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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Asociación entre receptores de leptina en testículo, niveles de leptina y testosterona en terneros púberes]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Antioquia Facultad de Ciencias Agrarias Grupo de Investigación Biogénesis]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objectives. To describe the presence of leptin receptors (ObR) in the testicle during puberty in calves and study the possible association between the expression of the testicles and the levels of leptin (L) and testosterone. Materials and methods. During 7 months every two weeks on six Holstein x Zebu calves, concentrations of testosterone and L were measured by RIA. They were castrated unilaterally according to their peribubertal periods in order to study by RT-PCR the expression of the L receptor isoforms. The statistical analysis was done with the Statistica® program. Results. The levels of testosterone were <1ng/mL at 6 and 6.5 months of age, concentrations of 5.3 ng/ml at 12.5 months were reached before puberty, moment in which the animals had levels of 4.01±1.8 ng/ml. The L concentrations varied between 0.61 and 0.98 ng/ml, with a concentration at puberty of 0.91±0.05 ng/ml. Two isoforms, OBRi and OBRb, were found and correlated significantly at puberty. Negative correlations were found between OBRi-OBRb and the testosterone and L (p=0.08) levels. Testosterone and L levels showed a significant direct correlation. Conclusions. A possible direct effect of leptin on calf gonads until they reach puberty is suggested. The correlation between the OBR isoforms and their association to leptin and testosterone concentrations also suggests the complimentary or joint action of both OBR receptors in peripubertal calves' gonads.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Gen obesidad]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[male sexual maturation]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">      <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="4">Asociaci&oacute;n entre receptores de leptina en test&iacute;culo, niveles de leptina y testosterona en terneros p&uacute;beres</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3">Association between leptin receptors in the testicle, leptin and testosterone levels in puber male calves</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>    <center>Z.Tatiana Ruiz-Cort&eacute;s,<sup>1</sup>* Ph.D, Martha Olivera A,<sup>1</sup> Dr.Sc.</center></p>     <p><sup>1</sup>Universidad de Antioquia, Facultad de Ciencias Agrarias, Grupo de Investigaci&oacute;n Biog&eacute;nesis, Robledo, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p>     <p>*Correspondencia: <a href="mailto:ztatiana@agronica.udea.edu.co">ztatiana@agronica.udea.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Agosto 10 de 2009; Aceptado: Junio 18 de 2010.</p> <hr size="1" />     <p>&nbsp;</p>       <p><font size="3"><b>Resumen</b></font></p>     <p><b>Objetivos.</b> Describir la presencia de receptores de leptina (OBR) en el test&iacute;culo en la llegada de la pubertad en terneros y estudiar la posible asociaci&oacute;n entre la expresi&oacute;n de &eacute;stos y los niveles de leptina (L)  y de testosterona. <b>Materiales y m&eacute;todos. </b>Se utilizaron 6 terneros Holstein x Ceb&uacute; a los cuales se les midi&oacute; quincenalmente y  durante 7 meses concentraciones de testosterona y de L por RIA. Fueron castrados unilateralmente seg&uacute;n per&iacute;odos peripuberales para estudiar por RT-PCR la expresi&oacute;n de isoformas del receptor de L. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; con el programa Statistica&reg;. <b>Resultados</b>. La testosterona present&oacute; niveles desde menores a 1ng/mL a los 6 y 6.5 meses de edad, hasta concentraciones de 5.3 ng/ml a los 12.5 meses antes de la llegada a pubertad, momento en el cual los animales tuvieron niveles de 4.01&plusmn;1.8 ng/ml. Las concentraciones de L variaron entre 0.61 y 0.98 ng/ml, con una  concentraci&oacute;n en pubertad de 0.91&plusmn;0.05 ng/ml. Dos isoformas, OBRi y OBRb, fueron encontradas y se correlacionaron significativamente entre ellas en la pubertad. Se hallaron correlaciones negativas entre OBRi-OBRb y niveles de testosterona y de L (p=0.08). Los niveles de testosterona y de L mostraron una correlaci&oacute;n directa significativa. <b>Conclusiones</b>. Se sugiere un posible efecto directo de la leptina en g&oacute;nadas de terneros hasta la llegada a pubertad.  La correlaci&oacute;n entre las isoformas de OBR y su asociaci&oacute;n con las concentraciones de leptina y testosterona tambi&eacute;n sugiere la acci&oacute;n complementaria o conjunta de ambos receptores OBR en test&iacute;culos de  terneros peripuberales.</p>      <p><b>Palabras clave: </b>Gen obesidad, hormonas, maduraci&oacute;n sexual machos.</p>  <hr size="1" />     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Abstract</b></font></p>     <p><b>Objectives.</b> To describe the presence of leptin receptors (ObR) in the testicle during puberty in calves and study the possible association between the expression of the testicles and the levels of leptin (L) and testosterone. <b>Materials and methods</b>. During 7 months every two weeks on six Holstein x Zebu calves, concentrations of testosterone and L were measured by RIA. They were castrated unilaterally according to their peribubertal periods in order to study by RT-PCR the expression of the L receptor isoforms. The statistical analysis was done with the Statistica&reg; program. <b>Results.