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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de marcadores inflamatorios y anabólicos articulares en caballos jóvenes estabulados con osteocondrosis tarsocrural]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma de Barcelona Departamento de Medicina y Cirugía Animal Facultad de Veterinaria]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To describe the concentrations in synovial fluid (SF) of prostaglandin E2 (PGE2), nitric oxide (NO), hyaluronic acid (HA) and total protein (TP) in stabled young horses with tarsocrural OC and correlate the values of these markers with the SF total cell count the degree of synovial effusion (SE) and the degree of lameness (LD). Materials and methods. A PGE2SF concentration was determined by ELISA, NO was determined by the Greiss reaction, HA was measured by RIA and TP by refractometry. Results. Eleven horses between 8-36 months were included. The median grades of SE and LD were 1.5 (range (R): 0.5-2) and 0 (R: 0-2), respectively. Median value for PGE2was 130.6 pg/mL (R: 41-231.7 pg / mL). Median value for NO was 2.92 mM (R: 1.3-6.3 mM). Median value for HA was 312.4 mg/mL (R: 70-543.5 mg/mL). The average concentration for TP was 1.2±-0.36 g/dL. Statistically significant negative correlations between the concentrations of HA in synovial fluid and the degree of synovial effusion (ñ =- 0.7, p = 0.048) and degree of lameness (ñ =- 0.78, p = 0.014) were observed. Conclusions. The concentration of HA in LS of horses with OC may be negatively correlated with the severity of clinical symptoms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>      <p align="center"><b><font size="3">Determinaci&oacute;n de marcadores inflamatorios y anab&oacute;licos articulares en caballos j&oacute;venes estabulados con osteocondrosis tarsocrural</font></b></p>      <p align="center"><b><font size="3">Determination of inflammatory and anabolic joint markers in stabled young horses with tarsocrural ostechondrosis</font></b></p>      <br>      <p><b>Jorge Carmona</b>, <sup>1</sup>* <b>Ph.D, Catalina L&oacute;pez</b>, <sup>1</sup> <b>MVZ, Marta Prades</b>,<sup>2</sup> <b>Ph.D.</b></p>      <p><sup>1</sup>Universidad de Caldas, Departamento de Salud Animal, Grupo de Investigaci&oacute;n Terapia Regenerativa, Calle 65 No 26-10, Manizales, Colombia.     <br>    <sup>2</sup>Universidad Aut&oacute;noma de Barcelona, Departamento de Medicina y Cirug&iacute;a Animal, Facultad de Veterinaria, Edificio V, Campus UAB. 08193 Cerdanyola del Vall&eacute;s, Espa&ntilde;a.    <br></p>      <p>*Correspondencia: <a href="mailto:carmona@ucaldas.edu.co">carmona@ucaldas.edu.co</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: Junio 17 de 2009; Aceptado: Noviembre 24 de 2009</p>  <hr>      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo.</b> Describir los valores de las concentraciones en l&iacute;quido sinovial (LS) de prostaglandina E2 (PGE<sub>2</sub>), &oacute;xido n&iacute;trico (NO), &aacute;cido hialur&oacute;nico (HA) y prote&iacute;na total (PT) en caballos j&oacute;venes estabulados con osteocondrosis (OC) tarsocrural y correlacionar los valores de estos marcadores con el recuento total de c&eacute;lulas del LS, el grado de efusi&oacute;n sinovial (ES) y con el grado de cojera (GC). <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Las concentraciones en LS de PGE<sub>2</sub>fueron determinadas mediante ELISA, las de NO fueron valoradas por la reacci&oacute;n de Greiss, las de HA fueron medidas con radioinmunoan&aacute;lisis RIA y las de PT mediante refractometr&iacute;a. <b>Resultados.</b> Once caballos entre 8 y 36 meses fueron incluidos. La mediana y el rango (R) de los grados de ES y GC fueron de 1.5 (R: 0.5-2) y 0 (R: 0-2), respectivamente. La mediana de la concentraci&oacute;n de PGE<sub>2</sub>y NO, respectivamente fue 130.6 pg/mL (R: 41-231.7 pg/mL) y 2.92 mM (R: 1.3-6.3 mM).. La concentraci&oacute;n de HA present&oacute; una mediana de 312.4 mg/mL (R: 70-543.5 mg/mL). La concentraci&oacute;n promedio de PT fue de 1.2&plusmn;-0.36 g/dL. Se observ&oacute; correlaci&oacute;n negativa estad&iacute;sticamente significativa entre las concentraciones sinoviales de HA y el grado de efusi&oacute;n sinovial (&ntilde;=-0.7; p= 0.048) y el grado de cojera (&ntilde;=-0.78; p=0.014). <b>Conclusiones.</b> La concentraci&oacute;n de HA en LS de caballos con OC podr&iacute;a estar negativamente correlacionada con la gravedad de los signos cl&iacute;nicos.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: Equinos, osteocondrosis, biomarcadores articulares.</p>  <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objective.