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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Ingestión de lípidos oxidados: efecto sobre actividad enzimática antioxidativa en trucha arcoiris Oncorhynchus mykiss (Walbaum)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Oxidized lipids intake: effect on antioxidative enzimatic activity in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To determine the effect, of different oxidation level of lipid, ingested for a period of 20 and 90 days on Catalase (CAT), Superoxide dismutase (SOD) and Glutathione peroxidase (GPx) activities in hepatical and gastrointestinal tissues. Materials and methods. Peroxide Value (PV) and Anisidine Value (AV) were used to detect products of lipidic oxidation in feeds. Data were analyzed using an split plot design and analysis of variance (ANOVA). Means were compared with Tukey test (5%). Results. All rations offered showed high peroxides and secondary products of oxidation levels during all assay and in most cases there were significant differences of oxidative quality between dietary treatments (p&#8804;0.05). SOD activity showed decreasing levels in liver for both exposure periods, however, in GIT was generated a significant increase in SOD activity (175%) across time in the individuals subjected to all treatments. CAT activity showed high correlation level with SOD activity for the two periods of exposure and in both organs. Conclusions. GPx activity showed differences for both exposition periods in liver and at 90 day in GIT, indicating high sensitivity of the enzyme to peroxides intake. In all cases were high correlation coefficients (>0.95), suggesting that GIT-GPx activity is a good indicator of the lipid oxidative status of rations.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Aceites de pescado]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">       <p align="right"><b>ORIGINAL</b></p>     <p align="center"><b><font size="4">Ingesti&oacute;n de l&iacute;pidos oxidados: efecto sobre actividad enzim&aacute;tica antioxidativa en trucha arcoiris    <i>Oncorhynchus mykiss</i> (Walbaum)</font></b></p>      <p align="center"><b><font size="3">Oxidized lipids intake: effect on antioxidative enzimatic activity in rainbow trout <i>Oncorhynchus mykiss</i> (Walbaum) </font></b></p>      <p>    <center>Jorge Zambrano N,<sup>1*</sup> Zoot, Miguel Landines P,<sup>1</sup> Ph.D.</center></p>      <br>     <p><sup>1</sup>Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Laboratorio de Fisiolog&iacute;a de Peces. Bogot&aacute;, Colombia. </p>     <p><sup>*</sup>Correspondencia: <a href="mailto:jazambranon@unal.edu.co">jazambranon@unal.edu.co</a></p>     <p>Recibido: Junio de 2010: Aceptado: Agosto de 2011.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">Resumen</font></b></p>     <p><b>Objetivo. </b>Evaluar el efecto de la ingesti&oacute;n de l&iacute;pidos durante per&iacute;odos cortos (20 d&iacute;as) y largos (90 d&iacute;as) sobre la actividad hep&aacute;tica y en tracto gastrointestinal (TGI) de las enzimas catalasa (CAT), super&oacute;xido dismutasa (SOD) y glutati&oacute;n peroxidasa (GPx). <b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se utiliz&oacute; el &iacute;ndice per&oacute;xidos (VP) y el &iacute;ndice anisidina (VA) para detectar la presencia de productos de la oxidaci&oacute;n en las raciones. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza bajo un modelo de parcelas divididas en el tiempo. Cuando se encontraron diferencias (p&lt;0.05) las medias fueron comparadas mediante la prueba de Tukey (5%). <b>Resultados.</b> Las raciones presentaron altos niveles de oxidaci&oacute;n durante todo el experimento y  hubo diferencias significativas entre tratamientos. La actividad SOD present&oacute; niveles decrecientes a nivel hep&aacute;tico durante los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n, sin embargo, en TGI se gener&oacute; un incremento significativo de actividad SOD (175%) en individuos sometidos a todos los tratamientos. La actividad CAT present&oacute; un alto nivel de correlaci&oacute;n con la actividad SOD en todos los per&iacute;odos de exposici&oacute;n y &oacute;rganos. La actividad GPx present&oacute; diferencias significativas para los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n en h&iacute;gado y al d&iacute;a 90 en TGI, indicando alta sensibilidad de la enzima ante la ingesti&oacute;n de per&oacute;xidos. <b>Conclusiones.</b> La actividad GPx en TGI mostr&oacute; coeficientes de correlaci&oacute;n superiores a 0.95, sugiriendo que es buen indicador del estado oxidativo de las raciones.</p>      <p><b>Palabras clave:</b>Aceites de pescado, catalasa, glutati&oacute;n peroxidasa, super&oacute;xido dismutasa, oxidaci&oacute;n (<i>Fuente: CAB</i>).</p>   <hr>     <p><b><font size="3">Abstract</font></b></p>     <p><b>Objective. </b>To determine the effect, of different oxidation level of lipid, ingested for a period of 20 and 90 days on Catalase (CAT), Superoxide dismutase (SOD) and Glutathione peroxidase (GPx) activities in hepatical and gastrointestinal tissues. <b>Materials and methods.</b> Peroxide Value (PV) and Anisidine Value (AV) were used to detect products of lipidic oxidation in feeds. Data were analyzed using an split plot design and analysis  of variance (ANOVA). Means were compared with Tukey test (5%). <b>Results.</b> All rations offered showed high peroxides and secondary products of oxidation levels during all assay and in most cases there were significant differences of oxidative quality between dietary treatments (p&le;0.05). SOD activity showed decreasing levels in liver for both exposure periods, however, in GIT was generated a significant increase in SOD activity (175%) across time in the individuals subjected to all treatments. CAT activity showed high correlation level with SOD activity for the two periods of exposure and in both organs. <b>Conclusions.