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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Levaduras autóctonas con capacidad fermentativa en la producción de etanol a partir de pulpa de excedentes de plátano Musa (AAB Simmonds) en el departamento de Córdoba, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Native yeasts&#39; (Cordoba, Colombia) fermentation ability for producing ethanol from plantain (Musa AAB Simmonds) surplus pulp was evaluated; the object was to find efficient yeasts. The microorganisms used here came from the Kloeckera sp, Candida guillliermondii (14AD), Candida albicans and Candida guillliermondii 13AD strains (native) and Saccharomyces cerevisiae T73 (a commercial reference yeast). Fermentation was carried out on different substrate concentrations, the 40% one giving the best result; ethanol production was evaluated by the potassium dichromate colorimetric method using a Lambda 11 spectrophotometer. It was observed that the Candida guilliermondii 14AD native yeast was the most efficient, having an average 3.45% v/v ethanol production after 72 hours&#39; fermentation. There were no statistically significant differences compared to reference yeast strain ethanol production (3.59% v/v). These results suggest that native yeasts can be used in obtaining ethanol from residual plantain matter.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align=right><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b>Levaduras aut&oacute;ctonas con capacidad fermentativa en la producci&oacute;n de etanol a partir de pulpa de excedentes de pl&aacute;tano <i>Musa</i> (<i>AAB Simmonds</i>) en el departamento de C&oacute;rdoba, Colombia</b></font></p>     <p><b><font size="3">Autoctonous yeasts having fermentation ability in producing ethanol from <i>Musa</i> (<i>AAB Simmonds</i>) plantain surplus pulp in the C&oacute;rdoba department of Colombia</font></b></p>     <p><i>  Luis Oviedo Zumaqu&eacute; <sup>1</sup> , Cecilia Lara Mantilla<sup>2</sup> ,   Mauricio Mizger Pantoja<sup>3</sup>    </i></p>     <p><sup>1</sup>   M. Sc. Director proyecto investigaci&oacute;n. Grubiodeq, Grupo de Biotecnolog&iacute;a Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad de C&oacute;rdoba. <a href="mailto:luisoviedo59@hotmail.com">luisoviedo59@hotmail.com</a>, <a href="mailto:loviedo@sinu.unicordoba.edu.co">loviedo@sinu.unicordoba.edu.co</a>    <br> <sup>2</sup> Ph. D. Coinvestigadora proyecto. Grubiodeq, Grupo de Biotecnolog&iacute;a Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad de C&oacute;rdoba. <a href="mailto:lara_mantilla_cecilia@hotmail.com">lara_mantilla_cecilia@hotmail.com</a>    <br> <sup>3</sup> Investigador. Grubiodeq, Grupo de Biotecnolog&iacute;a Departamento de Qu&iacute;mica, Universidad de C&oacute;rdoba.</p>      <p>Recibido: marzo 2 de 2009 Aprobado: junio 15 de 2009</p> <hr>      <p><b>Resumen</b></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se evalu&oacute; la capacidad fermentativa de levaduras nativas de la zona costanera del departamento de C&oacute;rdoba, Colombia, para la obtenci&oacute;n de etanol a partir de la pulpa de excedentes de pl&aacute;tano <i>Musa</i> (<i>AAB Simmonds</i>), con el objetivo de encontrar cepas eficientes. Los microorganismos utilizados correspondieron a las especies: <i>Kloeckera</i> sp, <i>Candida guillliermondii</i> 14AD, <i>Candida albicans</i> y <i>Candida guillliermondii</i> 13AD (nativas), y una cepa comercial de referencia, Saccharomyces cerevisiae T73. La fermentaci&oacute;n se realiz&oacute; a diferentes concentraciones de sustrato, siendo la concentraci&oacute;n del 40% la mejor; se evalu&oacute; la producci&oacute;n de etanol mediante el m&eacute;todo colorim&eacute;trico del dicromato de potasio utilizando un equipo espectrofot&oacute;metro Lambda 11. Se observ&oacute; que la levadura Candida guilliermondii 14AD nativa fue la m&aacute;s eficiente con una producci&oacute;n promedio de 3,45% v/v de etanol a las 72 horas de fermentaci&oacute;n; no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas con la producci&oacute;n de etanol a partir de la cepa de referencia, la cual produjo 3,59% v/v. Estos resultados sugieren la existencia de levaduras nativas con capacidad para ser utilizadas en la obtenci&oacute;n de etanol a partir de material residuo de pl&aacute;tano.