</b> To describe the concentrations in synovial fluid (SF) of prostaglandin E2 (PGE<sub>2</sub>), nitric oxide (NO), hyaluronic acid (HA) and total protein (TP) in stabled young horses with tarsocrural OC and correlate the values of these markers with the SF total cell count the degree of synovial effusion (SE) and the degree of lameness (LD). <b>Materials and methods.</b> A PGE<sub>2</sub>SF concentration was determined by ELISA, NO was determined by the Greiss reaction, HA was measured by RIA and TP by refractometry. <b>Results.</b> Eleven horses between 8-36 months were included. The median grades of SE and LD were 1.5 (range (R): 0.5-2) and 0 (R: 0-2), respectively. Median value for PGE<sub>2</sub>was 130.6 pg/mL (R: 41-231.7 pg / mL). Median value for NO was 2.92 mM (R: 1.3-6.3 mM). Median value for HA was 312.4 mg/mL (R: 70-543.5 mg/mL). The average concentration for TP was 1.2&plusmn;-0.36 g/dL. Statistically significant negative correlations between the concentrations of HA in synovial fluid and the degree of synovial effusion (&ntilde; =- 0.7, p = 0.048) and degree of lameness (&ntilde; =- 0.78, p = 0.014) were observed. <b>Conclusions.</b> The concentration of HA in LS of horses with OC may be negatively correlated with the severity of clinical symptoms.</p>      <p><b>Key words</b>: Equines, osteochondrosis, joint biomarkers.</p>  <hr>      <br>       <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>      <p>La osteocondrosis (OC) es una enfermedad  multifactorial con un componente hereditario, clasificada dentro del complejo de enfermedades ortop&eacute;dicas del desarrollo en el caballo. La OC se desencadena por una deficiencia en la osificaci&oacute;n endocondral del complejo epifisario-articular. Las articulaciones m&aacute;s afectadas son la tarsocrural, femoropatelar y metacarpofalangiana (1). La incidencia de la enfermedad puede oscilar entre 10-70% (2). La OC causa grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas a los productores, representadas por la devaluaci&oacute;n del potencial atl&eacute;tico y reproductivo de los equinos afectados (3).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Cl&iacute;nicamente, las articulaciones con OC pueden presentar diferentes grados de distensi&oacute;n articular (efusi&oacute;n sinovial). La presencia de cojera no es t&iacute;pica en caballos con OC. Sin embargo, puede aparecer cuando los caballos j&oacute;venes inician su entrenamiento (1). La cojera puede manifestarse sobre todo cuando las lesiones osteocondrales est&aacute;n ubicadas en sitios de gran movilidad y carga articular como la cresta intermedia de la tibia (1,4). La OC siempre deber&aacute; ser descartada en potros que presenten distensi&oacute;n sinovial leve de tarsos, menudillos o babillas (1, 2, 4).</p>      <p>Las articulaciones afectadas por OC pueden presentar fragmentos osteocondrales libres, exposici&oacute;n focalizada de hueso subcondral y sinovitis (1, 4). Este cuadro cursa con alteraciones bioqu&iacute;micas inflamatorias del ambiente articular que perpet&uacute;an la inflamaci&oacute;n de la membrana sinovial con la consecuente destrucci&oacute;n del cart&iacute;lago articular sano (5-7). Agentes proinflamatorios primarios, como la interleucina 1 (IL-1), activan la expresi&oacute;n del sistema enzim&aacute;tico inflamatorio que incluye, entre otras, la expresi&oacute;n de la ciclooxigensa 2 (COX-2), y la sintetasa inducible de &oacute;xido n&iacute;trico (iNOS) (8). Estas enzimas a su vez producen prostaglandina E2 (PGE<sub>2</sub>) y &oacute;xido n&iacute;trico (NO). Ambos metabolitos inflamatorios est&aacute;n asociados con dolor y efusi&oacute;n articulares y con el potencial desarrollo de osteoartritis (OA) (8) de la articulaci&oacute;n inicialmente afectada con OC (1), si la causa incitante no es controlada (8).</p>        <p>El conocimiento del comportamiento de estos marcadores podr&iacute;a ser de utilidad para ampliar el conocimiento molecular de la OC y para ser usados como posibles indicadores de respuesta bioqu&iacute;mica frente a las intervenciones cl&iacute;nicas o quir&uacute;rgicas que se hagan en caballos con la enfermedad.</p>      <p>El &aacute;cido hialur&oacute;nico (HA) es un componente fundamental del l&iacute;quido sinovial (LS). Es un glicosaminoglicano no sulfatado, producido por las c&eacute;lulas sinoviales (9), pero tambi&eacute;n es producido por los diferentes tipos de tejidos conectivos en todo el cuerpo. La principal acci&oacute;n del HA en las articulaciones es promover su lubricaci&oacute;n (10). A nivel sinovial el HA inhibe la migraci&oacute;n de leucocitos, act&uacute;a como un cazador de radicales libres y ofrece condroprotecci&oacute;n, ya que aumenta la s&iacute;ntesis de proteoglicanos (9, 11).