</b> GPx activity showed differences for both exposition periods in liver and at 90 day in GIT, indicating high sensitivity of the enzyme to peroxides intake. In all cases were high correlation coefficients (&gt;0.95), suggesting that GIT-GPx activity is a good indicator of the lipid oxidative status of rations.</p>      <p><b>Key words:</b> Equines, LDL cholesterol, lipids, HDL lipoproteins, metabolic pathways. <i>(Source: CAB, DeCS). </i></p>   <hr>     <p><b><font size="3">Introducci&oacute;n</font></b></p>     <p>La acuicultura es el sector productivo de mayor crecimiento en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas a nivel mundial y en Colombia (1). Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han alcanzado notables desarrollos en los campos biotecnol&oacute;gico, reproductivo, nutricional y de manejo acu&iacute;cola que han permitido la expansi&oacute;n y consolidaci&oacute;n de esta actividad a nivel nacional. </p>      <p>La trucha arco&iacute;ris (<i>Oncorhynchus mykiss</i>) es un salm&oacute;nido originario de los tributarios del r&iacute;o Sacramento en California, Norteam&eacute;rica; su crecimiento &oacute;ptimo en sistemas de producci&oacute;n de carne se da entre 13 y 18&deg;C. Ocupa el tercer lugar entre las especies pisc&iacute;colas cultivadas en Colombia (1), contribuye con el 1% de la producci&oacute;n global acu&iacute;cola total y con el 1.7% de la producci&oacute;n global en aguas continentales (2). Esta especie requiere altos niveles de inclusi&oacute;n de aceite de pescado en las raciones para satisfacer sus requerimientos de &aacute;cidos grasos poli-insaturados de la serie omega 3 (AGPI n-3). Actualmente la industria productora de alimentos balanceados para trucha arco&iacute;ris maneja niveles de inclusi&oacute;n de l&iacute;pidos cercanos al 15% con el objetivo de mejorar las tasas de conversi&oacute;n alimenticia (FCA) e incrementar las concentraciones de AGPI n-3 en los filetes (3). La inclusi&oacute;n de altos niveles de l&iacute;pidos en las raciones puede afectar la salud del pez, generando reducci&oacute;n de las tasas de crecimiento debido al deterioro oxidativo de los l&iacute;pidos que conlleva a la formaci&oacute;n de compuestos impalatables con acci&oacute;n citot&oacute;xica y teratog&eacute;nica (4). A pesar de ello, los organismos acu&aacute;ticos y terrestres cuentan con una serie de mecanismos celulares detoxificantes que contribuyen a la reducci&oacute;n de los da&ntilde;os ocasionados por estos compuestos. Enzimas antioxidantes como la glutati&oacute;n peroxidasa (GPx), la catalasa (CAT) y la superoxido dismutasa (SOD) constituyen la defensa primaria contra el da&ntilde;o celular oxidativo (5).</p>     <p>El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de la ingesti&oacute;n de aceite de pescado con distintos grados de oxidaci&oacute;n sobre la actividad de Catalasa (CAT), Super&oacute;xido dismutasa (SOD) y Glutati&oacute;n peroxidasa (GPx) a nivel hep&aacute;tico y en el tracto gastrointestinal de juveniles de trucha arco&iacute;ris (<i>Oncorhynchus mykiss</i> [Walbaum]).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      <p><b>Sitio de estudio.</b> La fase de campo se desarroll&oacute; en las instalaciones de Truchas de la Sierra Ltda. Bogot&aacute;, Colombia, bajo condiciones ambientales adecuadas para adelantar el cultivo de trucha arco&iacute;ris en fases in&iacute;ciales de desarrollo (T promedio: 10&deg;C, pH: 7.0, O2:&gt;7.5 ppm). El alimento experimental fue desarrollado en el laboratorio de nutrici&oacute;n de peces de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia (FMVZ) de la Universidad Nacional de Colombia sede Bogot&aacute;. Los an&aacute;lisis de calidad oxidativa del aceite de pescado experimental y la determinaci&oacute;n de la actividad de las enzimas fueron realizados en los laboratorios de Toxicolog&iacute;a y Toxicolog&iacute;a Acu&aacute;tica de la FMVZ.</p>     <p><b>Elaboraci&oacute;n del alimento experimental.</b> Se formul&oacute; un alimento balanceado a trav&eacute;s del software UFFDA&reg; indicado para la fase de levante de trucha arco&iacute;ris. Mediante an&aacute;lisis proximal realizado en el laboratorio de nutrici&oacute;n de la FMVZ, de acuerdo con los m&eacute;todos oficiales de an&aacute;lisis de la asociaci&oacute;n de qu&iacute;mica anal&iacute;tica (6), se comprob&oacute; que el alimento conten&iacute;a 43% de prote&iacute;na cruda, 22% de extracto et&eacute;reo, 12% de humedad, 4% de fibra y 11% de cenizas.</p>     <p><b>Materias primas.</b> Se obtuvieron en una planta productora de alimento comercial para trucha. El alimento fue elaborado en las instalaciones del laboratorio de nutrici&oacute;n de peces de la FMVZ, mediante el empleo de una extrusora experimental EXMICRO&reg; (Exteec m&aacute;quinas). En su elaboraci&oacute;n y almacenamiento no hubo adici&oacute;n de la fracci&oacute;n lip&iacute;dica aportada por el aceite de pescado. Su composici&oacute;n se muestra en la <a href="#Tab1">tabla 1</a>.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13t1.jpg" width="338" height="432" alt="Tabla 1"><a name="Tab1"></a></p>     <p>Se utiliz&oacute; una premezcla vitam&iacute;nica libre de vitamina E y una premezcla mineral libre de selenio, con el fin de observar el comportamiento din&aacute;mico de la curva de producci&oacute;n de compuestos primarios y secundarios de la oxidaci&oacute;n para asociarlo con la respuesta fisiol&oacute;gica de los peces. La adici&oacute;n de los nutrientes omitidos habr&iacute;a desestimulado la aparici&oacute;n de productos de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica en el alimento y a su vez mitigado el efecto de estos sobre el sistema de enzim&aacute;tico antioxidativo hep&aacute;tico e intestinal.</p>     <p><b>Preparaci&oacute;n y adici&oacute;n de aceites experimentales.</b> Del total del extracto et&eacute;reo contenido en el alimento utilizado en campo (22%), 15.4% correspondi&oacute; al aporte del aceite de pescado experimental y el restante 6.6% fue aportado por las dem&aacute;s materias primas empleadas en la formulaci&oacute;n.