</p>       <p><b>Palabras clave</b>: etanol, fermentaci&oacute;n, levaduras, m&eacute;todo del dicromato de potasio.</p>       <p><b>Abstract</b></p>       <p>Native yeasts&#39; (Cordoba, Colombia) fermentation ability for producing ethanol from plantain (<i>Musa</i> <i>AAB Simmonds</i>) surplus pulp was evaluated; the object was to find efficient yeasts. The microorganisms used here came from the <i>Kloeckera</i> sp, <i>Candida guillliermondii</i> (14AD), <i>Candida albicans</i> and <i>Candida guillliermondii</i> 13AD strains (native) and Saccharomyces cerevisiae T73 (a commercial reference yeast). Fermentation was carried out on different substrate concentrations, the 40% one giving the best result; ethanol production was evaluated by the potassium dichromate colorimetric method using a Lambda 11 spectrophotometer. It was observed that the Candida guilliermondii 14AD native yeast was the most efficient, having an average 3.45% v/v ethanol production after 72 hours&#39; fermentation. There were no statistically significant differences compared to reference yeast strain ethanol production (3.59% v/v). These results suggest that native yeasts can be used in obtaining ethanol from residual plantain matter.</p>       <p><b>Key words</b>: ethanol, fermentation, yeast, potassium dichromate method.</p> <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>       <p>El departamento de C&oacute;rdoba se destaca por ser el primer productor de pl&aacute;tano en la regi&oacute;n Caribe de Colombia, con una participaci&oacute;n del 6,28% de la producci&oacute;n total nacional y una tasa de crecimiento anual del 20,7%; tiene un &aacute;rea aproximada de 30.000 hect&aacute;reas en las zonas productoras de los municipios de Tierralta, Lorica, Mo&ntilde;itos, Puerto Escondido, San Bernardo del Viento y Los C&oacute;rdobas, lo que genera una productividad anual cercana a las 210.000 toneladas. En las zonas de cultivo existe una alta proporci&oacute;n de excedentes sin utilizar, y una p&eacute;rdida poscosecha que se aproxima al 15% de su producci&oacute;n (Ortega et &aacute;l., 2003).</p>       <p>Teniendo en cuenta los desperdicios de pl&aacute;tano que se generan, surge el inter&eacute;s de su aprovechamiento mediante procesos biotecnol&oacute;gicos tales como fermentaciones alcoh&oacute;licas que permitan darle un valor agregado a estos residuos, aprovechando el contenido de carbohidratos que posibilita el uso de microorganismos capaces de transformar dichos desechos en un producto industrial como el etanol.</p>       <p>El alcohol et&iacute;lico se obtiene por v&iacute;as muy distintas dependiendo del uso que se le quiera dar: por hidrataci&oacute;n de eteno, para emplearlo a nivel industrial como solvente e intermediario sint&eacute;tico; por v&iacute;a fermentativa, para preparar bebidas y usarlo tambi&eacute;n como oxigenante de combustibles, debido a su potencial como aditivo de la gasolina (Vollhardt, 2007; Ecopetrol, 2005).</p>       <p>El objetivo de la presente investigaci&oacute;n fue evaluar la capacidad fermentativa de levaduras nativas sobre sustrato de excedentes de pl&aacute;tano para conocer cepas nativas con capacidad fermentativa de la regi&oacute;n costera cordobesa, pueda fin de brindar un valor agregado a los productos subutilizados de la producci&oacute;n de pl&aacute;tano.