</p>      <p>Los objetivos de esta investigaci&oacute;n fueron 1) describir los valores de las concentraciones en LS de PGE<sub>2</sub>, NO (marcadores inflamatorios), HA (marcador de anabolismo articular) y prote&iacute;na total en caballos j&oacute;venes estabulados con OC tarsocrural y 2) correlacionar los valores de estos marcadores con el recuento total de c&eacute;lulas del LS, el grado de efusi&oacute;n sinovial y con el grado de cojera.</p>      <br>      <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>      <p><b>Sitio de estudio. </b>El trabajo fue aprobado por las directivas del Hospital Veterinario . Los due&ntilde;os de los caballos firmaron una hoja de autorizaci&oacute;n en la que se informaba de la naturaleza del estudio y de las posibles complicaciones derivadas de la punci&oacute;n articular. Los caballos evaluados en este estudio hac&iacute;an parte de criaderos con condiciones ambientales, nutricionales y de manejo muy parecidas. Los caballos fueron evaluados cl&iacute;nicamente en sus criaderos de origen, por solicitud de los propietarios a causa de la distensi&oacute;n articular observada en los pacientes.</p>      <p><b>Criterios de inclusi&oacute;n en el estudio. </b>El criterio para incluir un caballo en el estudio obedeci&oacute; a tres factores: a) edad (menores de 3 a&ntilde;os), b) presencia unilateral visible de fragmentos osteocondrales en la articulaci&oacute;n tarsoclural, acompa&ntilde;ados de efusi&oacute;n sinovial y c) los potros no deber&iacute;an estar en entrenamiento y deber&iacute;an estar estabulados.</p>      <p><b>Dise&ntilde;o del estudio.</b> Los caballos incluidos fueron evaluados mediante ex&aacute;menes f&iacute;sico general y locomotor, pruebas complementarias (qu&iacute;mica cl&iacute;nica), estudio radiol&oacute;gico y determinaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de las concentraciones en LS de PGE<sub>2</sub>, NO y HA.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Examen cl&iacute;nico y del aparato locomotor.</b> Cada caballo fue evaluado para incluir animales libres de enfermedad con manifestaciones cl&iacute;nicas, para ello adicionalmente se realiz&oacute; un hemograma y un panel bioqu&iacute;mico general (glucosa, AST, creatinina y albumina). Posteriormente, se realiz&oacute; evaluaci&oacute;n del aparato locomotor. Los caballos que presentaban efusi&oacute;n sinovial unilateral del tarso fueron sometidos a un estudio radiol&oacute;gico de esa misma regi&oacute;n anat&oacute;mica.</p>      <p><b>Calificaci&oacute;n del grado de efusi&oacute;n sinovial (distenci&oacute;n articular).</b> Se realiz&oacute; evaluaci&oacute;n semicualitativa del grado de efusi&oacute;n sinovial en cada caballo (12-14) para esto se combinaron los resultados de las observaciones cl&iacute;nicas y los hallazgos ultrasonogr&aacute;ficos de cada articulaci&oacute;n evaluada. La evaluaci&oacute;n cl&iacute;nica incluy&oacute; el aspecto externo de la articulaci&oacute;n afectada en comparaci&oacute;n con la articulaci&oacute;n contralateral sana, respecto a la temperatura, textura de la c&aacute;psula, grado de movimiento articular, grado de dolor durante la palpaci&oacute;n y movimiento pasivo, entre otros. El examen ecogr&aacute;fico se realiz&oacute; con un equipo Acuson-Aspen (1230 Shorebird Way, Mountain View CA, USA). El examen fue realizado con una sonda lineal de 10 MHz e incluy&oacute;: evaluaci&oacute;n de la superficie articular, cantidad de l&iacute;quido sinovial, grosor y aspecto de la membrana sinovial y sus vellosidades y presencia de fragmentos osteocondrales. El grado de efusi&oacute;n sinovial (distensi&oacute;n articular) fue calificado en una escala de 0 a 3, donde 0=Articulaci&oacute;n de aspecto normal. 1=efusi&oacute;n levemente palpable, sin engrosamiento de la c&aacute;psula articular. 2=Efusi&oacute;n palpable, con engrosamiento capsular moderado y una reacci&oacute;n dolorosa leve durante la palpaci&oacute;n profunda. 3=Efusi&oacute;n severa, con la membrana sinovial engrosada, presencia de fragmentos osteocondrales y reacci&oacute;n dolorosa durante la palpaci&oacute;n articular y su movilizaci&oacute;n pasiva (12). Las medidas ultrasonogr&aacute;ficas fueron realizadas siempre en el mismo punto anat&oacute;mico (receso dorsolateral medial inmediatamente por debajo del mal&eacute;olo medial de la tibia en cada paciente y por el mismo cl&iacute;nico).</p>      <p><b>Calificaci&oacute;n del grado de cojera.</b> El grado de cojera fue calificado de 0-5, seg&uacute;n los par&aacute;metros establecidos por la AAEP (13), aunque la asignaci&oacute;n de grados medios (0.5) tambi&eacute;n fue permitida. Solamente, se consider&oacute; el trote en l&iacute;nea recta sobre una superficie dura.</p>      <p><b>Examen radiol&oacute;gico. </b>El tarso de cada caballo con efusi&oacute;n sinovial fue evaluado mediante las 4 proyecciones est&aacute;ndar de esa articulaci&oacute;n (2).