</p>     <p>Los componentes de la fracci&oacute;n lip&iacute;dica fueron integrados por i) Aceite de subproductos de tilapia fresco, ii) Aceite de subproductos de tilapia sometido a un proceso de inducci&oacute;n oxidativa y iii) Aceite comercial de origen marino. Este &uacute;ltimo tipo de aceite se emple&oacute; para asegurar el aporte m&iacute;nimo de &aacute;cidos grasos del tipo omega 3 que no alcanzaba a aportarse con el subproducto de la tilapia.</p>     <p>Al inicio del estudio, se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de contenido de &aacute;cidos grasos de los aceites experimentales (proveniente de subproductos de tilapia y el de origen marino), con el objetivo de tipificarlos y de ajustar los niveles ofertados de &aacute;cidos grasos poliinsaturados a los requerimientos de la especie. Al aceite de subproductos de tilapia no se le hab&iacute;a adicionado antioxidantes, mientras que al aceite de origen marino s&iacute; (como parte del esquema comercial de manejo en la planta productora de concentrado).</p>     <p>El aceite de subproductos de tilapia fue obtenido 30 d&iacute;as antes del inicio del experimento, se le evalu&oacute; el estado oxidativo (&iacute;ndice de per&oacute;xidos y valor de anisidina), se separ&oacute; en dos fracciones del mismo lote: una de ellas fue inmediatamente almacenada en refrigeraci&oacute;n durante la totalidad del tiempo del experimento, mientras la otra fue sometida durante 25 d&iacute;as (200 hr) a un proceso de inyecci&oacute;n de aire, calentamiento y aporte lum&iacute;nico. El aceite de pescado de origen marino fue muestreado para la evaluaci&oacute;n del estado oxidativo e inmediatamente llevado a refrigeraci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A partir de las materias primas lip&iacute;dicas mencionadas se dise&ntilde;aron los tratamientos experimentales (<a href="#Tab2">Tabla 2</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13t2.jpg" width="338" height="239" alt="Tabla 2"><a name="Tab2"></a></p>     <p>Peri&oacute;dicamente (cada 21 d&iacute;as), se realiz&oacute; una nueva mezcla de los aceites experimentales (en las proporciones definidas) con las cantidades a utilizar de alimento almacenado. Esta estrategia se implement&oacute; con el fin de realizar las mediciones del estado oxidativo directamente en la materia prima lip&iacute;dica para eliminar los efectos que tienen los m&eacute;todos de extracci&oacute;n de l&iacute;pidos (7) sobre la adecuada determinaci&oacute;n de la calidad oxidativa de la fracci&oacute;n lip&iacute;dica.</p>     <p><b>Animales.</b> Se seleccion&oacute; un grupo homog&eacute;neo de 160 juveniles de trucha arcoiris (<i>Oncorhynchus mykiss</i>  [Walbaum])(CV = 3.55%, DS = 0.5214) de aproximadamente 15 cent&iacute;metros de longitud (37 g), los cuales fueron distribuidos aleatoriamente 5 tratamientos con 4 r&eacute;plicas cada uno, para conformar 20 grupos de 8 individuos. Luego fueron ubicados en veinte jaulas de 117 litros de capacidad efectiva cada una suspendidas en estanques asegurando condiciones normales de recambio (&gt;5/hr) y densidad poblacional final (10 Kg/m<sup>3</sup>).</p>     <p><b>Suministro de las raciones experimentales.</b> Cada alimento experimental (mezcla de aceites experimentales de cada tratamiento + alimento extruido) fue almacenado en canecas pl&aacute;sticas con tapa que imped&iacute;an la incidencia de rayos solares, el contacto permanente de ox&iacute;geno atmosf&eacute;rico, la hidrataci&oacute;n indeseada del alimento o la intervenci&oacute;n de roedores e insectos. El alimento experimental fue suministrado 4 veces al d&iacute;a (8:00, 11:00, 13:00 y 17:00 hr) y el aporte se realiz&oacute; hasta la saciedad de los peces. </p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n oxidativa de las raciones experimentales. </b>Se evalu&oacute; la producci&oacute;n de compuestos primarios (per&oacute;xidos e hidroper&oacute;xidos) y secundarios (aldeh&iacute;dos) de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica del aceite de pescado experimental mediante las pruebas de &iacute;ndice de per&oacute;xido (VP) e &iacute;ndice de anisidina (VA) descritas en las Normas T&eacute;cnicas Colombianas 236 y 4197, respectivamente (8,9). Estas evaluaciones se realizaron cada 21 d&iacute;as para cada tratamiento (correspondiente a la cantidad de sesiones de remezcla de aceites experimentales para cada tratamiento con el alimento extruido). Este procedimiento se desarroll&oacute; para tratar de minimizar el efecto de &ldquo;almacenamiento del alimento en granja&rdquo; sobre el desarrollo de productos oxidativos y para obtener un mayor grado de correspondencia entre los niveles declarados de VP y VA en laboratorio con los aportes reales de dichos compuestos a los animales experimentales en granja (a partir del momento en que se realizaba la mezcla de aceites con el alimento y se sacaban las muestras de an&aacute;lisis, iniciaba un proceso de diferenciaci&oacute;n de comportamientos en t&eacute;rminos de evoluci&oacute;n del estatus oxidativo entre las muestras estudiadas contra el alimento experimental de aporte en la granja).</p>     <p>Con los valores VP y VA generados para cada tratamiento se construy&oacute; un indicador &uacute;nico y global del estatus oxidativo de las raciones experimentales o &iacute;ndice total de oxidaci&oacute;n (TotOX) que correspond&iacute;a a la asociaci&oacute;n de los valores obtenidos as&iacute;:</p>      <p>TotOX= 2VP + VA </p>      <p>Estos procedimientos se realizaron al lote &ldquo;madre&rdquo; de aceite (30 d&iacute;as antes del inicio del estudio), en el momento de la primera preparaci&oacute;n de alimentos experimentales y en las siguientes jornadas de mezcla de alimento (d&iacute;as 21, 42, 63 y 84) por duplicado.</p>     <p><b>Respuesta animal.</b> <b>Proceso de sacrificio y extracci&oacute;n de &oacute;rganos.