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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la transferencia de oxígeno en cultivos con lactococcus lactis empleando un sistema de fermentación con aireación externa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In aerobic fermentations, oxygen as terminal electron acceptor in respiration process, is commonly a limiting due to factors like its low solubility in aqueous solutions, bioreactors&#8217; geometric factors and operating characteristics, liquid media properties, oxygen concentration in gas supply, microorganisms&#8217; characteristics, environmental culture conditions, power supply by agitation system, etc. Oxygen limitation is present in cultures using the IBUN 34.1 Lactococcus lactis strain where oxygen availability is low some minutes after the exponential phase starts. A high transfer rate oxygen supply system was thus designed to overcome such limitations; it consisted of an external aeration fermentation system (EAFS) which was compared in this work with a conventional agitated tank fermenter equipped with two Rushton turbines and internal diffuser aeration flute mechanism. This paper evaluates the EAFS; some operational variables were selected and studied as well as their effect on oxygen transfer. Our results showed that agitation and culture medium flow through the aerator (called external recirculation flow) were the variables having the main effect on overall volumetric mass transfer coefficient (kLa). The highest kLa value in the conventional bioreactor having internal aeration was 40.68 kLa (h-1), while the EAFS reached 90 (h-1).]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[biorreactores]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Evaluaci&oacute;n de la transferencia de ox&iacute;geno en cultivos con <i>lactococcus lactis</i> empleando un sistema de fermentaci&oacute;n con aireaci&oacute;n externa </b></font></p>     <p><font size="3"> Evaluating oxygen transfer in a <i>Lactococcus lactis</i> cultures using an external aeration fermentation system (EAFS)</font></p>     <p><i> Andrea Soler<sup>1</sup> , Gustavo Buitrago H<sup>2</sup> </i></p>     <p> <sup>1</sup> Ingeniera qu&iacute;mica Msc., Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. <a href="mailto:apsolerg@unal.edu.co">apsolerg@unal.edu.co</a>     <br> <sup>2</sup> Ingeniero qu&iacute;mico Msc., Instituto de Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia. <a href="mailto:gbuitragoh@unal.edu.co">gbuitragoh@unal.edu.co</a>     <br> </p>     <p>Recibido: marzo 8 de 2010 Aprobado: noviembre 3 de 2010</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En fermentaciones aerobias el ox&iacute;geno, como aceptor terminal de electrones en el proceso de respiraci&oacute;n, com&uacute;nmente se constituye en limitante debido entre otros factores al dise&ntilde;o del biorreactor (factores geom&eacute;tricos), a las condiciones de operaci&oacute;n de los fermentadores (condiciones ambientales requeridas en el cultivo, potencia transferida al cultivo por el sistema de agitaci&oacute;n, propiedades del medio l&iacute;quido), demanda de ox&iacute;geno por parte del microorganismo, sistema de aireaci&oacute;n (concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en el gas, solubilidad del ox&iacute;geno). La limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno se refleja en la fermentaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> cepa IBUN 34.1, en que presenta una baja disponibilidad de ox&iacute;geno desde muy temprano en la fase exponencial del cultivo. Para superar estas limitaciones se dise&ntilde;&oacute; y desarroll&oacute; un sistema de suministro de ox&iacute;geno de alta tasa de transferencia, consistente en un sistema de fermentaci&oacute;n con aireaci&oacute;n externa (SFAE), el cual es comparado en este trabajo con el sistema tradicional de fermentador agitado dotado con dos turbinas tipo Rushton y aireaci&oacute;n por difusor interno.</p>     <p> En este trabajo se eval&uacute;a la operaci&oacute;n del SFAE, se seleccionan y estudian algunas variables operacionales y su efecto sobre la transferencia de ox&iacute;geno gas-l&iacute;quido. Los resultados indican que las variables que tienen efecto significativo sobre el coeficiente volum&eacute;trico global de transferencia de masa <i>k<sub>L</sub>a</i> son la agitaci&oacute;n y el flujo de medio de cultivo que circula por el aireador externo denominado flujo de recirculaci&oacute;n. Los valores de <i>k<sub>L</sub>a</i> obtenidos indican que con el fermentador convencional con aireaci&oacute;n interna el mayor valor de <i>k<sub>L</sub>a</i> alcanzado fue de 40,68 (h<sup>-1</sup>), en tanto que con el SFAE se alcanzaron valores de 63,18 (h<sup>-1</sup>).</p>     <p><b>Palabras clave</b>: biorreactores, <i>k<sub>L</sub>a</i>, transferencia de ox&iacute;geno, fermentaciones aer&oacute;bicas, transferencia de masa gas-l&iacute;quido.