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>       <p><b><i>Levaduras utilizadas</i></b></p>       <p>Las levaduras utilizadas fueron cuatro cepas nativas y una cepa de referencia; levaduras nativas (Yarrow, 1998): <i>Kloeckera</i> sp, <i>Candida guillliermondii</i> (14AD), <i>Candida albicans</i> y <i>Candida guillliermondii</i> 13AD (banco de cepas del Laboratorio Grubiodeq) y la cepa comercial de referencia, <i>Saccharomyces cerevisiea</i> T73 (CECT 1894), adquirida del Departamento de Bioqu&iacute;mica y Biolog&iacute;a Molecular de la Universidad de Valencia, Espa&ntilde;a, identificada por Querol et &aacute;l. (2006) como una cepa de vinos tintos.</p>       <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de la producci&oacute;n de etanol</i></b></p>       <p>La evaluaci&oacute;n de la producci&oacute;n de etanol se realiz&oacute; de la siguiente forma:</p>       <p><b>Fermentaci&oacute;n</b>. Se utiliz&oacute; como sustrato pulpa de pl&aacute;tano a diferentes concentraciones, 15, 40 o 60% p/v, ajust&aacute;ndose a pH = 1,5 con soluci&oacute;n acuosa de H<sup>2</sup>SO<sup>4</sup> 10% v/v; la hidr&oacute;lisis se realiz&oacute; en autoclave a 15 psi y 250&deg; F por 15 min. Terminada la hidr&oacute;lisis nuevamente se ajust&oacute; a pH = 4,5 con NaOH 10% p/v; el sustrato hidrolizado se reparti&oacute; en frascos de capacidad 200 ml a los cuales se le adicionaron in&oacute;culos de levadura en concentraci&oacute;n de 5,2x10<sup>8</sup> ufc/mL; se complet&oacute; a volumen de 100 mL con agua destilada y finalmente se adicionaron 10 mL de aceite mineral est&eacute;ril para garantizar las condiciones fermentativas.</p>       <p><b>Cuantificaci&oacute;n de la producci&oacute;n de etanol</b>. Se tomaron 10 ml de la muestra anteriormente fermentada y se centrifugaron a 3500 rpm durante 20 min. Se trabaj&oacute; con el sobrenadante (soluci&oacute;n a).</p>       <p>La cuantificaci&oacute;n del etanol producido en la fermentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico del dicromato de potasio descrito por Tello-Hinojosa et &aacute;l. (2005) que consisti&oacute; en depositar 4 ml de una soluci&oacute;n oxidante (mezcla formada por 4.165 g de dicromato de potasio y 250 ml de &aacute;cido sulf&uacute;rico, aforando con agua destilada a 1000 ml) en tubos de ensayo; luego se adicionaron, gota a gota, 2 ml de soluci&oacute;n saturada de carbonato de potasio hasta finalizado el burbujeo (soluci&oacute;n b).</p>       <p>Se mezclaron 2 ml de la soluci&oacute;n (a) con 2 ml de soluci&oacute;n (b) homogeneiz&aacute;ndose en v&oacute;rtex a 1500 rpm durante 10 seg; seguidamente se realiz&oacute; un calentamiento en ba&ntilde;o termostatado a temperatura de 80-85 &deg;C por espacio de 30 min. Se enfri&oacute; a temperatura ambiente y se ley&oacute; la absorbancia a 440 nm en el equipo espectofot&oacute;metro Perkin-Elmer Lambda 11 UVVis. El monitoreo de la fermentaci&oacute;n se realiz&oacute; cada 24 horas durante tres d&iacute;as. Ensayos por triplicados</p>       <p>Para la estandarizaci&oacute;n del m&eacute;todo se hizo el blanco y la curva patr&oacute;n trazada a partir de est&aacute;ndares de etanol; se estimaron las ecuaciones de las respectivas rectas de regresi&oacute;n, los coeficientes de determinaci&oacute;n (r<sup>2</sup>), normalidad de residuales y test de proporcionalidad mediante el software <i>Analyse-it for Microsoft Excel&reg;</i>  (Miller y Miller, 1993; Aguirre et &aacute;l, 2001). La determinaci&oacute;n del etanol se realiz&oacute; utilizando la <a href="#e1">ecuaci&oacute;n 1</a>, obtenida de la estandarizaci&oacute;n de las curvas de calibrado.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="e1"><img src="img/revistas/biote/v11n1/v11n1a05e1.JPG"></a></p>       <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>       <p>Las levaduras utilizadas en la presente investigaci&oacute;n (nativas y de referencia) correspondieron a cepas que en ensayos preliminares mostraron tolerancia m&aacute;xima al etanol del 10% (Oviedo, et &aacute;l., 2007 a, b, c).</p>       <p>En la <a href="#t1">tabla 1</a> se resumen los datos obtenidos en la producci&oacute;n de etanol a diferentes concentraciones de sustrato: 15, 40 y 60%, y a diferentes tiempos de fermentaci&oacute;n, utilizando las levaduras nativas y la cepa comercial de referencia.