</b> The levels of testosterone were &lt;1ng/mL at 6 and 6.5 months of age, concentrations of 5.3 ng/ml at 12.5 months were reached before puberty, moment in which the animals had levels of 4.01&plusmn;1.8 ng/ml. The L concentrations varied between 0.61 and 0.98 ng/ml, with a concentration at puberty of 0.91&plusmn;0.05 ng/ml. Two isoforms, OBRi and OBRb, were found and correlated significantly at puberty. Negative correlations were found between OBRi-OBRb and the testosterone and L (p=0.08) levels. Testosterone and L levels showed a significant direct correlation. <b>Conclusions. </b>A possible direct effect of leptin on calf gonads until they reach puberty is suggested. The correlation between the OBR isoforms and their association to leptin and testosterone concentrations also suggests the complimentary or joint action of both OBR receptors in peripubertal calves' gonads.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>key words:</b>  Obesity gene, hormone, male sexual maturation.</p>  <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>La leptina es una hormona prote&iacute;nica de 16 KDa, est&aacute; compuesta por 146 amino&aacute;cidos y es sintetizada principalmente por el tejido adiposo.  Esta hormona es codificada por el gen <i>ob</i>, identificado originalmente en estudios conducentes a identificar las causas de la obesidad en el rat&oacute;n obeso (<i>ob/ob</i>) (1).   La leptina act&uacute;a a trav&eacute;s de receptores espec&iacute;ficos de membrana (OBR) los que se han demostrado como altamente similares con los receptores de la familia interleuquina 6 (IL-6) (2-5). Las isoformas de receptores de leptina, incluyen receptores de forma larga (OBRb) y varios receptores de forma corta (OBRa, OBRc, OBRd y OBRf), as&iacute; como el receptor soluble (OBRe) que se encuentra en plasma circulante (5,6).</p>      <p>La prote&iacute;na o el ARNm de receptores de leptina han sido encontrados en gran variedad de tejidos incluyendo tejido adiposo blanco y pardo, p&aacute;ncreas, intestino, h&iacute;gado, m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, placenta, cerebro, gl&aacute;ndula mamaria, corteza adrenal, en el ovario en c&eacute;lulas de la granulosa, c&eacute;lulas de la teca y en cuerpo l&uacute;teo y en test&iacute;culo, en espermatocitos y en c&eacute;lulas de Leydig (2,7-11). </p>     <p>En el  eje hipot&aacute;lamo-hip&oacute;fisis-gonadal, la leptina juega un papel muy importante en la regulaci&oacute;n de la reproducci&oacute;n de los mam&iacute;feros. Act&uacute;a en la regulaci&oacute;n y secreci&oacute;n de la hormona liberadora de gonadotropinas (GnRH) por el hipot&aacute;lamo (12, 13) y en la hip&oacute;fisis modula la secreci&oacute;n de la hormona luteinizante (LH), como sucede en algunas especies animales tales como, cerdos (4, 14),  primates (15), roedores (16), oveja (17) y  bovinos (12).</p>     <p>En las hembras bovinas, la leptina est&aacute; relacionada con la regulaci&oacute;n del ciclo estral y probablemente est&aacute; involucrada en el control de la reproducci&oacute;n. Seg&uacute;n Williams et al (12), la leptina circulante disminuye durante la fase luteal y folicular del ciclo estral, en vacas y novillas sexualmente maduras, variaci&oacute;n concomitante con la variaci&oacute;n en las pulsaciones de LH y las concentraciones s&eacute;ricas de insulina e IGF-1 como reguladores del ciclo estral. </p>     <p>Adem&aacute;s, se ha encontrado en algunos estudios, que las concentraciones sist&eacute;micas de leptina incrementan durante la pubertad en machos y hembras, tanto en humanos (18), como en muchas especies animales: cerdos (19), ratones (20) y ganado bovino (21). Sin embargo, el incremento s&oacute;lo se mantiene en las hembras, porque en los machos los niveles de leptina disminuyen despu&eacute;s de la pubertad (22). El modo de acci&oacute;n de la leptina en la reproducci&oacute;n en los machos ha sido muy discutido por los autores (22-25), indicando que es muy complejo por ejercer efectos tanto inhibitorios como estimulatorios del eje gonadal por ejemplo a nivel del control de la expresi&oacute;n de genes importantes en la v&iacute;a de la esteroidog&eacute;nesis (SF-1, StAR y P450scc); adem&aacute;s, la expresi&oacute;n del receptor OBR muestra patrones igualmente complejos con la presencia de isoformas reguladas de manera hom&oacute;loga (leptina) y heter&oacute;loga (gonadotropinas) (22), se propone que suceder&iacute;a esto seg&uacute;n el momento reproductivo del animal.</p>     <p>El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue describir la presencia de  receptores de leptina (OBR) en el test&iacute;culo en un modelo bovino en la llegada de la pubertad. Se hipotetiza que los OBR aumentan progresivamente su expresi&oacute;n en el test&iacute;culo entre el periodo prepuberal y hasta el inicio de la pubertad de terneros, indicando una posible relaci&oacute;n entre las hormonas leptina y testosterona y un efecto conjunto sobre el inicio de la pubertad. </p>      <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p><b>Zona de estudio. </b>El estudio se realiz&oacute; en la ganader&iacute;a Los Balcones localizada en el municipio de Santa Rosa (departamento de Antioquia-Colombia), a una altitud de 2550 metros, una temperatura promedio de 18&deg;C, una humedad relativa de 79% y una precipitaci&oacute;n media anual de 2238.9 mm, la cual la ubica en una zona de vida bmh-MB. </p>     <p><b>Animales.</b> En el sistema de producci&oacute;n se seleccionaron terneros cruzados F1 (<i>Bos taurus</i> x <i>Bos indicus</i>), nacidos en diferentes &eacute;pocas del a&ntilde;o por la disponiblidad de los animales. Los animales fueron alimentados desde el nacimiento hasta el destete con leche reci&eacute;n orde&ntilde;ada (promedio de este periodo 4.5 lt) en sistema estabulado individual, luego se llevaron a un sistema semi-estabulado con rotaci&oacute;n de potreros a base de pasturas (<i>Penisetum clandestinum</i>, <i>Penisetum clandestinum</i> y <i>Penisetum sp</i>) y de concentrado.  