</p>      <p><b>Determinaciones bioqu&iacute;micas en l&iacute;quido sinovial.</b> Cada articulaci&oacute;n afectada fue preparada as&eacute;pticamente para realizar punci&oacute;n articular, previa sedaci&oacute;n. Una muestra de l&iacute;quido sinovial de 1 ml fue depositada en un tubo con EDTA para an&aacute;lisis citol&oacute;gico (recuento celular y determinaci&oacute;n de prote&iacute;na total). Otra muestra de 1 ml fue depositada en un tubo con heparina de litio. La muestra fue inmediatamente centrifugada a 1780 x g durante 5 minutos y seguidamente se extrajo el l&iacute;quido sinovial (aproximadamente 0.7 ml) libre de sus c&eacute;lulas, el cual fue depositado en tubos tipo eppendorf y transportados en una nevera con hielo hasta el laboratorio. Las muestras fueron congeladas a -80&deg;C.</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de la PGE</b><sub>2</sub><b>en el l&iacute;quido sinovial.</b> Las concentraciones de PGE<sub>2</sub>en LS fueron determinadas mediante una prueba de ELISA en s&aacute;ndwich construida con anticuerpos comerciales (Quantiquine, R&amp;D, Systems, UK) para seres humanos. La estructura de este eicosanoide est&aacute; muy conservada entre especies y no existe reactividad cruzada de esta mol&eacute;cula con otros eicosanoides, por tal raz&oacute;n puede ser usada para medir PGE<sub>2</sub>en el caballo. El ensayo fue realizado de acuerdo con las instrucciones del fabricante. La lectura de absorbancia fue realizada a 405 nm mediante un lector de ELISA. La detecci&oacute;n l&iacute;mite del ensayo fue de 15 pg/ml (14, 15).</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n del NO en el l&iacute;quido sinovial.</b> Las concentraciones de NO en las muestras de l&iacute;quido sinovial fueron determinadas a trav&eacute;s de su producto de degradaci&oacute;n, los nitritos (NO<sub>2</sub>), por medio del ensayo de diazotizaci&oacute;n (reacci&oacute;n de Greiss), previa reducci&oacute;n de los nitratos (16,17). El NO<sub>2</sub> es un producto final y estable del NO en una cantidad aproximada de 51.5&plusmn;3.5% del total ON producido (14).</p>      <p>Se construy&oacute; una recta patr&oacute;n a partir de un est&aacute;ndar de nitrito s&oacute;dico al 100 mM. La recta fue iniciada a partir de una diluci&oacute;n 1/1000 del est&aacute;ndar con una concentraci&oacute;n m&aacute;xima de 100 mM. Las muestras fueron centrifugadas a 1780 x g durante 10 min y sin diluir fueron colocadas en al&iacute;cuotas de 100 ml en placas de 96 pozuelos. El contenido de cada pozo fue mezclado con 100 ml de una soluci&oacute;n de trabajo fabricada a partir de 2 (dos) partes iguales de 3ml de &aacute;cido fosf&oacute;rico al 5%, 51 ml de agua y sulfanilamida al 1% (0.5 g/50 ml de &aacute;cido fosf&oacute;rico al 5%) y N-1-napthilethileno diamina (NEDA) al 0.1% (0.05 g en 50 ml agua). Cada muestra permaneci&oacute; 10 min bajo incubaci&oacute;n a temperatura ambiente y posteriormente fue medida en un lector de ELISA a 540 nm. La sensibilidad del m&eacute;todo fue de 1 mM. Todos los resultados se expresaron como mM (17).</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de &aacute;cido hialur&oacute;nico en el l&iacute;quido sinovial.</b> El HA fue determinado mediante radioinmunoan&aacute;lisis (RIA), con un kit comercial (Pharmacia, HA Test, Pharmacia &amp; Upjohn Diagnostics AB, Uppsala, Sweden). La prueba se bas&oacute; en la mezcla de 200 ml de prote&iacute;nas de uni&oacute;n de &aacute;cido hialur&oacute;nico aislada de cart&iacute;lago bovino (HABP-125) con 100 ml de muestra de LS. Luego de una incubaci&oacute;n de 60 minutos a 4-20&deg;C, se agreg&oacute; 100 ml de AH-sefarosa y se esper&oacute; una incubaci&oacute;n adicional de 45 min a la misma temperatura que el anterior. Luego se agregaron 2 ml de soluci&oacute;n de decantaci&oacute;n y se centrifug&oacute; la muestra durante 10 minutos a 600 x<i>g</i>. Los niveles de HA de las muestras fueron medidas mediante un contador gamma. El principio de esta prueba, consiste en cuantificar la HABP-125 no unida al &aacute;cido hialur&oacute;nico. De esta manera la radioactividad medida es inversamente proporcional a la cantidad de &aacute;cido hialur&oacute;nico presente en la muestra (18,19).