</b> Los d&iacute;as 20 y 90 se realiz&oacute; la extracci&oacute;n aleatoria de 2 individuos por jaula (8 por tratamiento/sesi&oacute;n, 40 total/sesi&oacute;n) para extraer el tracto gastrointestinal (TGI) y el h&iacute;gado. Se registr&oacute; la longitud total, la jaula de proveniencia y realiz&oacute; la insensibilizaci&oacute;n mediante transecci&oacute;n de la espina dorsal, luego se expusieron los &oacute;rganos y se muestrearon los tejidos de inter&eacute;s. Los &oacute;rganos fueron lavados individualmente con soluci&oacute;n salina helada al 0.9 % y empacados en frascos marcados que conten&iacute;an la misma soluci&oacute;n a 0&deg;C.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Transporte de &oacute;rganos y proceso de homogenizaci&oacute;n.</b> Los &oacute;rganos fueron transportados (1.5 hr) en una cava de poliuretano en hielo seco. En el laboratorio se procedi&oacute; a extraer cada &oacute;rgano, secarlo, registrar su peso y se realiz&oacute; la homogenizaci&oacute;n de &oacute;rganos (10,11), empleando una soluci&oacute;n de buffer fosfato de sodio 0.1 M pH 7.4 + KCl (1.17%) (diluci&oacute;n 1:9 h&iacute;gado:buffer, diluci&oacute;n 1:5 TGI:buffer). Para la homogenizaci&oacute;n del tejido hep&aacute;tico se emplearon homogenizadores manuales tipo Potter Everhelm mientras que para la homogenizaci&oacute;n del TGI se emple&oacute; un homogenizador el&eacute;ctrico de tejidos (Motor: CAT X120, Rotor - generator : Cole palmer 36900-61). Luego se Centrifug&oacute; a 12500 RPM durante 30 minutos a 4&deg;C para obtener fracci&oacute;n S9 (Heraeus Labofuge 400R). El sobrenadante fue dividido en 4 crioviales para determinar SOD, GPx, CAT y prote&iacute;na. Estos fueron marcados y almacenados a -80&deg;C hasta su an&aacute;lisis.</p>     <p><b>Determinaci&oacute;n y an&aacute;lisis de la actividad enzim&aacute;tica antioxidativa en h&iacute;gado y TGI.</b> Se evalu&oacute; la actividad de las enzimas CAT, GPx y SOD en h&iacute;gado y en TGI mediante espectrofotometr&iacute;a (Shimadzu UV - 160A), para cada individuo y por duplicado. Para el caso de GPx, se midi&oacute; la oxidaci&oacute;n de NADPH a 340 nm, definiendo su actividad en funci&oacute;n de nmol de NADPH oxidados/minuto/mg de GPx. Para CAT, la medici&oacute;n se realiz&oacute; a 240 nm y se defini&oacute; la actividad como nmol de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> consumidos/minuto/mg de CAT (12). La actividad de SOD se midi&oacute; a 550 nm; se defini&oacute; como la cantidad de SOD necesaria para producir un 50% de inhibici&oacute;n de la tasa de reducci&oacute;n del ferricitocromo C (13).  Para cada per&iacute;odo de exposici&oacute;n al agente estresor (d&iacute;a 20 y d&iacute;a 90) se muestrearon 8 animales por tratamiento dietario. Se eval&uacute;o la actividad de cada enzima (CAT, SOD y GPx) por duplicado en el h&iacute;gado y el tracto gastrointestinal. </p>     <p>Se emple&oacute; el m&eacute;todo del &aacute;cido bicincon&iacute;nico (Pierce Chemical Company, Rockford, IL, EUA) para estimar la concentraci&oacute;n de prote&iacute;na de las muestras. Se determin&oacute; el nivel de prote&iacute;na de cada &oacute;rgano proveniente de los peces sometidos a cada tratamiento dietario (160 muestras).</p>     <p>An&aacute;lisis estad&iacute;stico. Los datos del nivel de per&oacute;xidos (VP), anisidina (VA) y el &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n total (TotOX) de las diferentes raciones experimentales y los datos de actividad de SOD, GPx y CAT fueron igualmente sometidos a un an&aacute;lisis de varianza de dos v&iacute;as con un arreglo de parcelas divididas en el tiempo. Se emple&oacute; una prueba de Tukey (p&lt;0.05) para detectar diferencias significativas entre tratamientos. En todos los an&aacute;lisis se emple&oacute; el paquete estad&iacute;stico SAS (14).</p>      <p><font size="3"><b>Resultados</b></font></p>      <p><b>Calidad lip&iacute;dica de las raciones.</b> Se detect&oacute; un alto nivel de oxidaci&oacute;n principalmente generado por la producci&oacute;n de compuestos secundarios de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica que permit&iacute;a tipificarlo como un aceite altamente oxidado. Los valores de VP, VA y TotOX para cada d&iacute;a de evaluaci&oacute;n [21, 42, 63 y 84] se presentan en las figuras<a href="#Fig1"> 1</a>,<a href="#Fig2"> 2 </a>y<a href="#Fig3"> 3</a>, respectivamente. </p>  </font>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">  <img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f1.jpg" width="580" height="334" alt="Figura 1"></font><a name="Fig1"></a></p>      <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f2.jpg" width="580" height="316" alt="Figura 2"><a name="Fig2"></a></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f3.jpg" width="580" height="307" alt="Figura 3"><a name="Fig3"></a></p>  <font face="verdana" size="2">     <p>El an&aacute;lisis realizado el d&iacute;a 21 mostr&oacute; que existieron diferencias significativas entre los tratamientos dietarios (p=0.0004). T1 present&oacute; los niveles de VP m&aacute;s altos, en contraste, los niveles m&aacute;s altos de VA fueron exhibidos por T5. VP y VA mostraron un coeficiente de correlaci&oacute;n de -0.99. El &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n total (TotOX) tuvo un comportamiento similar a VP. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Al d&iacute;a 42, los tratamientos T1, T2 y T3 presentaron niveles de VP significativamente superiores a T4 y T5, los niveles de VA fueron ligeramente superiores a los hallados el d&iacute;a 21. Al d&iacute;a 63 se encontr&oacute; la misma tendencia que al d&iacute;a 21; sin embargo, los niveles de VP fueron 5 veces superiores. No se encontraron diferencias significativas entre tratamientos al calcular el TotOX. </p>     <p>Al d&iacute;a 84 decrecieron significativamente los niveles de per&oacute;xidos (VP) y el &iacute;ndice de anisidina (VA) en todos los tratamientos, no se hallaron diferencias significativas entre tratamientos para las variables VP ni TotOx. </p>     <p><b>Actividad enzim&aacute;tica antioxidativa.</b> <b>Super&oacute;xido dismutasa (SOD).