lisis no param&eacute;trico entre dos muestras Mann Whitney.  Se acept&oacute; una diferencia con una significancia del 95% (p<0,05).      <p><b>Resultados</b></p>      <p>Los porcentajes de cambio en las dos variables dependientes analizadas en cada concentraci&oacute;n de litio y su control correspondiente, tanto con estimulaci&oacute;n directa como indirecta,  se muestran en las tablas <a href="#tab1">1</a> y <a href="#tab2">2</a>.      <p>    <center><a name= "tab1"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03T01.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>    <center><a name= "tab2"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03T02.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>Bajo estimulaci&oacute;n indirecta      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En las preparaciones tratadas con litio, a medida que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n, se observ&oacute; un aumento significativo de la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para alcanzar un t&eacute;tanos perfecto (p=0,017), este aumento no se observ&oacute; en el grupo control; la diferencia entre el grupo de tratamiento y control fue significativa (p=0,014).  Al comparar cada concentraci&oacute;n de litio con el control correspondiente, el aumento de la frecuencia de est&iacute;mulo se hizo significativo en las concentraciones de 4 mmol/l (p=0,008) y 8 mmol/l (p=0,008) (<a href="#fig1">Figura 1</a>). No hubo un cambio significativo del voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil regular, al analizar el porcentaje de cambio en el grupo de tratamiento, ni en el grupo control, ni al comparar cada concentraci&oacute;n de litio con su control correspondiente (<a href="#fig2">Figura 2</a>).      <p>    <center><a name= "fig1"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F01.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>    <center><a name= "fig2"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F02.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>Bajo estimulaci&oacute;n directa     <p>En las preparaciones tratadas con litio, a medida que se increment&oacute; la concentraci&oacute;n, se observ&oacute; un aumento significativo de la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para alcanzar un t&eacute;tanos perfecto  (p=0,001), este aumento no se observ&oacute; en el grupo control; la diferencia entre el grupo de tratamiento y control fue significativa (p=0). Sin embargo, al comparar cada concentraci&oacute;n con su control correspondiente,  s&oacute;lo la concentraci&oacute;n de 0,25 mmol/l  alcanz&oacute; una significancia aceptable (p=0,008) (<a href="#fig3">Figura 3</a>). No hubo un cambio significativo del voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil regular bajo estimulaci&oacute;n directa,  al analizar su porcentaje de cambio en el grupo de tratamiento, en el grupo control, ni al comparar cada concentraci&oacute;n de litio con su control correspondiente (<a href="#fig4">Figura 4</a>).      <p>    <center><a name= "fig3"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F03.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name= "fig4"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F04.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>Comparaci&oacute;n entre est&iacute;mulo directo e indirecto     <p>El aumento de la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para producir un t&eacute;tanos perfecto en presencia de litio fue progresivamente mayor con la estimulaci&oacute;n indirecta que con la estimulaci&oacute;n directa,  despu&eacute;s de analizar sus porcentajes de cambio; esta diferencia se hace significativa con la concentraci&oacute;n de 8 mmol/l (p=0,016) (<a href="#fig5">Figura 5</a>). No se observ&oacute; una diferencia significativa en el porcentaje de cambio del voltaje de est&iacute;mulo m&iacute;nimo necesario para producir una respuesta,  al comparar las preparaciones sometidas a estimulaci&oacute;n directa e indirecta (<a href="#fig6">Figura 6</a>).      <p>    <center><a name= "fig5"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F05.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>    <center><a name= "fig6"><img src="/img/revistas/med/v15n1/v15n1a03F06.gif" border= "0"></a></center></p>      <p>Temblor espont&aacute;neo     <p>En ninguna de las preparaciones del grupo de litio ni en el grupo control se evidenci&oacute; la aparici&oacute;n de actividad muscular identificable como temblor.      <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados de este estudio evidencian un aumento estad&iacute;sticamente significativo en la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para lograr en el m&uacute;sculo un t&eacute;tanos perfecto,  en presencia de litio, tanto con estimulaci&oacute;n directa como indirecta. Por lo tanto, en la  preparaci&oacute;n neuromuscular in vitro, la presencia de litio hace necesario un est&iacute;mulo de mayor frecuencia para lograr una contracci&oacute;n tet&aacute;nica perfecta, lo cual permite inferir que este cati&oacute;n lleva la preparaci&oacute;n a un punto de menor excitabilidad, por lo tanto, la hace menos propensa a desarrollar temblor.  