Los animales fueron sometidos al plan sanitario que se realiza en el sistema de producci&oacute;n (desparasitaci&oacute;n 3 veces al a&ntilde;o, vacunas anti Aftosa y triple). </p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del inicio de la pubertad. </b>Para determinar el inicio de la pubertad se tuvieron en cuenta todos los signos siguientes: la edad en meses, el peso corporal en kg, per&iacute;metro tor&aacute;cico en cent&iacute;metros con cinta (26), la circunferencia escrotal en cent&iacute;metros con cinta testicular, la observaci&oacute;n de libido (monta a otros terneros, erecci&oacute;n del pene, inicio de reflejo de Flehmen) todos estos par&aacute;metros medidos cada 15 d&iacute;as.</p>     <p>Adem&aacute;s, se recolectaron muestras de orina y de l&iacute;quido esperm&aacute;tico mensualmente desde la detecci&oacute;n de los signos de llegada a la pubertad descritos (edad, peso, per&iacute;metro testicular, libido).  La muestra de orina se recolect&oacute; por masaje en el prepucio y fue centrifugada a 1800 g a 25&deg;C y por 5 minutos, se recolect&oacute; el precipitado para posteriormente observar la presencia de espermatozoides al microscopio (Leica DME&reg;). </p>     <p>Para la obtenci&oacute;n del eyaculado se estimul&oacute; por masaje prepucial la salida de orina, se lav&oacute; la regi&oacute;n y se procedi&oacute; a  utilizar un electroeyaculador (Electroyac III, Ideal Instruments&reg;) por un tiempo de 40 -60 segundos, con voltaje que oscil&oacute; entre 12 y 20 voltios hasta la expulsi&oacute;n del liquido esperm&aacute;tico. Este se observ&oacute; al microscopio para determinar la presencia de al menos 50 millones de espermatozoide con al menos 10% de motilidad progresiva, con lo que se determin&oacute; finalmente que el animal estuviera en pubertad (27). </p>     <p><b>Per&iacute;odos evaluados. </b>En el experimento se evaluaron tres periodos as&iacute;: a) prepuber (6-8 meses edad), b) prepuber (8-10meses de edad) verificando que estos animales no hubieran iniciado la pubertad al no presentar ninguna de las caracter&iacute;sticas descritas y c) inicio de la pubertad-pubertad (10m-pubertad), al presentar dichos signos. En los 2 momentos prepuber los animales fueron castrados unilateralmente, y en el momento 10 m-pubertad se les castr&oacute; el test&iacute;culo restante. Adem&aacute;s, se recolectaron muestras de sangre a todos los animales desde los 6 meses de edad y hasta detecci&oacute;n de llegada a pubertad, para la evaluaci&oacute;n de testosterona y de leptina en suero. </p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de concentraciones de testosterona y de leptina.</b>  En tubos secos, se recolectaron muestras quincenales de sangre (3-5 ml) de la vena cocc&iacute;gea o yugular  de  los terneros desde los 6 meses de edad hasta la confirmaci&oacute;n del inicio de la pubertad; la sangre se centrifug&oacute; a 1800 g a una temperatura de 25&deg;C por 10 min en una centr&iacute;fuga (IEC Centra GP8&reg;) para la posterior extracci&oacute;n del suero y la medici&oacute;n de testosterona y de leptina por radioinmunoan&aacute;lisis (RIA). Se envi&oacute; la mitad del volumen de  las muestras a la Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute; para medici&oacute;n de testosterona (T) por medio de la t&eacute;cnica de radioinmunoan&aacute;lisis (RIA) con un kit comercial DPC Coat-A Count Total Testosterone&reg;, con sensibilidad anal&iacute;tica para el procedimiento b&aacute;sico de 1 ng/dl y coeficiente de variaci&oacute;n inter-ensayo de aproximadamente 7% (28). La otra mitad del volumen de las muestras de suero fue sometido a liofilizaci&oacute;n y enviado a la Universidad de West Australia para su reconstituci&oacute;n y lectura de leptina (Lept) por la t&eacute;cnica de RIA descrita por otros autores (29,30). </p>     <p><b>Castraciones (para purificaci&oacute;n de ARNtotal y amplificaci&oacute;n de ADN).</b> Se realizaron castraciones unilaterales por grupos; fueron preanestesiados con Xilazine&reg; a una dosis de 0.01 mg/kg v&iacute;a intravenosa (IV) y atropina a una dosis de 0.04 mg/kg subcut&aacute;nea (SC); adicionalmente, se administr&oacute; anestesia local con Lidoca&iacute;na&reg; 3 ml en el cord&oacute;n esperm&aacute;tico. El postoperatorio se realiz&oacute; con la aplicaci&oacute;n de un antibi&oacute;tico de amplio espectro (Penicilina-Estreptomicina) intramuscular (IM) a una dosis de 15000 UI/kg antes del procedimiento quir&uacute;rgico. Todo el procedimiento descrito fue realizado luego de aprobaci&oacute;n del comit&eacute; de bio&eacute;tica de la Universidad de Antioquia (2006), siguiendo los lineamientos de la ley 84 de 1989 acerca del uso de los animales vivos en experimentos o investigaciones.</p>     <p>Los test&iacute;culos se transportaron refrigerados (4&deg;C) en soluci&oacute;n  fosfato <i>buffer</i> (PBS) a pH 7.2 y se almacenaron a -20&deg;C hasta la utilizaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas que determinaron la expresi&oacute;n de receptores de leptina. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Purificaci&oacute;n y an&aacute;lisis del ARN (para RT-PCR).</b>  El ARN total fue purificado usando un Kit de aislamiento de ARN comercial (RNeasy Fibrous Tissue - Qiagen&reg;); para la s&iacute;ntesis de la primera cadena de cADN se usaron 5 &micro;g de ARN en un volumen total de reacci&oacute;n de 20 &micro;l los cuales conten&iacute;an Tris-HCl, KCl, MgCl<sub>2</sub>, DTT, dNTPs, Transcriptasa reversa (RevertAid<sup>&trade;</sup> M-MuLV Fermentas), y como primer se uso Oligo (dT)<sub>18</sub> (Fermentas&reg;), para confirmaci&oacute;n de la RT-PCR el producto fue visualizado en un gel de agarosa al 1.5% conteniendo Bromuro de Etidio (0.7 &micro;g/mL).</p>      <p><b>Amplificaci&oacute;n del ADN.</b>  Las reacciones de PCR se llevaron a cabo en un volumen total de 50 &micro;l, que conten&iacute;an: 3 &micro;g/mL de cADN; <i>buffer</i> de reacci&oacute;n 1X (10 mM Tris-HCl pH 9.0; 50 mM KCl; 1.1% Trit&oacute;n&reg; X-100);1 mM de MgCl2; 2 mM de cada dNTP; 0.1 &micro;M de cada primer y 1.25 Unidades de Taq DNA Polimerasa (Fermentas&reg;).  La amplificaci&oacute;n se efectu&oacute; en un termociclador PTC-200 (MJ Research Peltier Termal Cycler).  