</b> La actividad SOD a nivel hep&aacute;tico no present&oacute; diferencias significativas entre tratamientos dietarios para ninguno de los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n, sin embargo, al comparar la actividad SOD hep&aacute;tica promedio en los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n (Corto, d&iacute;a 20 y largo, d&iacute;a 90) se encontr&oacute; que la actividad de la enzima decreci&oacute; 29% en promedio al d&iacute;a 90 con respecto a la observada inicialmente. En contraste, a pesar de que no se hallaron diferencias significativas al medir la actividad SOD en TGI dentro de cada per&iacute;odo de evaluaci&oacute;n, se observ&oacute; que la actividad al d&iacute;a 90 fue 2 veces en promedio superior a la observada al d&iacute;a 20 (<a href="#Fig4">Figura 4</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f4.jpg" width="546" height="316" alt="Figura 5"><a name="Fig4" id="Fig4"></a></p>     <p><b>Catalasa (CAT).</b> Para la actividad CAT a nivel hep&aacute;tico no se hallaron diferencias significativas entre grupos sometidos a tratamientos dietarios para ninguno de los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n (<a href="#Fig5">Figura 5</a>). Sin embargo, en TGI al d&iacute;a 20 mostr&oacute; diferencias significativas, encontr&aacute;ndose la mayor actividad en peces alimentados con el tratamiento dietario T5, seguido por T3 y T4. Al d&iacute;a 90 se redujo dicha diferencia. No obstante, se encontr&oacute; que la actividad en TGI fue en promedio 2.75 veces superior a la observada al d&iacute;a 20. Por el contrario, la actividad CAT a nivel hep&aacute;tico present&oacute; niveles tendientes a la baja (87% en promedio) con respecto a la actividad promedio observada al d&iacute;a 20.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f5.jpg" width="559" height="340" alt="Figura 5"><a name="Fig5"></a></p>     <p><b>Glutati&oacute;n peroxidasa (GPx).</b> La actividad GPx a nivel hep&aacute;tico present&oacute; diferencias significativas entre tratamientos para los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n. Al d&iacute;a 20, la menor actividad de la enzima fue mostrada por los peces sometidos al tratamiento control (T1), mientras que la mayor actividad fue exhibida por T2. Al d&iacute;a 90 aument&oacute; la diferencia entre respuestas, encontr&aacute;ndose alta actividad en T5 que fue significativamente m&aacute;s alta que en los tratamientos T2, T3 y T1, respectivamente (<a href="#Fig6">Figura 6</a>). En TGI no se presentaron diferencias significativas al d&iacute;a 20 de exposici&oacute;n. Sin embargo, al d&iacute;a 90 se presentaron diferencias significativas (p=0.002) entre todos los tratamientos. En t&eacute;rminos generales la actividad GPx promedio se increment&oacute; con el tiempo  en cerca de 70% a nivel hep&aacute;tico y 82% en TGI al comparar los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n. </p>     <p align="center"><img src="img/revistas/mvz/v16n3/v16n3a13f6.jpg" width="580" height="326" alt="Figura 6"><a name="Fig6"></a></p>     <p><b>Correlaci&oacute;n calidad del alimento vs. actividad enzim&aacute;tica.</b> Se calcul&oacute; el grado de correlaci&oacute;n de los niveles de compuestos primarios (VP), secundarios (VA) y el &iacute;ndice total de oxidaci&oacute;n (TOtOX) al d&iacute;a 21 y 84 con la actividad enzim&aacute;tica antioxidativa CAT, SOD y GPx al d&iacute;a 20 y 90. Para los niveles de VP, VA y TotOX no se encontr&oacute; una respuesta altamente correlacionada en la actividad CAT a nivel hep&aacute;tico ni en TGI para ninguno de los dos per&iacute;odos de medici&oacute;n. Similar respuesta fue obtenida para la actividad SOD. </p>     <p>Por otro lado, la actividad GPx en TGI al d&iacute;a 20 mostr&oacute; niveles de alta correlaci&oacute;n con VP, VA y TotOX (-0.95; 0.98 y 0.97, respectivamente). Para el d&iacute;a 90 se encontraron niveles de correlaci&oacute;n igualmente altos (0.95; -0.96 y 0.91, respectivamente). A nivel hep&aacute;tico no se hall&oacute; alta correlaci&oacute;n entre los niveles de per&oacute;xidos y aldeh&iacute;dos con la actividad GPx.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>      <p><b>Calidad lip&iacute;dica de las raciones.</b> A lo largo de todo el experimento el aceite de pescado de origen marino present&oacute; altos niveles de aldeh&iacute;dos detectados por la prueba de anisidina. A pesar de haber sido obtenido en una planta comercial de producci&oacute;n de alimento balanceado, el aceite fue catalogado como aceite muy oxidado de acuerdo con la escala valorativa de Masson (15). Esto pudo haber sido causado por [i], la no adici&oacute;n de antioxidante o la adici&oacute;n de una cantidad inferior a la requerida para evitar los procesos auto-oxidativos o porque [ii] el aceite contaba con antioxidante, pero este fue adicionado despu&eacute;s de las fases de iniciaci&oacute;n y propagaci&oacute;n de la autooxidaci&oacute;n lip&iacute;dica. Esto sugiere que es necesario implementar las t&eacute;cnicas de evaluaci&oacute;n del estado oxidativo que detecten productos primarios y secundarios de la autooxidaci&oacute;n. Actualmente, la industria de an&aacute;lisis de alimentos y fabricaci&oacute;n de balanceados para animales no emplea t&eacute;cnicas para la determinaci&oacute;n de productos secundarios de la oxidaci&oacute;n.</p>     <p>Todos los tratamientos dietarios presentaron altos niveles in&iacute;ciales de anisidina y TotOX (d&iacute;a 21) que excedieron los valores establecidos por los est&aacute;ndares de calidad para aceites frescos (VP entre 3.9 y 5 meq O<sub>2</sub>/kg, VA de 10 a 20 y TotOX de 17.8 a 30) y que lo tipificaba como aceite oxidado (VP entre 7.0 y 26 meq O<sub>2</sub>/kg, VA de 25 a 30 y TotOX de 39.0 a 82.0) (15) (Figuras<a href="#Fig1"> 1</a>,<a href="#Fig2"> 2 </a>y<a href="#Fig3"> 3</a>). Durante la fase inicial de alimentaci&oacute;n predominaron los altos niveles de productos secundarios de la oxidaci&oacute;n (aldeh&iacute;dos vol&aacute;tiles), por lo que se considera que tales compuestos pudieron haber generado altas mortalidades (&gt;30%) para el d&iacute;a 20. </p>     <p>Para el d&iacute;a 42, la mayor parte de los tratamientos dietarios alcanzaron niveles de aceite oxidado (15) (Figuras<a href="#Fig1"> 1</a>,<a href="#Fig2"> 2 </a>y<a href="#Fig3"> 3</a>), lo que probablemente pudo incrementar la tasa de mortalidad promedio (hasta 40%).