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> In aerobic fermentations, oxygen as terminal electron acceptor in respiration process, is commonly a limiting due to factors like its low solubility in aqueous solutions, bioreactors&rsquo; geometric factors and operating characteristics, liquid media properties, oxygen concentration in gas supply, microorganisms&rsquo; characteristics, environmental culture conditions, power supply by agitation system, etc. Oxygen limitation is present in cultures using the IBUN 34.1 <i>Lactococcus lactis</i> strain where oxygen availability is low some minutes after the exponential phase starts. A high transfer rate oxygen supply system was thus designed to overcome such limitations; it consisted of an external aeration fermentation system (EAFS) which was compared in this work with a conventional agitated tank fermenter equipped with two Rushton turbines and internal diffuser aeration flute mechanism.</p>     <p> This paper evaluates the EAFS; some operational variables were selected and studied as well as their effect on oxygen transfer. Our results showed that agitation and culture medium flow through the aerator (called external recirculation flow) were the variables having the main effect on overall volumetric mass transfer coefficient (<i>k<sub>L</sub>a</i>). The highest <i>k<sub>L</sub>a</i> value in the conventional bioreactor having internal aeration was 40.68 <i>k<sub>L</sub>a</i> (h<sup>-1</sup>), while the EAFS reached 90 (h<sup>-1</sup>).</p>     <p><b>Key words</b>: Bioreactor, <i>k<sub>L</sub>a</i>, oxygen transfer, aerobic fermentation, gas&ndash;liquid mass transfer.</p> <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> En cultivos con <i>Lactococcus lactis</i> cepa IBUN 34.1 se presenta limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno (Vanegas, 2006; Galaction <i>et al.</i>, 2004) a las condiciones de operaci&oacute;n que proveen fermentadores convencionales. En estos biorreactores el coeficiente volum&eacute;trico global de transferencia de masa (<i>k<sub>L</sub>a</i>) es el par&aacute;metro de mayor relevancia en el dise&ntilde;o y la operaci&oacute;n, dependiendo de una gran cantidad de factores, por ejemplo, de la velocidad de agitaci&oacute;n que modifica el r&eacute;gimen de turbulencia y disminuye el tama&ntilde;o de burbuja. Sin embargo, el consumo de energ&iacute;a es proporcional a la velocidad a la tercera potencia y al di&aacute;metro del agitador a la quinta potencia (Calderbank y Moo-Young, 1961; Bandaiphet y Prasertsan, 2006; Rushton <i>et al.</i>, 1950), incidiendo en el costo de operaci&oacute;n. Adicionalmente, debe tenerse en cuenta que altas velocidades de agitaci&oacute;n tienen una influencia negativa en la productividad de complejos enzim&aacute;ticos, debido al efecto de los esfuerzos de corte sobre el cultivo (Bandaiphet y Prasertsan, 2006; Kwon <i>et al.</i>, 1996). Otros factores que afectan la transferencia de ox&iacute;geno son las caracter&iacute;sticas geom&eacute;tricas y operacionales de los recipientes de fermentaci&oacute;n, la composici&oacute;n del medio de cultivo, la viscosidad, la tensi&oacute;n superficial, la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno en la corriente de gas, la morfolog&iacute;a del microorganismo y el &aacute;rea superficial que proveen las burbujas. Es por esto que el <i>k<sub>L</sub>a</i> es un par&aacute;metro que determina tanto el escalado de las fermentaciones aerobias como la estructura de costos en fermentadores convencionales (Gaddis, 1999). En estos biorreactores, el <i>k<sub>L</sub>a</i> se puede calcular por un gran n&uacute;mero de ecuaciones emp&iacute;ricas y por ecuaciones te&oacute;ricas (Galaction <i>et al.</i>, 2004; Kawase <i>et al.</i>, 1992), unas y otras muestran que la viscosidad incide dr&aacute;sticamente sobre los valores de <i>k<sub>L</sub>a</i>. </p>      <p> La eficiencia en la aireaci&oacute;n de un sistema fermentativo depende de la solubilidad del ox&iacute;geno, la velocidad de difusi&oacute;n en los medios de cultivo, la demanda de ox&iacute;geno del cultivo y la capacidad del biorreactor de satisfacer dicha demanda en la poblaci&oacute;n microbiana. La concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto en los medios de cultivo depende de la velocidad de consumo (oxygen uptake rate, OUR) de las c&eacute;lulas y de la velocidad de transferencia del mismo (oxygen transfer rate, OTR). La OTR depende del coeficiente de transferencia de ox&iacute;geno <i>k<sub>L</sub>a</i> y del gradiente entre la concentraci&oacute;n de equilibrio y la concentraci&oacute;n actual en el l&iacute;quido, e incide sobre los &iacute;ndices de productividad y los rendimientos (Zhang y Thomas, 1996; Kawase <i>et al.</i>, 1992; Garc&iacute;a y G&oacute;mez, 2005). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Metodolog&iacute;a </b></p>      <p><b><i> Microorganismo </i></b></p>     <p> El microorganismo empleado en este estudio es el Lactoccoccus lactis, bacteria gram positiva, mes&oacute;fila, perteneciente a la familia Streptococaceae, aislado y catalogado como cepa IBUN 34.1, depositada en el banco de germoplasma del Instituto de Biotecnologia de la Universidad Nacional de Colombia (IBUN).</p>      <p><b><i> Medio de fermentaci&oacute;n e in&oacute;culo </i></b></p>     <p> El medio de cultivo utilizado en los ensayos (Vanegas, 2006) contiene sacarosa 30 g/L, extracto de levadura 20 g/L, K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 20 g/L, CaCl<sub>2</sub>.H<sub>2</sub>O 0,066 g/L, MgSO<sub>4</sub>.H<sub>2</sub>O 0,023 g/L, MnSO<sub>4</sub>.H<sub>2</sub>O 0,011 g/L y agua destilada c.s.p 1 litro. Para la caracterizaci&oacute;n hidrodin&aacute;mica tanto de la configuraci&oacute;n tradicional del reactor, como para el sistema con el aireador externo, se emple&oacute; agua como medio.</p>      <p> El in&oacute;culo se prepar&oacute; en 50 mL de medio de cultivo contenidos en un Erlenmeyer de 250 mL al cual se adicionan 40 &mu;L de la cepa suministrada. El in&oacute;culo se mantuvo a 30 <sup>o</sup>C y 200 rpm por 12 h, al cabo de las cuales se verific&oacute; un crecimiento microbiano que corresponda a una densidad &oacute;ptica mayor a 0,6, medida a 600 nm (Vanegas, 2006).</p>      <p><b><i> Biorreactor </i></b></p>     <p> En este trabajo se comparan los valores de <i>k<sub>L</sub>a</i> obtenidos en un fermentador convencional con aquellos obtenidos en el SFAE propuesto.</p>      <p> <i>Fermentador convencional</i>. Se emple&oacute; un fermentador Biolab con un recipiente de vidrio de 1,6 L de volumen de operaci&oacute;n y di&aacute;metro 117 mm, equipado con dos turbinas Rushton de 56 mm de di&aacute;metro separadas 56 mm entre s&iacute; y del fondo del recipiente a la primera turbina; cuenta con un difusor de gas del tipo flauta en &quot;L&quot; con 5 orificios al que se suministra aire a presi&oacute;n y filtrado (<a href="#t1">tabla 1</a>). El biorreactor est&aacute; equipado con medidores de pH, ox&iacute;geno disuelto (electrodo polarogr&aacute;fico InPro&reg;6800/12/220, Mettler, Toledo), controlador de temperatura y controlador de la velocidad de agitaci&oacute;n. El fermentador se inocula con 50 mL de in&oacute;culo, el cultivo se mantiene a 30 <sup>o</sup>C y el pH inicial se ajusta en 7,0. El pH y el ox&iacute;geno disuelto (OD) no se controlan durante el cultivo. La agitaci&oacute;n y aireaci&oacute;n se fijan seg&uacute;n el r&eacute;gimen por experimentar.</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10t1.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Sistema de fermentaci&oacute;n con aireador externo</b>. Se emple&oacute; el fermentador convencional Biolab, con las siguientes adaptaciones (<a href="#f1">figura 1</a>):</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f1.jpg"></a></p>  <ul>     <li>Se elimina el difusor interno.</li>     <li>Se adaptan puertas de entrada y salida de medio, desde el fermentador hacia el aireador externo y el retorno al fermentador.</li>     <li>El medio es impulsado por una bomba perist&aacute;ltica.</li>     <li>El aireador externo (<a href="#f2">figura 2</a>) consta de un difusor de micro burbujeo de 17 cm de largo y 1 cm de di&aacute;metro fabricado en acero sinterizado, en este dispositivo se pone en contacto la fase l&iacute;quida con la corriente de aire, en circulaci&oacute;n paralela, y retorna al fermentador agitado.</li>     </ul>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f2.jpg"></a></p>      <p> El uso de microburbujeadores en tanques agitados se recomienda para microorganismos sensibles al estr&eacute;s mec&aacute;nico, debido a que incrementa el &aacute;rea entre las fases gas-l&iacute;quido, reflej&aacute;ndose en posibles reducciones en el flujo de aire y en las velocidades de agitaci&oacute;n (Cockx <i>et al.</i>, 1995). Se seleccion&oacute; este tipo de difusor en el sistema de fermentaci&oacute;n con aireador externo (SFAE) por proveer tama&ntilde;os de burbuja reducidos y grandes &aacute;reas superficiales de contacto con la fase l&iacute;quida, caracter&iacute;sticas que pueden ejercer un efecto favorable.</p>      <p> El dise&ntilde;o del (SFAE) tiene como prop&oacute;sito aumentar la transferencia de ox&iacute;geno, descrita y analizada por medio del coeficiente volum&eacute;trico global de transferencia de masa (<i>k<sub>L</sub>a</i>). El SFAE dise&ntilde;ado (<a href="#f1">figura 1</a>) incorpora un aireador externo que emplea un microburbujeador de acero sinterizado  que provee una amplia &aacute;rea interfacial gas-l&iacute;quido, el cual se instala en una unidad de contacto a la que llega una l&iacute;nea de flujo de recirculaci&oacute;n y la l&iacute;nea de suministro de aire. En el aireador externo se puede incrementar la presi&oacute;n por encima de la presi&oacute;n atmosf&eacute;rica, de esta manera se incrementa la concentraci&oacute;n de equilibrio del ox&iacute;geno en el medio l&iacute;quido. El incremento de presi&oacute;n est&aacute; limitado por la capacidad del microorganismo de soportar estas presiones.