</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> Los datos obtenidos fueron analizados con el programa estad&iacute;stico SPSS 16.0 (SPSS inc., IL, USA). Los valores de todas las variables evaluadas, a excepci&oacute;n de los niveles de prote&iacute;na total del fluido sinovial, fueron analizados mediante pruebas no param&eacute;tricas, ya que estos datos presentaron una distribuci&oacute;n no normal (prueba de <i>Shaphiro-Wilk</i> p&lt;0.05) y las transformaciones logar&iacute;tmicas (LogY) y de arcoseno no permitieron normalizar los datos. Se hizo un an&aacute;lisis de correlaciones de <i>Spearman</i> (&ntilde;) entre las variables bioqu&iacute;micas y cl&iacute;nicas evaluadas. Un valor de p&lt;0.05 fue aceptado como estad&iacute;sticamente significativo para esta prueba. Todos los resultados fueron expresados como medianas (rangos) a excepci&oacute;n de los valores de prote&iacute;na total el LS, que fueron presentados como promedio (desviaci&oacute;n est&aacute;ndar).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b>RESULTADOS</b></p>       <p>Once caballos raza pura espa&ntilde;ol alcanzaron los criterios de inclusi&oacute;n del estudio. De ellos 10 fueron machos y 1 fue hembra, con un rango de edad comprendido entre 8-36 meses. El estudio radiol&oacute;gico revel&oacute; que 10 caballos presentaban un fragmento osteocondral en la cresta intermedia de la tibia y 1 presentaba un fragmento en el labio lateral de la tr&oacute;clea del astr&aacute;galo. Los caballos incluidos presentaban efusi&oacute;n sinovial con un rango de calificaci&oacute;n de 0.5-3 (mediana 1.5). Seis de los 11 caballos no presentaban cojera, los cinco restantes presentaban un grado de cojera que oscilaba en un rango de 0.5-2 grados. La mediana general del grado de cojera en los pacientes seleccionados fue de 0 (rango 0-2).</p>      <p>El an&aacute;lisis citol&oacute;gico del l&iacute;quido sinovial present&oacute; recuento celular mediano de 150 c&eacute;lulas/mL (rango: 50-200 c&eacute;lulas/mL), caracterizado por c&eacute;lulas mononucleares poco reactivas. Los caballos incluidos presentaron un nivel medio de prote&iacute;nas totales en l&iacute;quido sinovial de 1.2&plusmn;-0.36 g/dL. Las concentraciones medianas de NO en l&iacute;quido sinovial fueron de 2.92 mM (rango 1.33-6.27 mM). La PGE<sub>2</sub> present&oacute; niveles medianos en el l&iacute;quido sinovial de 130.6 pg/mL (rango 41-231.7 pg/mL). El HA present&oacute; concentraciones sinoviales medianas de 312.4 mg/mL (rango 70-543.5 mg/mL).</p>      <p>Se observ&oacute; correlaci&oacute;n negativa estad&iacute;sticamente significativa entre las concentraciones sinoviales de HA y el grado de efusi&oacute;n sinovial (&ntilde;=-0.7; p=0.048) (<a href="#fig1">Figura 1</a>) y entre las concentraciones sinoviales de HA y el grado de cojera (&ntilde;=-0.78; p=0.014) (<a href="#fig2">Figura 2</a>). No se hallaron correlaciones entre los marcadores inflamatorios, los recuentos celulares del l&iacute;quido sinovial, las concentraciones sinoviales de prote&iacute;na total y los grados de efusi&oacute;n sinovial o de cojera.</p>      <p align="center"><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a03f1.jpg"></p>     <p align="center"><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n1/v15n1a03f2.jpg"></p>      <br>      <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>      <p>Investigaciones recientes en caballos j&oacute;venes con OC tarsocrural implicaron a los eicosanoides (LTB4 y PGE<sub>2</sub>) (5) y radicales libres como el NO (6) como protagonistas de la g&eacute;nesis y perpetuaci&oacute;n de la efusi&oacute;n sinovial y de los da&ntilde;os del cart&iacute;lago articular de las articulaciones afectadas por esa enfermedad (5,6). de Grauw et al (5) reportaron concentraciones significativamente m&aacute;s elevadas de PGE<sub>2</sub>en el l&iacute;quido sinovial en caballos con OC tarsocrural (362.3&plusmn;93.6 pg/mL) en comparaci&oacute;n con el l&iacute;quido sinovial de las articulaciones similares en caballos sanos (127.3 &plusmn; 33.6 pg/mL). En el estudio presentado se encontraron concentraciones medianas m&aacute;s bajas de PGE<sub>2</sub>en LS (130.6 pg/mL; rango: 41-231.7 pg/mL) en comparaci&oacute;n con los resultados descritos por de Grauw et al (5) para los caballos con OC tarsocrural y valores muy similares a los de los caballos del grupo control de ese mismo estudio.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Es importante se&ntilde;alar que el equipo de la presente investigaci&oacute;n y el de Grauw et al (5) utilizaron anticuerpos contra PGE<sub>2</sub>del mismo fabricante (R&amp;D Systems). La disparidad observada entre ambos estudios pudo estar relacionada, entre otras, con i) la metodolog&iacute;a utilizada para recoger y procesar el l&iacute;quido sinovial y ii) con los diferentes reg&iacute;menes de ejercicio de los caballos en cada estudio (20). En el presente trabajo se utilizaron tubos con heparina-litio para recoger y procesar las muestras de l&iacute;quido sinovial, mientras que de Grauw et al (5) utilizaron tubos sin anticoagulante y adem&aacute;s esperaron 1 hora para realizar el centrifugado de l&iacute;quido sinovial. Cuando los leucocitos entran en contacto con una superficie poco habitual (en este caso la pared del tubo de recolecci&oacute;n del LS), aumentan su actividad metab&oacute;lica inflamatoria (19). Adem&aacute;s, la heparina tiene la capacidad de prevenir este tipo de reacci&oacute;n inflamatoria (19).