Para la amplificaci&oacute;n del receptor de leptina bovina (OBR) (acceso n&uacute;mero U62385) fueron utilizados los primer: sentido (1-25) 5&#39;-GTGCCAGCAACTACAGATGCTCTAC-3&#39; y primer antisentido (356-380), &#39;5-AGTTCATCCAGGCCTTCTGAGAACG-3&#39; que codifican para el fragmento extracelular del receptor, sintetizados por MWG BIOTECH los cuales amplifican 2 fragmentos de 300 y 700 de pb aproximadamente (isoformas intermedia-OBRi y larga-OBRb). </p>     <p>Como gen de referencia se utiliz&oacute; aquel que codifica para la enzima gliceraldehido 3 fosfato deshidrogenasa (GAPDH) (acceso n&uacute;mero U85042.1) para normalizar la expresi&oacute;n del receptor por medio del c&aacute;lculo de la relaci&oacute;n OBR/GAPDH. Los primers de la enzima GAPDH fueron los siguientes: sentido 5&#39;-TGCTGGTGCTGAGTATGTGGT-3&#39; y primer antisentido 5&#39;-AGTCTTCTGGGTGGCAGTGAT-3&#39;, sintetizados por MWG BIOTECH los cuales amplifican un fragmento de 295 pb.  El perfil t&eacute;rmico para cada reacci&oacute;n consisti&oacute; en una desnaturalizaci&oacute;n inicial de 94&deg;C por 3 min seguido por 45 ciclos a 94&deg;C por 1 min, 65&deg;C por 1 min, 72&deg;C por 2 min, terminando con una extensi&oacute;n final de 72&deg;C por 10 min. Los productos de la PCR fueron visualizados en geles de agarosa al 2% conteniendo Bromuro de Etidio (0.7 &micro;g/mL). </p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b>  El paquete estad&iacute;stico utilizado fue Statistica&reg; para Windows 5.0, (1995) y los datos fueron presentados en promedios y desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE).  Las variables analizadas fueron: hormonas testosterona y L en ng/ml y la expresi&oacute;n de isoformas del receptor de leptina (OBRi, OBRb) cuantificado en unidades arbitrarias.  Esto &uacute;ltimo se realiz&oacute; con la normalizaci&oacute;n de los datos de expresi&oacute;n de las isoformas dividido en los datos de expresi&oacute;n  del gen de referencia GAPDH, es decir obteniendo el coeficiente: expresi&oacute;n de isoforma numerizado/expresi&oacute;n de GAPDH numerizado, numerizaciones realizadas con el programa Biometra/BioDocAnalyser 2.0&reg;. </p>     <p>A cada una de las variables se le verific&oacute; normalidad de distribuci&oacute;n de datos (Shapiro Wilk&#39;s W test); las variables de expresi&oacute;n de receptores OBR y de niveles de T fueron transformados a ra&iacute;z cuadrada de los datos originales y alcanzaron normalidad; luego se realizaron an&aacute;lisis estad&iacute;sticos descriptivos. Tras comprobaci&oacute;n de homogeneidad de varianzas (Levene), los niveles de receptores de leptina encontrados fueron analizados por ANAVA. Las diferencias entre promedios fueron comparadas por el test de Tukey con un nivel de significancia de (p&lt;0.05). Correlaciones entre niveles de expresi&oacute;n  de  receptores y entre receptores y niveles hormonales fueron analizados por medio del coeficiente de Spearman. Un valor de (p&lt;0.05) fue considerado estad&iacute;sticamente significativo.</p>      <p><font size="3"><b>Resultados</b></font></p>     <p><b>Testosterona en per&iacute;odo prepuber.</b>  Los niveles de testosterona presentaron niveles detectables de 1 ng/mL desde los 7.5 meses de edad con pulsos repetidos cada mes (pulsos de amplitud similar) y hasta los 11.5 meses de edad, esto es, en el per&iacute;odo prepuber.  Luego, se encontr&oacute; un aumento marcado en la amplitud del pulso de testosterona con concentraci&oacute;n m&aacute;xima de 5.3 ng/mL, 1 a 2 semanas antes del inicio de la pubertad, seguido de ca&iacute;da de los niveles hacia los 13.5 meses de edad (<a href="#fig1">Figura 1</a>). </p>     <p align="center"><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n3/v15n3a08f1.jpg"></p>     <p><b>Pubertad y testosterona. </b>Cuando todos los animales estaban en un rango de edad entre 11.5 y 13.5 meses (promedio 12.75&plusmn;1.06), con promedio de peso de 282.8Kg &plusmn;45.1, per&iacute;metro tor&aacute;cico de 149.5&plusmn;9 cm, circunferencia escrotal de 22.3&plusmn;1.7 cm  y niveles de testosterona de 4.01&plusmn;1.2 ng/mL (<a href="#fig1">Figura 1</a>) se determin&oacute; la llegada de la pubertad. Esto se corrobor&oacute; adem&aacute;s porque los terneros mostraron reflejo de protrusi&oacute;n de pene (desprendimiento del prepucio) al realizarse masaje, salida de una cantidad m&iacute;nima de l&iacute;quido seminal con espermatozoides, y presencia de espermatozoides en orina. Se observ&oacute; igualmente  la monta a otros terneros, erecci&oacute;n del pene, inicio de reflejo de Flehmen (datos no mostrados). </p>     <p><b>Niveles de leptina.</b> Las concentraciones de L no presentaron variaci&oacute;n importante durante el per&iacute;odo de muestreo (desde 6 meses y hasta 13.5 meses de edad).  Se encontraron dentro de un rango de   0.61  y 0.98 ng/mL y la concentraci&oacute;n a la pubertad fue de 0.91&plusmn;0.05 ng/mL. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Expresi&oacute;n de OBR en per&iacute;odos prepuber y en pubertad.</b>  Seg&uacute;n los oligonucle&oacute;tidos o primers  seleccionados, se detectaron 2 isoformas del receptor de leptina a las que se denominaron, seg&uacute;n el peso molecular, forma larga OBRb (aprox. 700pb) y OBR intermedia (aprox. 300pb; <a href="#fig2">Figura 2</a>).  La amplificaci&oacute;n del gen GAPDH result&oacute; en un fragmento de 295pb claramente visible en la figura 2.  