</p>      <p>Para el d&iacute;a 63, los niveles de per&oacute;xidos (VP) en las raciones experimentales (a excepci&oacute;n de T5) se incrementaron hasta alcanzar la tipificaci&oacute;n de aceite muy oxidado (VP &gt;26 meq O<sub>2</sub>/kg) (15) (<a href="#Fig1">Figura 1</a>), sin embargo, los niveles de VA se mantuvieron en todos los tratamientos dietarios (a excepci&oacute;n de T5 que present&oacute; un alto nivel de VA que permiti&oacute; catalogarlo como aceite muy oxidado para esta variable) (<a href="#Fig2">Figura 2</a>). Todos los tratamientos dietarios presentaron &iacute;ndices de oxidaci&oacute;n total (TotOX) que los clasificaron como raciones que conten&iacute;an aceite oxidado (<a href="#Fig3">Figura 3</a>). </p>     <p>Al d&iacute;a 84, se encontr&oacute; que no exist&iacute;an diferencias significativas entre tratamientos al evaluar VP y calcular TotOX, sin embargo, se encontraron diferencias significativas entre los niveles de VA (<a href="#Fig2">Figura 2</a>). En general para este per&iacute;odo final, los niveles de VA, VP y TotOX descendieron, permitiendo tipificar las raciones como oxidadas.</p>     <p><b>Actividad enzim&aacute;tica antioxidativa.</b> Actividad Super&oacute;xido Dismutasa (SOD). La enzima SOD transforma el ani&oacute;n super&oacute;xido O<sub>-2</sub> (Producto de la respiraci&oacute;n celular) en H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>. M&uacute;ltiples trabajos han reportado alto nivel de correlaci&oacute;n entre la actividad SOD y el metabolismo oxidativo general, lo que indica que los niveles de SOD se ajustan a los niveles de fuentes end&oacute;genas de especies ox&iacute;geno reactivas (16). </p>     <p>A pesar de que no se encontraron diferencias significativas entre tratamientos en  ninguno de los dos per&iacute;odos de exposici&oacute;n, los niveles de actividad SOD en TGI se incrementaron dram&aacute;ticamente del d&iacute;a 20 al d&iacute;a 90 (175% en promedio). Sin embargo, a nivel hep&aacute;tico la actividad de la enzima decreci&oacute; 13% en promedio al d&iacute;a 90 con respecto a los niveles de actividad hallados al d&iacute;a 20 de exposici&oacute;n. Estos hallazgos sugieren que el TGI se convirti&oacute; a lo largo del ensayo en el &oacute;rgano con mayor metabolismo oxidativo posiblemente debido al contacto mec&aacute;nico directo con el agente estresor oxidativo (16).</p>      <p>Los niveles promedio de actividad SOD a nivel hep&aacute;tico en el presente ensayo (2.6 U/min/mg prote&iacute;na) fueron muy similares a los hallados en <i>O. mykiss</i> (2.5 U/min/mg prote&iacute;na)(16), <i>Sparus aurata</i> (5.2 U/min/mg prote&iacute;na)(17), <i>Penaeus vannamei</i> (1.72 U/min/mg prote&iacute;na)(18), <i>Nacella concinna</i> (3.0 U/min/mg prote&iacute;na)(19) y en <i>Scophthalmus maximus</i>, <i>Hippoglossus hippoglossus</i> y <i>S. aurata</i> (4.5; 5.7 y 5.2 U/min/mg prote&iacute;na, respectivamente)(5), pero bastante inferiores a los hallados en <i>Dentex dentex</i> (150 U/min/mg prote&iacute;na)(20) y en <i>O. mykiss</i> (835 U/min/mg prote&iacute;na)(13).</p>     <p><b>Actividad catalasa (CAT).</b> La actividad CAT es el indicador principal de la tasa de metabolizaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) para evitar sus efectos nocivos a nivel celular. La actividad CAT es espec&iacute;fica para per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>). Al evaluar el efecto de cada tratamiento dietario para el d&iacute;a 20 en la actividad CAT en TGI se encontraron diferencias significativas entre tratamientos dietarios. Sin embargo, al d&iacute;a 90 a pesar del fuerte incremento en la actividad CAT-TGI no se hallaron diferencias de respuesta entre tratamientos dietarios. La actividad CAT en TGI sufri&oacute; un incremento dram&aacute;tico (275%) desde el d&iacute;a 20 al d&iacute;a 90 de medici&oacute;n. Al d&iacute;a 20 se present&oacute; un nivel promedio de actividad de 29.52 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na, que est&aacute; muy cerca de lo observado (31.64 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na) en la misma especie, el mismo &oacute;rgano y bajo condiciones normales de alimentaci&oacute;n (13). Sin embargo, tras 90 d&iacute;as de exposici&oacute;n al agente estresor oxidativo dietario la actividad CAT-TGI se increment&oacute; hasta llegar a 80.90 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na en promedio. Este incremento coincide con la tendencia incremental en la producci&oacute;n de compuestos primarios y secundarios de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica (Figuras<a href="#Fig1"> 1</a>,<a href="#Fig2"> 2 </a>y<a href="#Fig3"> 3</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el presente trabajo, la actividad CAT a nivel hep&aacute;tico fue en promedio (48.62 y 42.5 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na al d&iacute;a 20 y 90, respectivamente) superior a los niveles encontrados en <i>O. mykiss</i> (32 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na)(16), pero inferior a los reportados para la misma especie (116 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na)(13). A nivel hep&aacute;tico se han reportado actividades similares de CAT en otras especies: 10.6 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na en <i>Colossoma macropomum</i> (21), 24.77 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na en <i>Sander vitreus</i> (22), 160 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na en <i>Acipenser naccarii</i> (13) y 180 nmol H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>/min/mg prote&iacute;na en <i>Channa punctatus</i> (12).