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El SFAE evaluado es un sistema de fermentaci&oacute;n con una alta velocidad de transferencia de ox&iacute;geno que no presenta limitaci&oacute;n del mismo en la fermentaci&oacute;n con el <i>Lactococcus lactis</i> IBUN 34.1, diferenci&aacute;ndose sustancialmente de los sistemas de fermentaci&oacute;n convencionales, agitados y con difusor de aire del tipo burbujeador. Por las caracter&iacute;sticas del SFAE, presenta ventajas que lo hacen promisorio para ser utilizado en fermentaciones extractivas, en cultivos altamente sensibles a esfuerzos de corte, en cultivos con c&eacute;lulas inmovilizadas, entre otras aplicaciones potenciales.</p>      <p> Teniendo en cuenta las caracter&iacute;sticas del SFAE, en este trabajo se plantea estudiar tres condiciones de operaci&oacute;n con el fin de alcanzar una mayor transferencia de ox&iacute;geno:</p>  <ol>     <li> Empleo de SFAE bajo condiciones controladas de flujo y presi&oacute;n (Soler, 2009).</li>     <li> Incrementos de la presi&oacute;n en el aireador externo para modificar la solubilidad del ox&iacute;geno en el medio de cultivo (Pinheiro y Mota, 2000), la solubilidad y la difusividad son funci&oacute;n directa de la presi&oacute;n en el sistema. La determinaci&oacute;n de las condiciones de operaci&oacute;n en el aireador externo propuesto est&aacute;n afectadas por la capacidad de las c&eacute;lulas de soportar estr&eacute;s oxidativo o mec&aacute;nico (Kwon <i>et al.</i>, 1996), factor que se evaluar&aacute; experimentalmente.</li>     <li> Variaci&oacute;n del tiempo de contacto entre el aire y el medio de cultivo (Soler, 2009).</li>     </ol>       <p><b> Evaluaci&oacute;n de los cultivos </b></p>     <p> El seguimiento de la fermentaci&oacute;n se realiza determinando biomasa por densidad &oacute;ptica a 600 nm, tomando lecturas de pH y de OD como porcentaje de saturaci&oacute;n (Vanegas, 2006; Soler, 2009).</p>      <p> <b>Determinaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> cuando se emplea agua como medio</b>. En esta caracterizaci&oacute;n del SFAE se emple&oacute; el m&eacute;todo est&aacute;tico en la estimaci&oacute;n de los valores de <i>k<sub>L</sub>a</i> (Gaddis, 1999; Galaction <i>et al.</i>, 2004). Este m&eacute;todo presenta como ventaja que puede aplicarse para diferentes medios de cultivo y los resultados corresponden a condiciones en que no hay consumo de ox&iacute;geno. El m&eacute;todo est&aacute;tico consiste en medir la velocidad de incremento de la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto en el medio; previamente se reduce esta concentraci&oacute;n hasta valores cercanos a cero, haciendo pasar nitr&oacute;geno gaseoso por el sistema durante al menos 20 min. Se suspende el flujo de nitr&oacute;geno y se inicia la aireaci&oacute;n a las condiciones de operaci&oacute;n establecidas (velocidad de agitaci&oacute;n y velocidad de aireaci&oacute;n). El ox&iacute;geno disuelto se midi&oacute; empleando un electrodo polarogr&aacute;fico con cartucho de membrana reemplazable InPro&reg;6800/12/220 (Mettler, Toledo).</p>      <p> Las curvas obtenidas por este m&eacute;todo se ajustan a la <a href="#e1">ecuaci&oacute;n (1)</a>, de velocidad de transferencia, y se determina el coeficiente volum&eacute;trico de transferencia de ox&iacute;geno <i>k<sub>L</sub>a</i> para cada condici&oacute;n experimental.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="e1"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10e1.jpg"></a></p>      <p> <b>Determinaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> en cultivos empleando la t&eacute;cnica din&aacute;mica</b> (Kawase <i>et al.</i>, 1992; Zhang y Thomas, 1996; Montes <i>et al.</i>, 1998). Cuando el cultivo se encuentra en fase exponencial de crecimiento, se suspende el suministro de aire permitiendo que se reduzca la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto hasta un valor cercano a la concentraci&oacute;n cr&iacute;tica, en este momento se permite la reaireaci&oacute;n bajo las condiciones de operaci&oacute;n evaluadas, obteniendo curvas como la descrita en la <a href="#f3">figura 3</a>. Las curvas obtenidas fueron modeladas en la zona I para la determinaci&oacute;n de la demanda de ox&iacute;geno OURx, y en la zona II, integrando la expresi&oacute;n para la zona de reaireaci&oacute;n para calcular el kL a en una ecuaci&oacute;n de la forma:</p>      <p align="center"><a name="e2"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10e2.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f3.jpg"></a></p>      <p> En esta ecuaci&oacute;n A y B son constantes, ???es una constante que corresponde a - <i>k<sub>L</sub>a</i>. El ajuste de los datos experimentales a la ecuaci&oacute;n se realiz&oacute; con ayuda del programa Data Fit 9 (Oakdale Engineering, versi&oacute;n libre, 2002).