</p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v11n1/v11n1a05t1.JPG"></a></p>      <p>En la obtenci&oacute;n del etanol se evaluaron tres concentraciones de sustrato, 15, 40 y 60%, encontr&aacute;ndose que al 40% se obtuvieron los valores m&aacute;s altos en la producci&oacute;n del alcohol.</p>       <p>Se nota claramente que con la utilizaci&oacute;n del 15% de sustrato la producci&oacute;n de alcohol fue muy escasa observ&aacute;ndose que la cepa de referencia <i>S. cerevisiae</i> T73(CECT 1894), y la cepa nativa <i>C. guiliiermondii</i> 14AD fueron las &uacute;nicas productoras de etanol. Lo anterior sugiere que a este nivel de concentraci&oacute;n de sustrato utilizado no existe una fuente de carbono o de nutrientes suficientes para las dem&aacute;s levaduras evaluadas.</p>       <p>Al 60% se observ&oacute; producci&oacute;n del etanol por la cepa de referencia y las levaduras nativas <i>Candida guilliermondii (14AD) y Candida guilliermondii (13AD)</i>, mientras que las cepas Candida albicans y <i>Kloeckera</i> sp. no lo produjeron. Aunque a esta concentraci&oacute;n de sustrato existe mayor contenido de carbohidratos que implicar&iacute;a un mayor crecimiento microbiano y por ende mayor producci&oacute;n de etanol, este resultado no se dio; es sabido que a elevadas concentraciones de soluto, algunas levaduras experimentan una plasm&oacute;lisis celular, reducci&oacute;n del poro y otras alteraciones que disminuyen el crecimiento microbiano (Deak y Beuchat, 1996; Casas, 1999; Alfenore et &aacute;l., 2002) lo cual sugerir&iacute;a la baja o nula producci&oacute;n de etanol.</p>       <p>Con la utilizaci&oacute;n del 40% de pulpa de pl&aacute;tano se obtuvieron, en el experimento, los valores m&aacute;s altos en la producci&oacute;n de etanol siendo el mejor tiempo las 72 horas de fermentaci&oacute;n para cuatro de las 5 cepas evaluadas: <i>S. cerevisiae</i> T73(CECT 1894), Candida guilliermondii (14AD), Candida guilliermondii (13AD) y Candida albicans. Es de anotar que la levadura <i>Kloeckera</i> sp., a pesar de ser tolerante al 10% de etanol en los ensayos previos (Oviedo et &aacute;l., 2007 a, b, c), no produjo el alcohol a las diferentes concentraciones de pl&aacute;tano.</p>       <p>En la <a href="#t2">tabla 2</a> se muestran los coeficientes de variaci&oacute;n obtenidos en el experimento cuando se utiliz&oacute; el sustrato al 40%; la precisi&oacute;n de un m&eacute;todo anal&iacute;tico engloba diferentes tipos de estudios como son la repetibilidad, precisi&oacute;n intermedia y reproducibilidad, los cuales se expresan generalmente como el coeficiente de variaci&oacute;n (CV) de una serie de medidas, y se calcula matem&aacute;ticamente por medio de la <a href="#e2">ecuaci&oacute;n 2</a> (Aguirre et &aacute;l., 2001).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="e2"><img src="img/revistas/biote/v11n1/v11n1a05e2.JPG"></a></p>         <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/biote/v11n1/v11n1a05t2.JPG"></a></p>      <p>Los datos obtenidos del coeficiente de variaci&oacute;n se encuentran dentro de los l&iacute;mites propuestos por Aguirre et &aacute;l. (2001), quienes establecen que dicho par&aacute;metro estad&iacute;stico no debe ser superior al 5%.</p>       <p>Una comparaci&oacute;n de la producci&oacute;n de etanol entre la cepa de referencia <i>Saccharomyces cerevisiae</i> T73(CECT 1894) y las 3 nativas: <i>Candida guilliermondii </i>(14AD), <i>Candida albicans</i> y <i>Candida guilliermondii</i> (13D) demostr&oacute; que no existen diferencias estad&iacute;sticamente significativas (an&aacute;lisis de varianza con la prueba de Tukey, p>0,05), sin embargo, la cepa nativa <i>Candida guilliermondii</i> (14AD) mostr&oacute; un mejor comportamiento; tambi&eacute;n se observ&oacute; que la tendencia hacia la producci&oacute;n de etanol fue aumentando a medida que se increment&oacute; el tiempo de fermentaci&oacute;n.