</p>     <p>La disminuci&oacute;n observada en la actividad CAT a nivel hep&aacute;tico, evidencia un proceso de adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s generado por la ingesti&oacute;n de per&oacute;xidos. El proceso adaptativo estuvo posiblemente sustentado por el incremento sistem&aacute;tico de la actividad CAT en TGI,  lo que sugiere que la acci&oacute;n antioxidativa CAT se fue desplazando al &oacute;rgano de contacto directo con el agente estresor dietario para tratar de evitar la acci&oacute;n hepatot&oacute;xica del H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>.</p>     <p>De acuerdo con lo observado en <i>D. dentex</i> (20), el incremento en la actividad de CAT encontrado en TGI al comparar el d&iacute;a 20 y 90 de exposici&oacute;n y el decrecimiento de la actividad de la misma enzima a nivel hep&aacute;tico son directamente proporcionales con la actividad SOD en los mismos &oacute;rganos para los mismos per&iacute;odos de exposici&oacute;n. Esto es debido a que, como enzimas componentes de un sistema de detoxificaci&oacute;n oxidativa celular, los niveles de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> generados por la actividad SOD estimularon niveles proporcionales de actividad CAT.</p>     <p><b>Actividad glutati&oacute;n peroxidasa (GPx).</b> A pesar que la actividad GPx tambi&eacute;n est&aacute; involucrada en la remoci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>, la respuesta diferencial en la actividad GPx y CAT (tambi&eacute;n evidenciada en el presente estudio) indica que existen mecanismos de regulaci&oacute;n diferentes para las dos enzimas. GPx est&aacute; mayoritariamente involucrada en la remoci&oacute;n de per&oacute;xidos org&aacute;nicos (20). </p>     <p>La actividad GPx present&oacute; diferencias significativas a nivel hep&aacute;tico para los d&iacute;as 20 y 90 de exposici&oacute;n y en TGI al d&iacute;a 90.  Al realizar un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n de la actividad GPx a nivel hep&aacute;tico y en TGI con VP, VA y TotOX se encontr&oacute; que a nivel hep&aacute;tico los niveles de correlaci&oacute;n eran inferiores a 0.5. Sin embargo, en TGI excedieron 0.95 para todos los per&iacute;odos de exposici&oacute;n, indicando que el TGI fue el &oacute;rgano de contacto directo con los agentes estresores oxidativos dietarios en el que se increment&oacute; el metabolismo antioxidativo a trav&eacute;s del incremento en la actividad GPx.</p>     <p>Los niveles promedio de actividad GPx a nivel hep&aacute;tico al d&iacute;a 20 y 90 (21.97 y 38.34 nmol NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na, respectivamente) estuvieron por debajo de los hallados en h&iacute;gado de S. aurata alimentado con l&iacute;pidos oxidados durante 30 y 60 d&iacute;as (72 y 55 nmoles NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na, respectivamente)(17). En ese experimento, los niveles de GPx ascendieron a trav&eacute;s del tiempo debido a que probablemente se contaba con la acci&oacute;n antioxidativa de la vitamina E.  Concordantemente, se han reportado niveles hep&aacute;ticos de actividad GPx de 66.79 nmoles NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na en <i>O. mykiss</i>, bajo condiciones normales de alimentaci&oacute;n y sin agentes estresores externos aparentes (13). En otro estudio (23) se reportaron niveles de actividad GPx hep&aacute;tica de 70 nmoles NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na en esta misma especie bajo condiciones de realimentaci&oacute;n luego de un per&iacute;odo de restricci&oacute;n alimenticia de 70 d&iacute;as de duraci&oacute;n. Los niveles de actividad GPx en h&iacute;gado en nuestro ensayo son semejantes a los reportados en <i>S. vitreus</i> (29.06 nmol NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na)(22).</p>     <p>Los niveles promedio de actividad GPx en TGI al d&iacute;a 20 y 90 (33.10 y 59.95 nmol NADPH consumido/min/mg de prote&iacute;na, respectivamente) fueron muy inferiores a los hallados en TGI de la misma especie (667.3 nmol NADPH consumidos/min/mg de prote&iacute;na) bajo condiciones normales de alimentaci&oacute;n y sin agentes estresores oxidativos externos aparentes (13). </p>     <p>Los resultados indicaron que los efectos de la ingesti&oacute;n de aceite oxidado sobre la actividad GPx est&aacute;n basados en el rol de la enzima dentro del sistema de detoxificaci&oacute;n oxidativa celular y conforme a lo esperado estuvo influenciado por el contenido de per&oacute;xidos dietarios, lo mismo ha sido hallado y concluido en otros estudios (17).</p>     <p>En conclusi&oacute;n, se puede afirmar que las raciones ofertadas a lo largo del experimento presentaron siempre altos niveles de productos primarios y secundarios de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica lo que permiti&oacute; clasificarlas como &ldquo;muy oxidadas&rdquo;. Las actividades SOD y CAT fueron directamente proporcionales a lo largo del experimento demostrando el alto nivel de complementariedad de las dos enzimas dentro del sistema de detoxificaci&oacute;n oxidativo celular. Estas actividades (SOD y CAT) a nivel hep&aacute;tico decrecieron a lo largo del experimento, sin embargo se incrementaron en TGI, lo que sugiere un proceso de adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s oxidativo. Por otro lado, la actividad GPx se increment&oacute; a nivel hep&aacute;tico y en TGI a lo largo del per&iacute;odo de exposici&oacute;n al estr&eacute;s oxidativo, indicando la alta resiliencia de la enzima a est&iacute;mulos oxidativos dietarios. La actividad GPx en TGI estuvo altamente correlacionada (&gt;0.95) con la calidad oxidativa de las raciones aportadas a lo largo del experimento. Por lo tanto y de acuerdo con las evidencias, si se quiere determinar el impacto de la ingesti&oacute;n de raciones oxidadas en trucha arco&iacute;ris, es recomendable evaluar la actividad GPx en TGI. </p>     <p>En t&eacute;rminos generales, los niveles actividad fueron (en la mayor&iacute;a de los casos) m&aacute;s altos en TGI que en h&iacute;gado y la actividad promedio para todas las enzimas fue m&aacute;s alta al d&iacute;a 90 que al d&iacute;a 20.