</p>      <p> Esta t&eacute;cnica presenta algunas restricciones tales como la dependencia del tiempo de respuesta del electrodo de ox&iacute;geno disuelto, el cual debe ser menor a 1/<i>k<sub>L</sub>a</i>, en el presente trabajo se verifica que el electrodo cumpla esta condici&oacute;n.</p>      <p><b> Dise&ntilde;o experimental </b></p>      <p> Para el desarrollo de la evaluaci&oacute;n hidrodin&aacute;mica del sistema de aireaci&oacute;n externo se plante&oacute; el modelo factorial no balanceado de efectos fijos (Montgomery, 1997) correlacionando las variables que afectan las condiciones de trasferencia de ox&iacute;geno con el <i>k<sub>L</sub>a</i>. Se seleccionaron dos factores, el flujo de recirculaci&oacute;n del l&iacute;quido (FR) y flujo de aire (FA), y tres covariables, la presi&oacute;n manom&eacute;trica en el difusor (PA), la agitaci&oacute;n (A) y la temperatura (T). Para emplear este modelo se establecen las combinaciones totales posibles de los niveles en los factores FA y FR. Para la evaluaci&oacute;n de las covariables (PA, A y T) se tiene en cuenta que desarrollar el modelo completo implicar&iacute;a un total de 128 ensayos, por lo que se opta por sesgar, partiendo de algunas combinaciones iniciales de FR y FA y haciendo la variaci&oacute;n de los par&aacute;metros de las covariables una a la vez. La <a href="#t2">tabla 2</a> corresponde las condiciones evaluadas en los experimentos realizados de acuerdo con la metodolog&iacute;a de dise&ntilde;o experimental.</p>      <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10t2.jpg"></a></p>      <p><b> Resultados y an&aacute;lisis </b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Determinaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> en el fermentador convencional empleando agua </b></p>     <p> En la <a href="#t3">tabla 3</a> se presentan valores obtenidos para el <i>k<sub>L</sub>a</i>, empleando el fermentador convencional y agua como medio. Los resultados indican que el valor de <i>k<sub>L</sub>a</i> presenta una alta dependencia con las condiciones de aireaci&oacute;n y agitaci&oacute;n. El valor m&aacute;ximo alcanzando corresponde a las condiciones extremas de 1 volumen de aire/volumen de medio&bull;minuto (vvm) y 300 rpm, con un coeficiente de transferencia de 40,68 (h<sup>-1</sup>). Se determin&oacute; el tiempo muerto (0,419 s) y el tiempo de respuesta del electrodo de medici&oacute;n de ox&iacute;geno disuelto con el fin de evaluar el criterio de aceptabilidad. Se escogieron las condiciones extremas entre un tiempo de respuesta de 75 (s) y un <i>k<sub>L</sub>a</i> de 1,13*10<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>(40,68 h<sup>-1</sup>). La respuesta se considera adecuada si: (t &lt; 1/ <i>k<sub>L</sub>a</i>), condici&oacute;n que se cumple por ser t = 75 (s) y 1/ <i>k<sub>L</sub>a</i> = 82 (s).</p>      <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10t3.jpg"></a></p>      <p><b>Determinaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> en cultivos con <i>Lactococcus lactis</i> IBUN 34.1 realizados en el fermentador convencional</b></p>     <p> Para determinar el efecto de la aireaci&oacute;n y la agitaci&oacute;n en el fermentador convencional de tanque agitado y difusor interno, se evalu&oacute; la cin&eacute;tica de producci&oacute;n de biomasa en estas fermentaciones y el comportamiento del pH. En la <a href="#f4">figura 4</a> se presentan los resultados para estas condiciones, estos indican que las condiciones de estandarizaci&oacute;n del in&oacute;culo resultaron adecuadas al obtener una concentraci&oacute;n inicial de biomasa similar en los cultivos. Los resultados muestran que la biomasa final es dependiente de los par&aacute;metros evaluados (velocidades de agitaci&oacute;n y aireaci&oacute;n), en los ensayos realizados el mayor valor que se alcanz&oacute; corresponde a una velocidad de aireaci&oacute;n de 1,75 vvm (volumen de aire por volumen de medio por minuto) y una velocidad de agitaci&oacute;n de 250 rpm (<a href="#f4">figura 4</a>). El comportamiento del pH en el transcurso de las fermentaciones no se ve afectado para los niveles de aireaci&oacute;n y agitaci&oacute;n evaluados, manteniendo un comportamiento similar en todos los ensayos (<a href="#f4">figura 4</a>).</p>      <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f4.jpg"></a></p>      <p> En todos los cultivos con <i>Lactococcus lactis</i> IBUN 34.1 realizados en la fermentaci&oacute;n convencional, la limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno persiste a&uacute;n bajo las condiciones extremas, como se observa en la <a href="#f5">figura 5</a>, donde el porcentaje de ox&iacute;geno disuelto llega a cero en la tercera hora de fermentaci&oacute;n, que corresponde a la etapa inicial de la fase exponencial del cultivo. Bajo las condiciones de experimentaci&oacute;n evaluadas para el fermentador convencional, no se logra satisfacer la demanda de ox&iacute;geno en el cultivo.