</p>      <p>Por otro lado, Van Den Boom et al (20) encontraron que la concentraci&oacute;n de PGE<sub>2</sub> puede aumentar en el l&iacute;quido sinovial de caballos sometidos a ejercicio en comparaci&oacute;n con caballos sedentarios. Los caballos en el presente estudio estaban bajo estabulaci&oacute;n para evitar el efecto del ejercicio sobre el aumento de este metabolito en el l&iacute;quido sinovial (20).</p>      <p>Los niveles de HA en el l&iacute;quido sinovial han sido documentados en caballos con articulaciones sanas (21-23) y en pacientes con diferentes artropat&iacute;as, como osteoartritis (OA) (23), artritis traum&aacute;tica (24), enfermedad navicular (25) fragmentaci&oacute;n osteocondral traum&aacute;tica (26) y artritis infecciosa (24), entre otras. Sin embargo, en la literatura revisada, los autores no pudieron encontrar un reporte sobre las concentraciones de este marcador anab&oacute;lico en caballos con OC tarsocrural. Los valores HA en LS de caballos sanos o con diferentes artropat&iacute;as var&iacute;an ostensiblemente en cada estudio, principalmente por el tipo de m&eacute;todo empleado en la medici&oacute;n de este metabolito. La t&eacute;cnica (RIA) empleada para medir la concentraci&oacute;n de HA en el LS de los caballos del presente estudio (19) no fue utilizada en los trabajos revisados en caballos. Una desventaja del presente trabajo radic&oacute; en que no se midieron las concentraciones sinoviales de HA en articulaciones sanas con la finalidad de comparar estos valores con los de las afectadas por OCD.</p>      <p>Los hallazgos m&aacute;s interesantes de la presente investigaci&oacute;n fueron las correlaciones negativas observadas entre los niveles de HA en LS y los grados de efusi&oacute;n sinovial (&ntilde;=-0.7; p=0.048) y cojera (&ntilde;=-0.78; p=0.014). En caballos con OA se ha observado una disminuci&oacute;n de las concentraciones en LS de HA respecto a controles sanos (24). La OA equina cursa frecuentemente con sinovitis, la cual produce efusi&oacute;n sinovial (8). Es posible que el aumento de los niveles del fluido sinovial de las articulaciones con OA produzca un efecto dilucional sobre este marcador (21). Quiz&aacute;s este mismo hecho pudo ocurrir en los caballos de este reporte. Por otra parte, es posible pensar que la membrana sinovial inflamada tiene una capacidad metab&oacute;lica disminuida para producir HA (27), tal como fue evidenciada en este estudio.</p>      <p>Otro hecho llamativo fue que el grado de cojera y el grado de efusi&oacute;n sinovial no mostraron una correlaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa en los caballos del presente reporte. Sin embargo, las  concentraciones de HA en LS y no las de PGE<sub>2</sub> se asociaron con el grado de cojera de los caballos de la presente investigaci&oacute;n. Los resultados de este trabajo concuerdan con los resultados reportados por de Graw et al (5) para caballos con OC tarsocrural. Sin embargo, difieren para los hallazgos encontrados en caballos con otras artropat&iacute;as (28,29), en los que se observ&oacute; una correlaci&oacute;n significativa entre el dolor articular (cojera) y los niveles incrementados de este marcador. Posiblemente, el dolor articular en caballos con OC este m&aacute;s asociado con disminuci&oacute;n de las concentraciones de HA en LS que con el aumento de los niveles de PGE<sub>2</sub>, tal como fue observado en el presente trabajo. Sin embargo, este hecho deber&aacute; ser comprobado en un estudio con controles que incluya un alto n&uacute;mero de pacientes con OC.</p>      <p>Los resultados observados en esta investigaci&oacute;n podr&iacute;an servir para confirmar que la administraci&oacute;n oral (28,29) de HA a caballos con OC podr&iacute;a ayudar a disminuir la sintomatolog&iacute;a cl&iacute;nica asociada con la enfermedad (29,30). Sin embargo, es necesario desarrollar una investigaci&oacute;n cl&iacute;nica doble ciego controlada que incluya un gran n&uacute;mero de pacientes con gran homogeneidad y en los que se puedan medir marcadores sinoviales y plasm&aacute;ticos (adem&aacute;s del HA) que permitan esclarecer el mecanismo por el cual &eacute;l HA produce disminuci&oacute;n de la efusi&oacute;n sinovial (y posiblemente cojera) en caballos con OC.