</p>    <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p>1.	Espinal F, Mart&iacute;nez H, Gonz&aacute;lez F. La cadena de la piscicultura en Colombia. Una mirada global en su estructura y din&aacute;mica 1991 - 2005. [En l&iacute;nea]. Ministerio de Agricultura y desarrollo rural. Observatorio Agrocadenas de Colombia. 2005;  [Accesado 22 Jul 2010]. URL disponible en: <a href="http://www.agronet.gov.co/www/docs_agronet/2005/112164315_caracterizacion_piscicultura.pdf" target="_blank">http://www.agronet.gov.co/www/docs_agronet/2005/112164315_caracterizacion_piscicultura.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0122-0268201100030001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2.	Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). The State of World Fisheries and Aquaculture 2008. Part 1: World review of fisheries and aquaculture. Rome, Italy: FAO; 2009. URL Disponible en: <a href="ftp://ftp.fao.org/docrep/fao/011/i0250e/i0250e01.pdf" target="_blank">ftp://ftp.fao.org/docrep/fao/011/i0250e/i0250e01.pdf</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0122-0268201100030001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3.	Chaiyapechara S, Casten M, Hardy R, Dong F. Fish performance, fillet characteristics, and health assessment index of rainbow trout (<i>Oncorhynchus mykiss</i>) fed diets containing adequate and high concentrations of lipid and vitamin E. 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Effects of dietary vitamin E on antioxidant defense mechanisms of juvenile turbot (<i>Scophthalmus maximus</i> L.), halibut (<i>Hippoglossus hippoglossus </i>L.) and sea bream (<i>Sparus aurata</i> L.). Aquac Nutr 2002; 8:195-207. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0122-0268201100030001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6.	Association of official analytical chemist (AOAC). Official Methods of Analysis of the Association of Analytical Chemist, 16a Edition. 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Norma T&eacute;cnica Colombiana NTC 236: Grasas y aceites vegetales y animales. Determinaci&oacute;n del &iacute;ndice de  per&oacute;xido. Bogot&aacute;, Colombia: ICONTEC; 1998.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0122-0268201100030001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9.	Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas (ICONTEC). Norma T&eacute;cnica Colombiana NTC 4197: Grasas y aceites vegetales y animales. Determinaci&oacute;n del &iacute;ndice de  anisidina. 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Oxidative stress and antioxidant defenses in goldfish <i>Carassius auratus</i> during anoxia and reoxygenation. Am J Physiol 2000; 280:R100-R107.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0122-0268201100030001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.	Ahmad I, Hamid T, Fatima M, Chand H, Jain S, Athar M et al. Induction of hepatic antioxidants in freshwater catfish (<i>Channa punctatus Bloch</i>) is a biomarker of paper mill effluent exposure. 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Versi&oacute;n 9.0.0. Cary (NC): SAS Institute Corporation; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0122-0268201100030001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.	Masson LS. Criterio de calidad para materias grasas utilizadas frecuentemente en la nutrici&oacute;n animal y de peces.  Control de calidad se insumos y dietas acu&iacute;cola.  Documento de campo N&deg; 16. 1994;[En l&iacute;nea]. [Accesado 22 Jul 2010]. 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Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol 2005; 140:187-196.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0122-0268201100030001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.	Mourente G, Diaz-Salvago E, Bell J, Tocher D. Increased activities of hepatic antioxidant defence enzymes in juvenile gilthead sea bream (<i>Sparus aurata</i> L.) fed dietary oxidised oil: attenuation by dietary vitamin E. Aquaculture 2002; 214: 343-361.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0122-0268201100030001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.	Wang W, Wang A, Wang Y. Effect of supplemental L-ascorbyl-2-polyphosphate in enriched live food on the antioxidant defense system of <i>Penaeus vannamei</i> of different sizes exposed to ammonia-N. Aquac Nutr 2006; 12:348-352.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0122-0268201100030001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.	Ansaldo M, Sacrist&aacute;n H, Wider E. Does starvation influence the antioxidant status of the digestive gland of Nacella concinna in experimental conditions?. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmcol 2007; 146:118-123.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0122-0268201100030001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.	Morales A, P&eacute;rez-Jim&eacute;nez A, Hidalgo M, Abell&aacute;n E, Cardenete G. Oxidative stress and antioxidant defenses after prolonged starvation in<i> Dentex dentex</i> liver. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmcol 2004; 139: 153-161.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0122-0268201100030001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.	Marcon J, Wilhelm D. Antioxidant processes of the wild tambaqui,<i> Colossoma macropomum</i> (<i>Osteichthyes, Serrasalmidae</i>) from the Amazon. Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmcol 1999; 123:257-263.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0122-0268201100030001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.	Tort M, Hurley D, Fern&aacute;ndez-Cobas C, Wooster G, Bowser P. Effects of Hydrogen Peroxide Treatments on Catalase and Glutathione Activity in Walleye Sander vitreus. 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