</p>      <p align="center"><a name="f5"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f5.jpg"></a></p>      <p> Los resultados indican que hay mayor incidencia en la transferencia de ox&iacute;geno por cambios en la agitaci&oacute;n al compararlos con cambios en la aireaci&oacute;n. El aumento de la concentraci&oacute;n de biomasa debido al incremento en los niveles de aireaci&oacute;n, indica que efectivamente al mejorar las condiciones de oxigenaci&oacute;n se incrementa la productividad del cultivo.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n del sistema de fermentaci&oacute;n con aireador externo (SFAE)</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Dise&ntilde;o del aireador externo</b>. En la <a href="#f2">figura 2</a> se presenta el aireador externo en despiece y ensamblado y en la <a href="#f1">figura 1</a> el diagrama del SFAE. Los factores que se tomaron para caracterizar este sistema fueron:</p>  <ul>     <li> Flujo de gas (FA) medido en vvm.</li>     <li> Flujo de l&iacute;quido recirculado (FR) medido como n&uacute;mero de veces que circula el medio contenido en el fermentador por el aireador externo por minuto (CPM).</li>     </ul>      <p> Las covariables seleccionadas fueron:</p>  <ul>     <li> Agitaci&oacute;n (rpm).</li>     <li> Presi&oacute;n en el aireador externo (psi).</li>     <li> Temperatura (<sup>o</sup>C).</li>     </ul>      <p> Las variables respuesta fueron:</p>  <ul>     ]]></body>
<body><![CDATA[<li> pH </li>     <li> Ox&iacute;geno disuelto.</li>     <li> Biomasa.</li>     <li> Coeficiente volum&eacute;trico de transferencia de ox&iacute;geno <i>k<sub>L</sub>a</i>.</li>     </ul>      <p> El volumen de medio se mantuvo constante durante los ensayos y la variable independiente fue el tiempo.</p>      <p> <b>Caracterizaci&oacute;n hidrodin&aacute;mica</b>. Esta etapa del trabajo se realiz&oacute; empleando agua como medio en el fermentador. El error experimental se determina al realizar la t&eacute;cnica de medici&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> por triplicado en el punto central, correspondiendo a FR (Re/m) 0,87; FA (vvm) 0,65; agitaci&oacute;n (rpm) 176 y temperatura (<sup>o</sup>C) 18, con lo cual se obtuvo un porcentaje de error relativo de 0,6%, suficientemente bajo para asegurar la estabilidad del sistema, en particular durante la etapa de desgasificaci&oacute;n (zona 1 en la <a href="#f3">figura 3</a>).</p>      <p> La <a href="#f6">figura 6</a> muestra la variaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i> con el flujo de recirculaci&oacute;n (FR) y con el flujo de aire (FA), y la <a href="#f7">figura 7</a> muestra el efecto de la velocidad de agitaci&oacute;n sobre el coeficiente de trasferencia de ox&iacute;geno.</p>      <p align="center"><a name="f6"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f6.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="f7"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f7.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En la <a href="#f8">figura 8</a> se muestra el efecto del cambio en la presi&oacute;n manom&eacute;trica sobre el <i>k<sub>L</sub>a</i>, se observa una tendencia a incrementar el coeficiente hasta obtener un m&aacute;ximo a una presi&oacute;n manom&eacute;trica de 15 psi. Cuando el sistema opera a una presi&oacute;n manom&eacute;trica de 20 psi se presenta una disminuci&oacute;n en el <i>k<sub>L</sub>a</i> que puede explicarse por inestabilidad del sistema, originada en la relaci&oacute;n entre el flujo de recirculaci&oacute;n y el flujo de aire, ya que este &uacute;ltimo se incrementa con la presi&oacute;n afectando la interfase gas-l&iacute;quido, indicando que el flujo del l&iacute;quido es insuficiente para el flujo de aire disponible.</p>      <p align="center"><a name="f8"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f8.jpg"></a></p>      <p> La <a href="#f7">figura 7</a> muestra el efecto significativo que tiene la agitaci&oacute;n sobre el <i>k<sub>L</sub>a</i>, indicando la importancia de este factor en el SFAE. Lo observado indica que la disponibilidad de ox&iacute;geno en el cultivo depende de la capacidad del fermentador de homogeneizar en la masa contenida el flujo de recirculado que retorna del aireador externo. La tendencia de los resultados en las figuras <a href="#f6">6</a> y <a href="#f7">7</a> indican que el efecto de la agitaci&oacute;n es independiente del flujo de recirculaci&oacute;n.</p>      <p> Teniendo en cuenta que en los ensayos con el SFAE se emple&oacute; un nuevo medidor de ox&iacute;geno disuelto, se eval&uacute;a nuevamente el criterio de aceptabilidad por tiempo de respuesta en las condiciones extremas, entre un tiempo de respuesta t = 25,9 (s) y el mayor <i>k<sub>L</sub>a</i> obtenido bajo las condiciones de FR (CPM) 1,73; FA (vvm) 1; agitaci&oacute;n (rpm) 154 y temperatura (<sup>o</sup>C) 18, fue de 0,0251 s<sup>-1</sup> que corresponde a un valor de 1/ <i>k<sub>L</sub>a</i> = 39,84 s; el tiempo muerto medido experimentalmente para el electrodo fue de 1,8 s. La respuesta se considera adecuada si: (t < 1/ <i>k<sub>L</sub>a</i>), condici&oacute;n que se cumple.