</p>        <p>Para concluir, esta investigaci&oacute;n aporta nuevo conocimiento sobre marcadores inflamatorios y anab&oacute;licos en caballos con OC tarsocrural. La concentraci&oacute;n de HA en LS de caballos con esa patolog&iacute;a podr&iacute;a estar negativamente correlacionada con la gravedad de los signos cl&iacute;nicos en caballos. La administraci&oacute;n oral de HA podr&iacute;a ser una estrategia para disminuir los signos cl&iacute;nicos asociados a la OC en el caballo.</p>      <br>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Los autores agradecen  a todas las personas que colaboraron con la ejecuci&oacute;n t&eacute;cnica del proyecto: Antoni Iborra, Laia Vi&ntilde;als, Paz Mart&iacute;nez, Ram&oacute;n Deulofeu, Rafaela Cuenca, y Pau Serra. Tambi&eacute;n, agradecen el apoyo de Bio-ib&eacute;rica S.A, Barcelona, Espa&ntilde;a, y muy especialmente a Daniel Mart&iacute;nez y Ana Ubia.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b>REFERENCIAS</b></p>      <!-- ref --><p>1. McIlwraith CW. Clinical aspects of osteochondritis dissecans. In: McIlwraith CW, Trotter GW, eds. Joint disease in the horse. Philadelphia: WB Saunders Co, 1996; 369-374.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0122-0268201000010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Wittwer C, Hamann H, Rosenberger E, Distl O. Prevalence of osteochondrosis in the limb joints of South German Coldblood horses. J Vet Med A Physiol Pathol Clin Med 2006; 53: 531-539.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0122-0268201000010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Jeffcot LB. Osteochondrosis: an international problem for the horse industry. J Equine Vet Scien 1996; 16: 32-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0122-0268201000010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Van Weeren PR. Etiology, diagnosis and treatment of OC(D). Clin Tech Equine Pract 2006; 5: 248-258.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0122-0268201000010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. de Grauw JC, Brama PA, Wiemer P, Brommer H, van de Lest CH, van Weeren PR. Cartilage-derived biomarkers and lipid mediators of inflammation in horses with osteochondritis dissecans of the distal intermediate ridge of the tibia. Am J Vet Res 2006; 67: 1156-1162.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0122-0268201000010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Gangl M, Serteyn D, Lejeune JP, Schneider N, Grulke S, Peters F, et al. A type II-collagen derived peptide and its nitrated form as new markers of inflammation and cartilage degradation in equine osteochondral lesions. Res Vet Sci 2007;82:68-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0122-0268201000010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Sutton S, Clutterbuck A, Harris P, Gent T, Freeman S, Foster N, et al. The contribution of the synovium, synovial derived inflammatory cytokines and neuropeptides to the pathogenesis of osteoarthritis. Vet J 2009; 179:10-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0122-0268201000010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Carmona JU, Prades, M. Pathophysiology of osteoarthritis. Comp Equine 2009; 4: 28-40.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0122-0268201000010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Howard RD, McIIwraith CW: Hyaluronan and its use in the treatment of equine joint disease. In McIIwraith CW, Trotter GW (eds). Joint disease in the horse. Philadelphia: WB Saunders Company; 1996.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0122-0268201000010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Popot MA, Bonnaire J, Gu&eacute;chot J, et al. Hyaluronan in horses: physiological production rate, plasma and synovial fluid concentrations in control conditions and following sodium hyaluronate administration. Equine Vet J 2004; 36:482-487.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-0268201000010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Frean SP, Abraham LA, Lees P: In vitro stimulation of equine articular cartilage proteoglycans synthesis by hyaluronan and carprofen. Res Vet Sci 1999; 67:181-188.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268201000010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Carmona JU, Arg&uuml;elles D, Climent F, Prades M. Autologous platelet concentrates as a treatment of horses with osteoarthritis: A preliminary pilot clinical study. J Equine Vet Scien 2007; 4: 167-170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-0268201000010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. American association of equine practitioners (AAEP). Guide for veterinary service and judging of equestrian events: definition and classification of lameness. AAEP 1991.