</p>       <p>En la <a href="#f1">figura 1</a> se observa el comportamiento del proceso fermentativo.</p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v11n1/v11n1a05f1.JPG"></a></p>       <p>El proceso para la obtenci&oacute;n del etanol es llevado a cabo en dos etapas (Montes et &aacute;l., 2003): a) hidr&oacute;lisis, que consiste en la conversi&oacute;n de carbohidratos en az&uacute;cares fermentables, con la utilizaci&oacute;n de &aacute;cidos minerales; y b) fermentaci&oacute;n, que es la etapa de conversi&oacute;n de az&uacute;cares fermentables a etanol por medio de las levaduras seleccionadas.</p>       <p>La fermentaci&oacute;n est&aacute; influenciada por varios factores como la temperatura, pH, concentraci&oacute;n de az&uacute;cares y otras variables que influyen en el crecimiento de los microorganismos (Corpodib, 2003; Caridi, 2003). En el trabajo realizado las condiciones de fermentaci&oacute;n fueron pH inicial de 4,5 y temperatura ambiente (28-30 &deg;C); se ha encontrado que la fermentaci&oacute;n se efect&uacute;a satisfactoriamente cuando se ajusta el pH en un valor entre 4,0 y 5,0, debido a que es favorable para la levadura y bastante bajo para inhibir la multiplicaci&oacute;n de las bacterias. La temperatura &oacute;ptima para la formaci&oacute;n de alcohol se estima en el rango de 32 &deg;C a 35 &deg;C (Navarro et &aacute;l., 1986).</p>       <p>La fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica es un proceso muy complejo; el incremento de la concentraci&oacute;n de etanol a medida que transcurre la fermentaci&oacute;n supone un obst&aacute;culo para el correcto crecimiento y desarrollo microbiano por los efectos negativos que esto conlleva. El etanol afecta la permeabilidad de la membrana celular disminuyendo su selectividad, de forma que las levaduras en un medio con alta concentraci&oacute;n alcoh&oacute;lica pierden propiedades funcionales y no pueden retener cofactores y coenzimas (Leao y Van Uden, 1984).</p>       <p>La producci&oacute;n de etanol obtenido en los trabajos realizadas por Ban-Koffi y Han (1990), Joshi et &aacute;l. (2005) y Ray et &aacute;l. (2006), denotan concentraciones del alcohol del 8, 10,8-11,8 y 7%, utilizando c&eacute;lulas de <i>S. cerevisiae</i> en pulpa de pi&ntilde;a, durazno y mara&ntilde;&oacute;n, y adicionando sales minerales. En la presente investigaci&oacute;n se observ&oacute; como importante la evaluaci&oacute;n de cepas nativas con potencial en la producci&oacute;n de etanol, a partir de excedentes de pl&aacute;tano dando un valor agregado a los residuos poscosecha.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La s&iacute;ntesis de etanol por v&iacute;a microbiana es, a nivel mundial, una alternativa interesante para la actual demanda de combustibles as&iacute; como para la obtenci&oacute;n de bebidas alcoh&oacute;licas. Los estudios sobre selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de levaduras nativas productoras de etanol son de fundamental importancia para conocer especies eficientes en t&eacute;rminos de adaptaci&oacute;n a nuevos sustratos y resistentes al alcohol, para llevar a cabo fermentaciones alcoh&oacute;licas completas. El trabajo realizado permiti&oacute; encontrar en las condiciones experimentales descritas, cepas nativas productoras de etanol, en valores semejantes a la cepa de referencia.</p>       <p>Este aporte contribuye al desarrollo regional en la implementaci&oacute;n de tecnolog&iacute;as con eficientes rendimientos, ecol&oacute;gicamente limpias y orientadas principalmente a dar valor agregado a nuestros recursos naturales y agroindustriales.</p>       <p><b>Conclusiones</b></p>       <p>El estudio de la biodiversidad microbiana productora de alcohol et&iacute;lico, existente en la regi&oacute;n, es de suma importancia porque contribuye al desarrollo de tecnolog&iacute;as de conservaci&oacute;n del ambiente y a la utilizaci&oacute;n de los recursos propios para la agroindustria del pl&aacute;tano.