</p>      <p><b> Evaluaci&oacute;n del sistema de fermentaci&oacute;n con aireador externo en el cultivo con el <i>Lactococcus lactis</i> IBUN 34.1</b></p>      <p><b> An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></p>     <p> La <a href="#t4">tabla 4</a> presenta el an&aacute;lisis de varianza que permite determinar los efectos que son estad&iacute;sticamente significativos. Esta tabla muestra la fuente de variabilidad, los grados de libertad asociados (DF), las sumas de cuadrados del error (Seq SS) ajustadas (Adj SS), y el error cuadrado medio ajustado (Adj MS). Una variable tiene efecto estad&iacute;sticamente significativo, al 10% de significancia, si su valor p es menor a 0,1. Bajo las condiciones de experimentaci&oacute;n se encontr&oacute; que los dos factores, agitaci&oacute;n (FA) y flujo de recirculaci&oacute;n (FR), afectan significativamente el valor de <i>k<sub>L</sub>a</i>.</p>      <p align="center"><a name="t4"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10t4.jpg"></a></p>      <p><b> Comportamiento de los cultivos en el SFAE </b></p>     <p> Las fermentaciones en el SFAE, realizadas de acuerdo con el dise&ntilde;o experimental, presentan curvas de crecimiento caracter&iacute;sticas para el cultivo y niveles de biomasa final similares a los alcanzados en cultivos realizados en el fermentador convencional.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En la <a href="#t5">tabla 5</a> se presentan los resultados obtenidos para los cultivos, as&iacute; como los valores obtenidos para la demanda de ox&iacute;geno y el <i>k<sub>L</sub>a</i>. La demanda de ox&iacute;geno aumenta a medida que se incrementa la concentraci&oacute;n de biomasa. Los experimentos se realizaron en dos cultivos, los ensayos 1 al 6 en el primero, y en el segundo la r&eacute;plica del ensayo 6 y los ensayos 7 y 8. La disminuci&oacute;n en la demanda de ox&iacute;geno que se presenta en los ensayos 4 y 5, puede obedecer a la muerte de parte de la biomasa debida a las sucesivas disminuciones en la concentraci&oacute;n de ox&iacute;geno y/o a los cambios en las condiciones de operaci&oacute;n a que se someti&oacute; el cultivo. El ensayo 6 corresponde a la mayor concentraci&oacute;n de biomasa alcanzada en este primer cultivo, en un valor ubicado en el extremo superior de la fase exponencial. Esta carga acumulativa no afecta la determinaci&oacute;n de cada coeficiente volum&eacute;trico de transferencia de ox&iacute;geno, puesto que en el modelamiento puntual de la zona de reaireaci&oacute;n la demanda de ox&iacute;geno y el <i>k<sub>L</sub>a</i> son respuestas dependientes de la eficiencia en la transferencia de ox&iacute;geno del SFAE. Con el fin de verificar la reproducibilidad entre los ensayos de un lote y el siguiente, se realiza una r&eacute;plica del ensayo 6 para una concentraci&oacute;n de biomasa que corresponde a la etapa inicial de la fase exponencial, obteni&eacute;ndose un error del 1,6% en la determinaci&oacute;n del <i>k<sub>L</sub>a</i>, lo que indica que el modelo experimental presenta aceptable reproducibilidad.</p>      <p align="center"><a name="t5"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10t5.jpg"></a></p>      <p> Los valores de <i>k<sub>L</sub>a</i> obtenidos por el m&eacute;todo din&aacute;mico concuerdan con los resultados de la etapa anterior, las variables que tienen mayor incidencia sobre este coeficiente son el flujo de recirculaci&oacute;n FR y la presi&oacute;n. Con el prop&oacute;sito de validar este resultado se realiza una fermentaci&oacute;n con el SFAE, seleccionando como condiciones de operaci&oacute;n un nivel medio que aporte un valor de <i>k<sub>L</sub>a</i> mayor a los obtenidos en el fermentador convencional. De esta manera, se seleccionaron las condiciones que corresponden al ensayo 6 y se desarroll&oacute; la fermentaci&oacute;n. Adicionalmente, se desarroll&oacute; una fermentaci&oacute;n con los niveles m&aacute;s bajos en las variables estudiadas (FR y FA).</p>      <p> Como se observa en la <a href="#f9">figura 9</a>, los resultados obtenidos para estos ensayos presentan curvas de crecimiento similares a las obtenidas con el sistema convencional, y no presentan diferencias significativas para las condiciones evaluadas. Con los niveles de las variables en el menor valor, en el cultivo se presenta limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno a partir de la hora dos, mientras que con la condici&oacute;n propuesta se logra mantener el ox&iacute;geno disuelto en concentraciones cercanas al 60% de saturaci&oacute;n durante toda la fermentaci&oacute;n, eliminando la limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno durante el cultivo.