Luego de realizar normalizaci&oacute;n de la carga de muestras experimentales en los geles por medio del c&aacute;lculo de su coeficiente con el fragmento numerizado del gen referencia GAPDH, se encontr&oacute; diferencia estad&iacute;stica (p&lt;0.05) entre la expresi&oacute;n del ADN de la isoforma OBR  en las muestras de los terneros y aquella expresi&oacute;n en el tejido control positivo (test&iacute;culo de animal adulto) se trata de una mayor expresi&oacute;n en las muestras de terneros en de los grupos 6-8, 8-10 y P, comparando con dicho control <a href="#fig2">(Figura 2</a>). La isoforma OBRb, presenta un patr&oacute;n similar con una mayor expresi&oacute;n de OBRb en las muestras experimentales comparativo al control (<a href="#fig2">Figura 2</a>) pero sin diferencia estad&iacute;stica (p=0.08). </p>      <p align="center"><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/mvz/v15n3/v15n3a08f2.jpg"></p>      <p><font size="3"><b>Discusi&oacute;n </b></font></p>     <p><b>Niveles de testosterona</b></p>     <p><b>Testosterona en per&iacute;odo prepuber. </b>Cambios en la secreci&oacute;n epis&oacute;dica de GnRH regula la secreci&oacute;n de gonadotropinas LH y FSH en terneros prep&uacute;beres lo que finalmente regula la funci&oacute;n testicular. Ha sido ampliamente documentado desde hace m&aacute;s de tres d&eacute;cadas, que la amplitud y la frecuencia de los pulsos de LH cambian con el estado reproductivo del macho, que la secreci&oacute;n de LH y de testosterona es epis&oacute;dica y que existe una relaci&oacute;n temporal entre estas dos hormonas en el toro (31).  La liberaci&oacute;n de LH desde las semanas 8 a  10 de edad estimula la secreci&oacute;n permanente de testosterona por las c&eacute;lulas de Leydig que llega a niveles m&aacute;ximos hacia los 10 meses de edad de los terneros (31). M&aacute;s recientemente, Rawlings et al (27) describen una fase de crecimiento r&aacute;pido del test&iacute;culo y de gl&aacute;ndula sexuales accesorias dependientes de andr&oacute;genos en terneros luego del mes 5 de edad y hasta el mes 12,  concomitante al aumento r&aacute;pido progresivo de la secreci&oacute;n de testosterona.</p>     <p>En el presente estudio se encontr&oacute; que la liberaci&oacute;n epis&oacute;dica de testosterona se present&oacute; en forma de pulsos mensuales desde el mes 8 de edad y hasta el mes 12 iniciando la pubertad (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>     <p><b>Pubertad y testosterona.</b> Los valores de edad, peso corporal, circunferencia escrotal y niveles de testosterona aqui presentados fueron anteriormente reportados hasta la pubertad para toretes venezolanos 5/8 Holstein y 5/8 Pardo Suizo con 5/16 de Ceb&uacute; Brahman en ambos cruces (32), es decir en cruces entre <i>Bos taurus</i> y <i>Bos indicus</i> como lo utilizado en el presente estudio. La &uacute;nica variable que present&oacute; datos similares a los del presente estudio fue la de circunferencia escrotal entre  22 y 23 cm. Es de notar que aunque la circunferencia escrotal esta referenciada como signo de llegada a pubertad que var&iacute;a seg&uacute;n las razas, se ha determinado como valor de referencia de llegada de pubertad un valor de 28 cm, valor que sobrepasa los anteriormente mencionados (27).</p>     <p>Para la variable de edad a la pubertad, los animales del presente estudio parecieron ser m&aacute;s precoces en 2 meses comparando con Aranguren-M&eacute;ndez et al (32), sumado esto a niveles de testosterona marcadamente m&aacute;s altos (4.01 ng/ml en promedio vs. 1.7 ng/ml). </p>     <p>Comparando con una referencia menos reciente de cruces de <i>Bos taurus</i> (Angus, Hereford y Pardo Suizo) (33), las concentraciones de testosterona aqui obtenidas ser&iacute;an relativamente bajas ya que los autores informan de rangos entre 4.3  y 7.3  ng/ml medidos ente 7 y 13 meses de edad. Por otro lado,  los niveles de testosterona que se encontraron entre 1 y 5.3 ng/mL est&aacute;n en concordancia con lo reportado en 2007 por Brito et al  (34).</p>     <p>Es de inter&eacute;s resaltar que los animales a los que les fue extra&iacute;do el primer test&iacute;culo a partir del mes 6 de edad, llegaron a la pubertad m&aacute;s r&aacute;pido (11.75&plusmn;0.2) que aquellos con primera castraci&oacute;n en el octavo mes (12.8&plusmn;0.9). Respectivamente, presentaron niveles promedio de testosterona en todo el tiempo de medici&oacute;n de 0.6&plusmn;0.3 y 1.6&plusmn;0.5, con menor concentraci&oacute;n en animales castrados tempranamente. Se sugiere que se tratar&iacute;a de animales, que de manera compensatoria luego de la castraci&oacute;n unilateral, son m&aacute;s sensibles a niveles bajos de testosterona y alcanzan pesos corporales y per&iacute;metros tor&aacute;cicos relacionados con el crecimiento corporal suficiente para iniciar pubertad a los 11.75 meses de edad.  Sin embargo, esto es contrario a estudios de Barnes et al (35) donde terneros Holstein castrados unilateralmente mostraron de manera compensatoria incremento en el tama&ntilde;o del test&iacute;culo restante pero ninguna variaci&oacute;n significativa en niveles de testosterona ni llegada a la pubertad m&aacute;s temprana al comparar con terneros control enteros (35,36).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Niveles de leptina. </b>Se public&oacute; previamente (34) que terneros prep&uacute;beres <i>AngusxCharolais</i>, presentan niveles de leptina que aumentan constantemente desde los 6.5 meses de edad de concentraciones de 2 ng/mL hasta niveles de 5 ng/mL a los 16.5 meses de edad pasando por el per&iacute;odo de pubertad a los 11.5 meses con 4.5 ng/mL.</p>          <p>En el presente trabajo, la variaci&oacute;n m&iacute;nima de leptina podr&iacute;a verse compensada por una expresi&oacute;n importante de 2 isoformas de su receptor (<a href="#fig2">Figura 2</a>) como se describe en m&aacute;s detalle adelante. Adem&aacute;s, es de notar que los niveles de la hormona encontrados por los autores (34), no es comparable  a las bajas concentraciones descritas en el presente estudio entre 0.61 y 0.98 ng/mL. </p>     <p>En efecto, se debe considerar la mayor frecuencia con que se realiz&oacute; el muestreo y el m&eacute;todo de medici&oacute;n utilizado, ya que no se us&oacute; kit multiespecie (multi-species leptin RIA kit, Linco Research, St Charles MO, USA) pero si el m&eacute;todo espec&iacute;fico creado en Australia (RIA) basado en leptina bovina-ovina con mayor sensibilidad (29,30).