</p>       <p>La obtenci&oacute;n de etanol a partir de excedentes de producci&oacute;n de cultivo de pl&aacute;tano representa un alternativa viable para el aprovechamiento de materias primas de bajo valor comercial de una manera m&aacute;s sustentable permitiendo a la comunidad un mejoramiento socioecon&oacute;mico.</p>       <p><b>Agradecimientos</b></p>       <p>A la Universidad de C&oacute;rdoba por el apoyo financiero para el desarrollo de esta investigaci&oacute;n.</p>       <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>       <!-- ref --><p>1 Aguirre, O. L., Garc&iacute;a, G. F., Garc&iacute;a, J., Ilera, F. M., Juncadella, R. M. Lizondo, C. M. et &aacute;l. 2001. Validaci&oacute;n de m&eacute;todos de an&aacute;lisis en materias primas y especialidades farmac&eacute;uticas. En Validaci&oacute;n de m&eacute;todos anal&iacute;ticos. Asociaci&oacute;n Espa&ntilde;ola de Farmac&eacute;uticos de la Industria. Barcelona: AEFL.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-3475200900010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Alfenore, S., Molina, C., Guillouet, S., Goma, G. 2002. Improving ethanol production and viability of S. cerevisiae by a vitamin feeding. Appl Microbiol Biotechnol 60: 67-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-3475200900010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Ban-Koffi, L., Han, Y. W. 1990. Alcohol production from pineapple waste. World Journal of Microbiology and Biotechnology 6 (3): 281-284.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-3475200900010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Caridi, A. 2003. Effect of Protectants on the fermentation performance of wine yeasts subjected to osmotic stress. Food Technol Biotechnol 41 (2): 145-148.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-3475200900010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Casas, E. 1999. Microorganismos responsables de alteraciones en alimentos altamente azucarados. Universidad Complutense de Madrid. Tesis Doctoral. Facultad de Ciencias Biol&oacute;gicas, Departamento de Microbiolog&iacute;a.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-3475200900010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Corpodib. 2003. Corporaci&oacute;n para el Desarrollo Industrial de la Biotecnolog&iacute;a y Producci&oacute;n limpia. Programa estrat&eacute;gico nacional para la producci&oacute;n de alcohol carburante para gasolina colombiana. <a href="http://www.corpodib.com/estudios1.htm" target="_blank">http://www.corpodib.com/estudios1.htm</a> Bogot&aacute; D.C.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-3475200900010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Deak, T., Beuchat, L. 1996. Handlbook of food Spoilage Yeasts. Boca Raton: CRC Press.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-3475200900010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Ecopetrol. Mayo-Junio de 2005. Carta petrolera, 111 Disponible en: <a href="http://www.ecopetrol.com.co/especiales/carta_petrolera2005/portada.htm" target="_blank">http://www.ecopetrol.com.co/especiales/carta_petrolera2005/portada.htm</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475200900010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Joshi, V. K., Shah, P. K., Kumar, K. 2005. Evaluation of peach cultivars for wine preparation. Journal of Food Science and Technology 42(1): 83-89.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475200900010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Leao, C. Y., Van Uden, N. 1984. Effects of ethanol and other 306 alkanois on the kinetics and the activation on the general amino acid permease of Saccharomyces cerevisiae. Biotechnol Bioeng 26: 403-411.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475200900010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 Miller, J. C., Miller, J. N. 1993. Estad&iacute;stica para qu&iacute;mica anal&iacute;tica. 2 edici&oacute;n. Wilmington: Addison-Wesley Iberoamericana.