</p>      <p align="center"><a name="f9"><img src="img/revistas/biote/v12n2/v12n2a10f9.jpg"></a></p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> Para las condiciones evaluadas en los ensayos realizados con el fermentador convencional, de tanque agitado y difusor interno, se present&oacute; en todos los ensayos limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno en los cultivos. Sin embargo, se comprob&oacute; que cuando se incrementa la transferencia de ox&iacute;geno se presentan incrementos en los par&aacute;metros de evaluaci&oacute;n del cultivo. Asimismo, se corrobor&oacute; que se presentan mayores incrementos en el <i>k<sub>L</sub>a</i> por aumento en la agitaci&oacute;n en comparaci&oacute;n con los obtenidos con incrementos en la velocidad de aireaci&oacute;n.</p>      <p> En la caracterizaci&oacute;n hidrodin&aacute;mica del sistema de fermentador con aireaci&oacute;n externa (SFAE) las variables determinantes en la transferencia de ox&iacute;geno son el flujo de recirculaci&oacute;n (FR) y la velocidad de agitaci&oacute;n en el reactor, aumentando el <i>k<sub>L</sub>a</i> de un m&aacute;ximo obtenido en el fermentador convencional de 40,68 (h<sup>-1</sup>) hasta valores de 63,18 (h<sup>-1</sup>) con el SFAE.</p>      <p> El SFAE es un modelo de fermentador de alta tasa de transferencia de ox&iacute;geno si se compara con el sistema convencional, logrando mayores valores de <i>k<sub>L</sub>a</i>.</p>      <p> En la fermentaci&oacute;n con el SFAE operando con un flujo de recirculaci&oacute;n de 0,87 (CPM), una aireaci&oacute;n de 0,65 vvm y una presi&oacute;n de 10 psi, se logra una condici&oacute;n de operaci&oacute;n que elimina la limitaci&oacute;n de ox&iacute;geno en los cultivos con el <i>Lactococcus lactis</i> IBUN 34.1.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Bandaiphet, C., Prasertsan, P. 2006. Effect of aeration and agitation rates and scale-up on oxygen transfer coefficient, <i>k<sub>L</sub>a</i> in exopolysaccharide production from Enterobacter cloacae WD7. Carbohydrate Polymers 66 (2, 27): 216-228.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0123-3475201000020001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Calderbank, P. H., Moo-Young, M .B. 1961. The power characteristic of agitators for the mixing of Newtonian and non-Newtonian fluids. Trans Inst Chem Eng 39: 337-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-3475201000020001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Cockx, A., Line, R. M., Hebrard, A. 1995. Modeling of mass transfer coefficient kL in bubble columns. Trans Inst Chem Eng 73: Part A, 627-631.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0123-3475201000020001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Deckwer, W. D., Schumpe, A. 1993. Improved Tools for bubble column reactor design and scale-up. Biochemical Engineering div. GBF - Gesellschaft fur Biotechnologische Forschung mbH, W-3300 Braunschweig. Chem Eng Process 48 (5): 889-911.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-3475201000020001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Eickenbusch, H., Brunn, P. O., Schumpe, A. 1995. Mass transfer into viscous pseudoplastic liquid in large-diameter bubble columns. Chem Eng Process 34: 479-485.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0123-3475201000020001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Gaddis, E. S. 1999. Mass transfer in gas-liquid contactors. Chem Eng Process 38: 503-510.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-3475201000020001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Galaction, A. I., Cascaval, D., Oniscu, C., Turnea, M. 2004. Prediction of oxygen mass transfer coefficients in stirred bioreactors for bacteria, yeasts and fungus broths. Biochem Eng J 20: 85-94.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0123-3475201000020001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Garc&iacute;a Ochoa, F., Gomez, E. 2005. Prediction of gasliquid mass transfer in sparged stirred tank bioreactors. 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Evaluaci&oacute;n de los componentes del medio de cultivo y su influencia sobre la producci&oacute;n de la enzima glucansacarasa obtenida por fermentaci&oacute;n de la cepa Lactococcus lactis IBUN 34.1. Departamento de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-3475201000020001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Weber, J., Agblevor, F. A. 2005. Microbubble fermentation of Trichoderma reesei for cellulase production. Process Biochemistry 40: 669-676.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0123-3475201000020001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Zhang, Z., Thomas, C. R. 1996. Eddy number distribution in isotropic turbulence and its application for estimating mass transfer coefficients. Chem Eng Commun 140: 207-217.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-3475201000020001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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