</p>     <p><b>Expresi&oacute;n de OBR en per&iacute;odos prepuber y en pubertad.</b>  Estos receptores de leptina y su RNAm en test&iacute;culo han sido encontrados en c&eacute;lulas de Leydig de rata (23,37-39) y en equinos (40), en plasma seminal, espermatozoides (41,42), y en t&uacute;bulos semin&iacute;feros de humanos (42) y m&aacute;s recientemente en m&uacute;ltiples tejidos en bovinos (11).  En este estudio se reporta igualmente expresi&oacute;n de 2 isoformas. La expresi&oacute;n de ambas isoformas de OBR se correlacionaron positivamente  (r=0.82, p&lt;0.01) en todos los terneros, sugiriendo posibles v&iacute;as de acci&oacute;n complementarias o conjuntas entre ellas para regular las acciones perif&eacute;ricas de la leptina como lo reportado recientemente en bovinos (11) y en otros sistemas (43).  Los niveles de testosterona y de L presentan una correlaci&oacute;n negativa con la expresi&oacute;n de OBRi y de OBRb (p&gt;0.05),  sugiriendo que a mayores niveles de testosterona, menor expresi&oacute;n de los receptores de leptina en test&iacute;culo. </p>     <p>Tena-Sempere et al (38), estudiaron el desarrollo y la regulaci&oacute;n hormonal del RNAm del OBR en test&iacute;culo de rata, planteando la posibilidad de un efecto directo de los estr&oacute;genos en test&iacute;culos en desarrollo (neonatos) sobre la modulaci&oacute;n de la expresi&oacute;n del gene OBR.  Durante el periodo de desarrollo testicular puberal, encuentran un aumento de la expresi&oacute;n de receptores, como los encontrados y plantean los autores, se explicar&iacute;a por el efecto de hormonas como la leptina, la hCG y la FSH; finalmente, encuentran disminuci&oacute;n de la expresi&oacute;n en animales adultos. Se propone que en este estudio tambi&eacute;n habr&iacute;a efecto de los niveles de testosterona en la regulaci&oacute;n de expresi&oacute;n de estos receptores.</p>     <p>Los pocos estudios que se han realizado usando el modelo bovino, han sido en hembras y m&aacute;s a nivel central que local (12), en machos bovinos no se han realizado estudios que expliquen el rol de la leptina en la pubertad. </p>     <p>En el presente trabajo se sugieren interesantes efectos locales de la leptina relacionados con el inicio de la pubertad y aunque se haya reportado anteriormente que tratamientos ex&oacute;genos con leptina recombinante para lograr este efecto han sido infructuosos (44), futuros usos terap&eacute;uticos con leptina recombinante que aborden diferentes estadios nutricionales y que tengan  en cuenta la identificaci&oacute;n de marcadores para genotipificaci&oacute;n de la resistencia a la leptina deber&iacute;an investigarse en el macho.</p>     <p>En conclusi&oacute;n, exite expresi&oacute;n de receptores de leptina en test&iacute;culo de bovinos prep&uacute;beres y presentan la tendencia a aumentar mientras se acerca la pubertad. Esto podr&iacute;a indicar un posible rol de la leptina hacia la llegada de la pubertad. La regulaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de estos receptores est&aacute; dada por un gran n&uacute;mero de factores, entre ellos  posiblemente, los niveles de testosterona circulantes, aunque har&iacute;an falta estudios con mediciones peri&oacute;dicas de los receptores y de la hormona para verificar este supuesto. La expresi&oacute;n de 2 isoformas del gene de OBR hacia la llegada a la pubertad en bovinos sugiere una posible actividad conjunta y/o complementaria de estos 2 receptores para que la leptina desencadene sus efectos, pero se necesitan mayores estudios a nivel molecular y de v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n para dilucidar este fen&oacute;meno.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>A Colciencias-Colombia, proyecto 115-12-16774, por la financiaci&oacute;n del proyecto.  A la ganader&iacute;a Los Balcones y su propietario por el mantenimiento de los animales del experimento.</p> <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>1.	Zhang Y, Proenca R, Maffei M, Barone M, Leopold L, Friedman JM. Positional cloning of the mouse obese gene and its human homologue. Nature 1994; 372:425-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0122-0268201000030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.	Bartha T, Sayed-Ahmed A, Rudas P. Expression of leptin and its receptors in various tissues of ruminants. Domest Anim Endocrinol 2005; 29:193-202.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0122-0268201000030000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.	Houseknecht KL, Portocarrero CP. Leptin and its receptors: regulators of whole-body energy homeostasis. Domest Anim Endocrinol 1998; 15:457-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0122-0268201000030000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4.	Barb CR, Hausman GJ, Houseknecht KL. Biology of leptin in the pig. Domest Anim Endocrinol 2001; 21:297-317.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0122-0268201000030000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5.	Tartaglia LA. The leptin receptor. J Biol Chem 1997; 272:6093-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0122-0268201000030000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.	Tartaglia LA, Dembski M, Weng X, Deng N, Culpepper J, Devos R, et al. Identification and expression cloning of a leptin receptor, OB-R. Cell 1995; 83:1263-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0122-0268201000030000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7.	Schneider JE, Zhou D, Blum RM. Leptin and metabolic control of reproduction. Horm Behav 2000; 37:306-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0122-0268201000030000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8.	Spicer LJ. Leptin: a possible metabolic signal affecting reproduction. Domest Anim Endocrinol 2001; 21:251-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0122-0268201000030000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.	