Este efecto es m&aacute;s evidente bajo estimulaci&oacute;n indirecta.      <p>El hallazgo observado podr&iacute;a explicarse por un efecto en cualquier punto de la transmisi&oacute;n neuromuscular.  A nivel presin&aacute;ptico se ha propuesto que el litio tiene un efecto inhibitorio en la amplitud de contracci&oacute;n de una preparaci&oacute;n fr&eacute;nico diafragma de  rata, a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n de canales de potasio dependientes de ATP (K<sub>ATP</sub>) (16); estos canales han sido ampliamente investigados en estudios de fatiga muscular (17). La activaci&oacute;n de estos canales produce un efecto citoprotector al aumentar la conductancia de potasio en la membrana de la c&eacute;lula y, por consiguiente, hiperpolarizan la membrana (18). La salida de potasio acorta la duraci&oacute;n del potencial de acci&oacute;n, hiperpolariza la membrana,  e inhibe la entrada de calcio a trav&eacute;s de canales de calcio dependientes de voltaje (19, 20); la entrada de calcio a trav&eacute;s del axolema es esencial para la liberaci&oacute;n de acetilcolina de la terminal nerviosa (19) cuando se realiza estimulaci&oacute;n indirecta.       <p>En la c&eacute;lula muscular la entrada de calcio activa la liberaci&oacute;n de calcio inducida por calcio desde el ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico (21), la activaci&oacute;n de K(K<sub>ATP</sub>) inducida por litio  en el sarcolema inhibe esta entrada de calcio (20), inhibiendo por lo tanto la contracci&oacute;n muscular originada por estimulo directo (16).  Esta inhibici&oacute;n de la contracci&oacute;n del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de rata inducida directa e indirectamente, a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n de KATP, podr&iacute;a explicar la necesidad de una mayor  frecuencia de estimulaci&oacute;n para lograr un t&eacute;tanos perfecto en presencia de cloruro de litio. Sin embargo, otros estudios han propuesto que el litio puede potenciar la transmisi&oacute;n neuromuscular aumentando la liberaci&oacute;n de acetilcolina (22, 23).      <p>Se observ&oacute; que el cloruro de litio aumenta la amplitud y el contenido de cuantos de acetilcolina de los potenciales de placa terminal evocados (EEPP) registrados en m&uacute;sculo sartorio de rana (23, 24). Se propuso que la habilidad del litio para incrementar los niveles intracelulares de fosfatos de inositol (IP) IP<sub>3</sub> e IP<sub>4</sub> (25, 26) podr&iacute;a explicar este efecto ya que IP<sub>3</sub> e IP<sub>4</sub> aumentan la movilizaci&oacute;n de calcio de dep&oacute;sitos intracelulares y la entrada de calcio a trav&eacute;s de la membrana celular (27), aumentando as&iacute; la liberaci&oacute;n de acetilcolina. De igual forma, en un trabajo con uni&oacute;n neuromuscular de mam&iacute;fero en el que se us&oacute; la frecuencia de los potenciales de placa terminal en miniatura (MEPP) como un &iacute;ndice de la liberaci&oacute;n de acetilcolina (22),  se evidenci&oacute; que el litio aumenta la frecuencia de MEPP al reemplazar sodio por litio, en soluciones libres de calcio en la preparaci&oacute;n neuromuscular de s&oacute;leo de rata. Los iones de litio inhiben la bomba de sodio-potasio (28, 29), la subsiguiente acumulaci&oacute;n de sodio estimula la liberaci&oacute;n de calcio de los dep&oacute;sitos intracelulares, llevando a un aumento de la liberaci&oacute;n del neurotransmisor. Adicionalmente, el litio inhibe el intercambiador Na-Ca. disminuyendo la extrusi&oacute;n de Ca y aumentando la liberaci&oacute;n de acetilcolina (30).     <p>En el presente estudio este efecto del litio que incrementa la liberaci&oacute;n de acetilcolina hubiera permitido alcanzar un t&eacute;tanos perfecto con una menor frecuencia de est&iacute;mulo y requerir un menor voltaje de est&iacute;mulo para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil regular en la preparaci&oacute;n sometida a estimulaci&oacute;n indirecta. Sin embargo, el hallazgo en la frecuencia de estimulaci&oacute;n fue completamente contrario y el voltaje m&iacute;nimo de estimulaci&oacute;n no vari&oacute; de manera significativa con respecto al control.  Entonces, la necesidad de un est&iacute;mulo de mayor frecuencia en presencia de litio se podr&iacute;a explicar por un efecto inhibitorio del litio en un punto distal a la liberaci&oacute;n de la acetilcolina y la generaci&oacute;n del potencial de placa terminal en la transmisi&oacute;n neuromuscular, pero la confirmaci&oacute;n de estas hip&oacute;tesis requiere de modelos experimentales diferentes al presente.     <p>Adicional al ya mencionado efecto inhibitorio del litio sobre la c&eacute;lula muscular mediado por K<sub>ATP</sub> (16), el litio bloquea tambi&eacute;n la enzima inositol monofosfatasa a concentraciones de 0,5-1 mmol/l (31), lo que resulta en una depleci&oacute;n del inositol muscular y en una subsiguiente disminuci&oacute;n en la generaci&oacute;n de IP<sub>3</sub> (31, 32); se conoce que el IP<sub>3</sub> puede liberar calcio desde el ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico del m&uacute;sculo esquel&eacute;tico (33-35) y actuar como estimulador del receptor de dihidropiridina (36).  Si el litio disminuye la generaci&oacute;n de IP<sub>3</sub> (37), se podr&iacute;a explicar la necesidad de una mayor frecuencia de est&iacute;mulo para lograr un t&eacute;tanos perfecto, tanto por estimulaci&oacute;n indirecta como directa;sin embargo, para confirmarlo se requiere de estudios adicionales.     <p>Se conoce que la fatiga muscular puede ser una manifestaci&oacute;n de una falla en la propagaci&oacute;n del potencial de acci&oacute;n a lo largo del sarcolema y del sistema de t&uacute;bulos T, de una falla en los mecanismos de acople entre el potencial de acci&oacute;n y la liberaci&oacute;n de calcio, o producida por una alteraci&oacute;n en la regulaci&oacute;n del calcio sobre los elementos contr&aacute;ctiles (38).  Los estudios que hablan sobre fatiga muscular la han clasificado en dos tipos diferentes: una,  que resulta cuando se estimula el m&uacute;sculo con frecuencias altas y otra,  que afecta el desarrollo de fuerza muscular a bajas frecuencias de estimulaci&oacute;n. La fatiga de alta frecuencia se presenta despu&eacute;s de 10 o 20 segundos de estimulaci&oacute;n a 50 Hz (38), en este estudio el tiempo de estimulaci&oacute;n continua nunca super&oacute; los cinco segundos.      <p>Para descartar que los efectos observados en este estudio fueran secundarios a los mecanismos de fatiga y no al cloruro de litio, las preparaciones fr&eacute;nico-diafragma en el grupo control fueron sometidas al mismo protocolo de estabilizaci&oacute;n, estimulaci&oacute;n y tiempo total de experimentaci&oacute;n utilizados en el grupo de tratamiento pero en ausencia de cloruro de litio.  En el grupo control no se evidenciaron cambios significativos en la frecuencia de est&iacute;mulo m&iacute;nima necesaria para producir un t&eacute;tanos perfecto, ni en el voltaje m&iacute;nimo de est&iacute;mulo necesario para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil, lo que permite afirmar que el efecto inhibitorio observado en el grupo de tratamiento es secundario al cloruro de litio.      <p>Por otra parte, el voltaje m&iacute;nimo necesario para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil regular en una preparaci&oacute;n neuromuscular (umbral de contracci&oacute;n) se&ntilde;ala de forma indirecta la excitabilidad de la misma; en el presente estudio las preparaciones bajo estimulaci&oacute;n directa como indirecta sometidas a las concentraciones de litio se&ntilde;aladas no evidenciaron un cambio significativo en esta variable con respecto al control, lo que permite afirmar que en este dise&ntilde;o experimental el cloruro de litio no modific&oacute; el umbral de contracci&oacute;n de tal forma que pudiera predisponer la preparaci&oacute;n al desarrollo de temblor. En ninguna preparaci&oacute;n sometida a estimulaci&oacute;n directa o indirecta en presencia de las concentraciones de cloruro de litio mencionadas se evidenci&oacute; actividad muscular correspondiente a temblor.     <p>Finalmente, bas&aacute;ndonos en que no hubo una disminuci&oacute;n de la frecuencia de est&iacute;mulo necesaria para lograr un t&eacute;tanos perfecto, sino todo lo contrario,   que el voltaje m&iacute;nimo necesario para desencadenar una respuesta contr&aacute;ctil regular no tuvo cambios significativos y que no se evidenci&oacute; actividad muscular correspondiente a temblor en las preparaciones neuromusculares sometidas a estimulaci&oacute;n directa e indirecta en presencia de cloruro de litio, podemos concluir que el cloruro de litio no aumenta la excitabilidad de la uni&oacute;n neuromuscular de rata y, por lo tanto, no la predispone al desarrollo de temblor.  Estos hallazgos sugieren que el temblor, una de las reacciones adversas m&aacute;s frecuentes y molestas en los pacientes que reciben litio, no se explique probablemente por un mecanismo perif&eacute;rico.  De hecho, en este modelo experimental,  el litio disminuy&oacute; la excitabilidad de la uni&oacute;n neuromuscular, sin embargo para comprender completamente los mecanismos subyacentes a este cambio es necesario utilizar otro tipo de modelos experimentales.      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Un sincero reconocimiento al doctor Iv&aacute;n Solarte por su apoyo incondicional para el desarrollo de este proyecto.      <p>El presente trabajo se realiz&oacute; en el Departamento de Ciencias Fisiol&oacute;gicas de la Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute; y se financi&oacute; con recursos propios de la Facultad de Medicina de la Pontificia Universidad Javeriana.  <hr>      <p><b>Referencias</b>       <!-- ref --><p>1. Goodwin FK, Jamison KR. Manic-depressive illness. 2 ed.New York: Oxford University Press; 1990.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0121-5256200700010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Schou M, Juel-Nielsen N, Stromgren E, Voldby H. The treatment of manic psychoses by the administration of lithium salts. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1954;17:250-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0121-5256200700010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Goodwin FK, Murphy DL, Bunney WE Jr. Lithium-carbonate treatment in depression and mania: a longitudinal double-blind study. Arch Gen Psychiatry. 1969;21:486-496.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0121-5256200700010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Stokes PE, Shamoian CA, Stoll PM, Patton MJ. Efficacy of lithium as acute treatment of manic-depressive illness. Lancet. 1971;1:1319-1325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0121-5256200700010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Souza FGM, Goodwin GM. Lithium treatment and prophylaxis in unipolar depression: a meta-analysis. Br J Psychiatry. 1991;158:666-675.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0121-5256200700010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Price LH, Charney DS, Heninger GR. Variability of response to lithium augmentation in refractory depression. Am J Psychiatry. 1986;143:1387-1392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0121-5256200700010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Dilsaver SC. Lithium's effects on muscarinic receptor binding parameters: a relationship to therapeutic efficacy?. Biol Psychiatry. 1984;19:1551-1565.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0121-5256200700010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Carroll JA, Jefferson JW, Greist JH. Treating tremor induced by lithium. Hosp Comm Psychiatry. 1987;38:1280-1288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0121-5256200700010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Gelenberg AJ, Jefferson JW. Lithium Tremor. J Clin Psychiatry. 1995;56(7):283-287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0121-5256200700010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Vacaflor L. Lithium side effects and toxicity: The clinical picture. In: Johnson FN, editor. Lithium Research and Therapy. London: Academic Press; 1975. p. 211-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0121-5256200700010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Gaby NS, Lefkowitz DS, Israel JR. Treatment of lithium tremor with metoprolol. Am J Psychiatry. 1983;140:593-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0121-5256200700010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Kirk L, Baastrup PC, Schou M. Propranolol treatment of lithium-induced tremor. 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Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 1996;20(1):87-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0121-5256200700010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Bulbring E. Observations on the isolated phrenic nerve-diaphragm preparation of the rat. Br J Pharmacol. 1946;1:539-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0121-5256200700010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Ahmed O. The myoneural effects of lithium chloride on the nerve-muscle preparations of rats. Role of adenosine triphosphate-sensitive potassium channels. Pharmacological Research.  2000;41(2):163-178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0121-5256200700010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Renaud JM, Gramolini A, Light P, Comtois A. Modulation of muscle contractility during fatigue and recovery by ATP- sensitive potassium channel. Acta Physiol Scand. 1996;156:203-212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0121-5256200700010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Ashcroft SJH, Ashcroft Fm. Properties and functions of ATP-sensitive K-channels. Cell Signal. 1990;2:197-214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0121-5256200700010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Rudy B. Diversity and ubiquity of K channels.  Neuroscience. 1988;25:729-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0121-5256200700010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Nichols CG, Lederer WJ. Adenosine triphosphate sensitive-potassium channels in the cardiovascular system. Am J Physiol. 1991;261:1675-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0121-5256200700010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Smith JS, Coronado R, Meissner G.  Single channel measurementes of the calcium release channel from skeletal muscle sarcoplasmic reticulum. J Gen Physiol. 