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475200900010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Montes, A. R., Rigo, M., Joekes I. 2003. Ethanol Fermentation of a Diluted Molasses Medium by Saccharomyces cerevisiae immobilized on chrysotile Braz. Archives of Biology and Technology 46 (4): 32-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475200900010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Navarro, A., Marangoni, H., Callier, D. 1986. Producci&oacute;n de etanol por fermentaci&oacute;n con alta concentraci&oacute;n levaduras. Revista Argentina de Microbiolog&iacute;a 18 (1): 7-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-3475200900010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Ortega, J., Marrugo, J., Alvis. A. 2003. Contribuci&oacute;n al desarrollo del acuerdo de competitividad de la cadena productiva del pl&aacute;tano en una zona del departamento de C&oacute;rdoba (informe parcial). Centro de Investigaciones Universidad de C&oacute;rdoba. Monter&iacute;a, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475200900010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Oviedo, L. E., Doria, J. A., Arrieta, A. 2007a. Identificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de levaduras nativas con potencial fermentador asociadas a cultivos de pl&aacute;tano (<i>Musa</i> paradisiaca) en los municipios de Los C&oacute;rdobas y Mo&ntilde;itos, departamento de C&oacute;rdoba. Tesis pregrado Biolog&iacute;a, Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a, C&oacute;rdoba, Colombia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475200900010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Oviedo, L. E., Doria, J. A., Arrieta, A. 2007b. Capacidad de tolerancia al etanol de levaduras aisladas de cultivo de pl&aacute;tano (<i>Musa</i> paradisiaca ) en C&oacute;rdoba, Colombia. Labslatin American Biodegradation and Biodeterioration Symposium. Biotecnolog&iacute;a, Agricultura y Ambiente en el siglo XXI. Pontificia Universidad Javeriana. Ponencia. Memorias, Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475200900010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Oviedo, L. E., Doria, J. A., Arrieta, A. 2006c. Evaluaci&oacute;n de levaduras aut&oacute;ctonas con potencial fermentador para la producci&oacute;n de etanol a partir de Pl&aacute;tano (<i>Musa</i> paradisiaca) en el departamento de C&oacute;rdoba. Ponencia. VII Simposio Latinoamericano de Qu&iacute;mica Anal&iacute;tica Ambiental y Sanitaria, Medell&iacute;n.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475200900010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Querol, S. A., Pando, B. R., Su&aacute;rez, V. B., Fern&aacute;ndez, T. N., Rodr&iacute;gez, M. R. 2006. Yeast species associated with the spontaneous fermentation of cider. Food Microbiology 24: 25-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475200900010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Ray, R. C., Mohanty, S., Ray, P., Swain, M. R. 2006. Fermentation of cashew (Anacardium occidentale L.) &quot;apple&quot; into wine. Journal of Food Processing and Preservation 30 (3): 314-322.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-3475200900010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Vollhardt, M., Schore, N. L. 2007. Organic chemistry. Structure and function. 5 edition. New York: W. H. Freeman and Company.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-3475200900010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Yarrow, D. 1998. Methods for isolation, manteinance and identification of yeasts. En Kurtzman, C. P. J. W. The yeasts a Taxonimic Study. 4 ed. Amsterdam: Elsevier Science Publishers.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-3475200900010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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