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268201000010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Von Rechemberg B, McIlwraith CW, Akens MK, Frisbie DD, Leutenegger C, Auer JA. Spontaneous production of nitric oxide (NO), prostaglandin (PGE<sub>2</sub>), and neutral metalloproteinases (NMPs) in media of explant cultures of equine synovial membrane and articular cartilage from normal and osteoarthritic joints. Equine Vet J 2000; 32:140-150.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268201000010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Bertone AL, Palmer JL. Synovial fluid cytokines and eicosanoids as markers of joint disease in horses. Vet Surg 2001; 30:528-538.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268201000010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Archer S. Measurement of Nitric Oxide in biological models. FASEB J 1993; 7:340-360.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268201000010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Carmona JU, D Arg&uuml;elles, M Prades. Niveles de factor de crecimiento transformante beta-3 y &oacute;xido n&iacute;trico en cuatro concentrados aut&oacute;logos de plaquetas y plasma derivados de sangre equina. Arch Med Vet 2008; 40: 155-160.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268201000010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Guechot J, Laudat A, Loria A, Serfaty L, Poupon R, Giboudeau J. Diagnostic accuracy of hyaluronan and type III procollagen amino-terminal peptide serum assays as markers of liver fibrosis in chronic viral hepatitis C evaluated by ROC curve analysis. Clin Chem 1996; 42: 558-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268201000010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Lappeg&aring;rd KT, Riesenfeld J, Brekke OL et al. Differential effect of heparin coating and complement inhibition on artificial surface-induced eicosanoid production. Ann Thorac Surg 2005; 79: 917-923.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268201000010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Van den Boom R, van de Lest CH, Bull S, et al. Influence of repeated arthrocentesis and exercise on synovial fluid concentrations of nitric oxide, prostaglandin E2 and glycosaminoglycans in healthy equine joints. Equine Vet J 2005; 37: 250-256.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201000010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Viitanen M, Bird J, Maisi P, et al.  Differences in the concentration of various synovial fluid constituents between the distal interphalangeal joint, the metacarpophalangeal joint and the navicular bursa in normal horses. Res Vet Sci 2000; 69:63-67&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201000010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Popot MA, Bonnaire Y, Gu&eacute;chot J, Toutain PL. Hyaluronan in horses: physiological production rate, plasma and synovial fluid concentrations in control conditions and following sodium hyaluronate administration. Equine Vet J 2004; 36: 482-487.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268201000010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Taylor SE, Weaver MP, Pitsillides AA, Wheeler BT, Wheeler-Jones CP, Shaw DJ, Smith RK. Cartilage oligomeric matrix protein and hyaluronan levels in synovial fluid from horses with osteoarthritis of the tarsometatarsal joint compared to a control population. 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Res Vet Sci 2001; 71:201-206.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268201000010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Brown MP, Trumble TN, Plaas AH, Sandy JD, Romano M, Hernandez J, Merritt KA. Exercise and injury increase chondroitin sulfate chain length and decrease hyaluronan chain length in synovial fluid. Osteoarthritis Cartilage 2007; 15:1318-1325.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268201000010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Pitsillides AA, Worrall JG, Wilkinson LS, Bayliss MT, Edwards JC. Hyaluronan concentration in non-inflamed and rheumatoid synovium. Br J Rheumatol 1994; 33:5-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268201000010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Kawcak CE, Frisbie DD, Trotter GW, McIlwraith CW, Gillette SM, Powers BE, Walton RM. Effects of intravenous administration of sodium hyaluronate on carpal joints in exercising horses after arthroscopic surgery and osteochondral fragmentation. 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Bergin BJ, Pierce SW, Bramlage LR, Stromberg A. Oral hyaluronan gel reduces post operative tarsocrural effusion in the yearling Thoroughbred. Equine Vet J 2006; 38: 375-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268201000010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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