1986;88:573-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0121-5256200700010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Nussinovitch I, Rahamimoff R. Ionic Basis of tetanic and post-tetanic potentiation at a mammalian neuromuscular junction. Journal of Physiology. 1988;396:435-455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0121-5256200700010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Sebastiao AM, Ribeiro JA. Interactions between adenosine and phorbol esters or lithium at the frog neuromuscular junction. Br. J. Pharmacol. 1990;100:55-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0121-5256200700010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Fatt P, Katz B. An analysis of the end-plate potential recorded with an intracellular electrode. J Physiol. 1951;115:320-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0121-5256200700010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Sekar MC, Hokin LE. The role of phosphoinositides in signal transduction. J. Membr Biol. 1986;89:193-210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0121-5256200700010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Drummond AH, Hughes PJ. Perturbation by lithium of inositol phosphate metabolism in GH3 pituitary cells. In: Inositol lipids in cellular signaling. Mitchell RH, Putney JW.Jr, editors. New York: Cold Spring Habor Laboratory; 1987. p. 31-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0121-5256200700010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Putney J.W. Jr. Calcium-mobilizing receptors. Trends Pharmacol. Sci. 1987;8:481-486.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0121-5256200700010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Beauge LA. Activation by lithium ions of the inside sodium sites in (Na+K+) ATPase. Biochimica et biophysica acta. 1978;527:472-484.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0121-5256200700010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Ritchie JM, Straub RW. Observations on the mechanism for the active extrusion of lithium in mammalian non myelinated nerve fibers. Journal of Physiology. 1980;304:123-134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0121-5256200700010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Hermoni M, Barzilat A, Rahamimoff H. Modulation of the Na-Ca antiport by its ionic environment: the effect of lithium. In: The Languages of the brain. Rahamimoff R, Abeles M, editors. Tel-Aviv: Israel Journal of Medical Sciences; 1987. p.44-48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0121-5256200700010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Nahorski SR, Jenkinson S, Challis RA. Lithium-induced disruption of cell singnalling in brain:  evidence implicating the phosphoinositide cycle.  Pharmacol Toxicol. 1992;71:42:48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0121-5256200700010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Berridge JM, Irvine RF.  Inositol phosphates and cell singnalling.  Nature. 1989;341:197-205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0121-5256200700010000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Nosek TM, Williams MF, Zeigler ST, Godt RE. Inositol triphosphate enhances calcium release in skinned cardiac and skeletal muscle. Am J Physiol. 1986;250(19 Suppl 7):S807-811.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0121-5256200700010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Suarez-Isla B, Irribara V, Oberhause A, Larralde L, Bull R, Hidalgo C, et al. Inositol (1,4,5) triphosphate activates a calcium channel in isolated sarcoplasmic reticulum membranes. Biophys J. 1988;54:737-741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0121-5256200700010000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Volpe P, Salviati G, DiVirgilio F, Pozzan T. Inositol 1,4,5 triphosphate induces calcium release from sarcoplasmic reticulum of skeletal muscle. Nature. 1985;316:347-349.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0121-5256200700010000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Vilven J, Coronado R. Opening of dihydropiridine calcium channels in skeletal muscle membranes by insotiol triphosphate. Nature. 1988;336:587-589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0121-5256200700010000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Tarnopolsky M, Hicks A, Winegard K. The effects of lithium on muscle contractile function in humans. Muscle & Nerve. 1996;19:311-318.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0121-5256200700010000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Jones DA. High and Low frequency fatigue revisited. Acta Physiol Scand. 1996;156:256-270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0121-5256200700010000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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