Ruiz-Cortes ZT, Martel-Kennes Y, Gevry NY, Downey BR, Palin MF, Murphy BD. Biphasic effects of leptin in porcine granulosa cells. Biol Reprod 2003; 68:789-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0122-0268201000030000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.	Ruiz-Cortes ZT, Men T, Palin MF, Downey BR, Lacroix DA, Murphy BD. Porcine leptin receptor: molecular structure and expression in the ovary. Mol Reprod Dev 2000; 56:465-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0122-0268201000030000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.	Kawachi H, Yang SH, Hamano A, Matsui T, Smith SB, Yano H. Molecular cloning and expression of bovine (<i>Bos taurus</i>) leptin receptor isoform mRNAs. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol 2007; 148:167-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201000030000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.	Williams GL, Amstalden M, Garcia MR, Stanko RL, Nizielski SE, Morrison CD, Keisler DH. Leptin and its role in the central regulation of reproduction in cattle. Domest Anim Endocrinol 2002; 23:339-49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201000030000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.	Barb CR, Kraeling RR. Role of leptin in the regulation of gonadotropin secretion in farm animals. Anim Reprod Sci 2004; 82-83:155-67.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0122-0268201000030000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.	Barb CR, Barrett JB, Kraeling RR, Rampacek GB. Serum leptin concentrations, luteinizing hormone and growth hormone secretion during feed and metabolic fuel restriction in the prepuberal gilt. Domest Anim Endocrinol 2001; 20:47-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0122-0268201000030000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.	Kaynard AH, Pau KY, Hess DL, Spies HG. Third-ventricular infusion of neuropeptide Y suppresses luteinizing hormone secretion in ovariectomized rhesus macaques. Endocrinology 1990; 127:2437-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268201000030000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.	Kalra SP. Mandatory neuropeptide-steroid signaling for the preovulatory luteinizing hormone-releasing hormone discharge. Endocr Rev 1993; 14:507-38.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0122-0268201000030000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.	Malven PV, Haglof SA, Degroot H. Effects of intracerebral administration of neuropeptide-Y on secretion of luteinizing hormone in ovariectomized sheep. Brain Res Bull 1992; 28:871-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0122-0268201000030000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.	Horlick MB, Rosenbaum M, Nicolson M, Levine LS, Fedun B, Wang J, Pierson RN, Jr., Leibel RL. Effect of puberty on the relationship between circulating leptin and body composition. J Clin Endocrinol Metab 2000; 85:2509-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268201000030000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.	Qian H, Barb CR, Compton MM, Hausman GJ, Azain MJ, Kraeling RR, Baile CA. Leptin mRNA expression and serum leptin concentrations as influenced by age, weight, and estradiol in pigs. Domest Anim Endocrinol 1999; 16:135-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0122-0268201000030000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.	Cheung CC, Thornton JE, Kuijper JL, Weigle DS, Clifton DK, Steiner RA. Leptin is a metabolic gate for the onset of puberty in the female rat. Endocrinology 1997; 138:855-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0122-0268201000030000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.	Garcia MR, Amstalden M, Williams SW, Stanko RL, Morrison CD, Keisler DH, Nizielski SE, Williams GL. Serum leptin and its adipose gene expression during pubertal development, the estrous cycle, and different seasons in cattle. J Anim Sci 2002; 80:2158-67.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268201000030000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.	Tena-Sempere M, Barreiro ML. Leptin in male reproduction: the testis paradigm. Mol Cell Endocrinol 2002; 188:9-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0122-0268201000030000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.	Tena-Sempere M, Manna PR, Zhang FP, Pinilla L, Gonzalez LC, Dieguez C, Huhtaniemi I, Aguilar E. Molecular mechanisms of leptin action in adult rat testis: potential targets for leptin-induced inhibition of steroidogenesis and pattern of leptin receptor messenger ribonucleic acid expression. J Endocrinol 2001; 170:413-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0122-0268201000030000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.	Tena-Sempere M, Pinilla L, Gonzalez LC, Navarro J, Dieguez C, Casanueva FF, Aguilar E. In vitro pituitary and testicular effects of the leptin-related synthetic peptide leptin(116-130) amide involve actions both similar to and distinct from those of the native leptin molecule in the adult rat. Eur J Endocrinol 2000; 142:406-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268201000030000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25.	Tena-Sempere M, Pinilla L, Gonzalez LC, Dieguez C, Casanueva FF, Aguilar E. Leptin inhibits testosterone secretion from adult rat testis in vitro. J Endocrinol 1999; 161:211-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0122-0268201000030000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26.	Souza CE, Araujo AA, Oliveira JT, Lima Souza AC, Neiva JN, Moura AA. Reproductive development of Santa Ines rams during the first year of life: body and testis growth, testosterone concentrations, sperm parameters, age at puberty and seminal plasma proteins. Reprod Domest Anim 2010; 45:644-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268201000030000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27.	Rawlings N, Evans AC, Chandolia RK, Bagu ET. Sexual maturation in the bull. Reprod Domest Anim 2008; 43 Suppl 2:295-301.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268201000030000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28.	Price CA. Evidence that testosterone and follicular fluid do not interact in the control of FSH secretion in rams. Theriogenology 1994; 41:471-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268201000030000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29.	Kadokawa H, Briegel JR, Blackberry MA, Blache D, Martin GB, Adams NR. Relationships between plasma concentrations of leptin and other metabolic hormones in GH-transgenic sheep infused with glucose. Domest Anim Endocrinol 2003; 24:219-29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268201000030000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30.	Blache D, Tellam RL, Chagas LM, Blackberry MA, Vercoe PE, Martin GB. Level of nutrition affects leptin concentrations in plasma and cerebrospinal fluid in sheep. J Endocrinol 2000; 165:625-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268201000030000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31.	Finnerty M, Enright WJ, Roche JF. Testosterone, LH and FSH episodic secretory patterns in GnRH-immunized bulls. J Reprod Fertil 1998; 114:85-94.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268201000030000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32.	Aranguren-M&eacute;ndez J, Madrid-Bury N, Gonz&aacute;lez-Stagnaro C, Isea Villasmil W. Evaluaci&oacute;n comparativa postpuberal de toretes mestizos 5/8 <i>Bos taurus</i>. 2. Comportamiento Reproductivo. Arch Latinoam Prod Anim 1997; 5:347-49.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0122-0268201000030000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33.	Lunstra DD, Ford JJ, Echternkamp SE. Puberty in beef bulls: hormone concentrations, growth, testicular development, sperm production and sexual aggressiveness in bulls of different breeds. J Anim Sci 1978; 46:1054-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0122-0268201000030000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34.	Brito L, Barth A, Rawlings N, Wilde R, Crews D, Jr., Mir P, Kastelic J. Circulating metabolic hormones during the peripubertal period and their association with testicular development in bulls. Reprod Domest Anim 2007; 42:502-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0122-0268201000030000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35.	Barnes MA, Longnecker JV, Charter RC, Riesen JW, Woody CO. Influence of unilateral castration and increased plane of nutrition on sexual development of Holstein bulls. I. Growth and sperm production. Theriogenology 1980a; 14:49-58.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0122-0268201000030000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36.	Barnes MA, Longnecker JV, Riesen JW, Woody CO. Influence of unilateral castration and increased plane of nutrition on sexual development of Holstein bulls. III. Endocrine responses. Theriogenology 1980b; 14:67-81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0122-0268201000030000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37.	Caprio M, Isidori AM, Carta AR, Moretti C, Dufau ML, Fabbri A. Expression of functional leptin receptors in rodent Leydig cells. Endocrinology 1999; 140:4939-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0122-0268201000030000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38.	Tena-Sempere M, Pinilla L, Zhang FP, Gonzalez LC, Huhtaniemi I, Casanueva FF, Dieguez C, Aguilar E. Developmental and hormonal regulation of leptin receptor (Ob-R) messenger ribonucleic acid expression in rat testis. Biol Reprod 2001; 64:634-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0122-0268201000030000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39.	Caprio M, Fabbrini E, Ricci G, Basciani S, Gnessi L, Arizzi M, Carta AR, De Martino MU, Isidori AM, Frajese GV, Fabbri A. Ontogenesis of leptin receptor in rat Leydig cells. Biol Reprod 2003; 68:1199-207.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0122-0268201000030000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40.	Buff PR, Dodds AC, Morrison CD, Whitley NC, McFadin EL, Daniel JA, Djiane J, Keisler DH. Leptin in horses: tissue localization and relationship between peripheral concentrations of leptin and body condition. J Anim Sci 2002; 80:2942-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0122-0268201000030000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41.	Jope T, Lammert A, Kratzsch J, Paasch U, Glander HJ. Leptin and leptin receptor in human seminal plasma and in human spermatozoa. Int J Androl 2003; 26:335-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0122-0268201000030000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42.	Glander HJ, Lammert A, Paasch U, Glasow A, Kratzsch J. Leptin exists in tubuli seminiferi and in seminal plasma. Andrologia 2002; 34:227-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0122-0268201000030000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43.	Uotani S, Abe T, Yamaguchi Y. Leptin activates AMP-activated protein kinase in hepatic cells via a JAK2-dependent pathway. Biochem Biophys Res Commun 2006; 351:171-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0122-0268201000030000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44.	Maciel MN, Zieba DA, Amstalden M, Keisler DH, Neves JP, Williams GL. Chronic administration of recombinant ovine leptin in growing beef heifers: effects on secretion of LH, metabolic hormones, and timing of puberty. J Anim Sci 2004; 82:2930-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0122-0268201000030000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p></p> </font>      ]]></body><back>
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