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<journal-title><![CDATA[Revista Colombiana de Biotecnología]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Biotransformación de carbón de bajo rango por bacterias aisladas de microhábitats influenciados por residuos de carbón]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[in this study were evaluated five bacterial strains isolated from microhabitats with high content of coal particles generated from storage and washing processes, in "The Cerrejón" open coal mine (Colombia), their ability to biotransform a low rank coal (LRC) was described by testing solubilization on solid and liquid culture medium, as well as bleaching of humic substances (HS) extracted from LRC. All tested bacteria showed ability to biotransform LRC on solid medium, this activity is greater when the LRC has been pretreated with nitric acid; in liquid medium LRC reached 37% of weight loss by Acinetobacter baumannii strain, accompanied by the appearance of up to 6.8 mg/ml-1 of soluble substances with absorbance at 465 nm, changes in culture medium pH suggest that LRC biotransformations activity is associated with alkaline substances release, finally found evidence to suggest that HS contained within LRC are transformed by cometabolism, possibly by depolymerization reactions, bleaching and repolimerization.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Biotransformaci&oacute;n de carb&oacute;n de bajo rango por bacterias aisladas de microh&aacute;bitats influenciados por residuos de carb&oacute;n </b></font></p>     <p><font size="3"> Biotransformation of low rank coal by bacteria isolated from environments influenced by coal residue </font></p>     <p><font size="3"> T&iacute;tulo corto: Biotransformaci&oacute;n de carb&oacute;n por bacterias </font></p>     <p><i> Nelson Osvaldo Valero Valero <sup>1</sup> , Jocelyn Bele&ntilde;o Carrillo <sup>2</sup> , Sandra Mancilla <sup>2</sup> </i></p>     <p> <sup>1</sup> Bi&oacute;logo, MSc. Microbiolog&iacute;a, Candidato Dr. Universidad Popular del Cesar &ndash; Laboratorio de investigaci&oacute;n en microbiolog&iacute;a agr&iacute;cola y ambiental. Campus Sede Sabanas Cuarto piso. <a href="mailto:nelsonvalero@unicesar.edu.co">nelsonvalero@unicesar.edu.co</a>.    <br> <sup>2</sup> Microbi&oacute;logo. Universidad Popular del Cesar     <br> </p>     <p>Recibido: febrero 09 de 2011 Aprobado: mayo 25 de 2011</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p> Se describi&oacute; la capacidad de cinco cepas bacterianas para transformar un carb&oacute;n de bajo rango (CBR), para ello se evaluaron cepas aisladas de microh&aacute;bitats con presencia de part&iacute;culas procedentes de los procesos de almacenamiento y lavado de carb&oacute;n en la mina El Cerrej&oacute;n (Colombia). Se realizaron ensayos de solubilizaci&oacute;n de CBR en medio de cultivo s&oacute;lido y l&iacute;quido, adem&aacute;s de la decoloraci&oacute;n de sustancias h&uacute;micas (SH) extra&iacute;das del CBR. Todas las bacterias evaluadas presentaron capacidad para biotransformar CBR en medio s&oacute;lido, esta actividad es mayor cuando el CBR ha sido pretratado con &aacute;cido n&iacute;trico; en medio l&iacute;quido se alcanz&oacute; una p&eacute;rdida de peso de CBR hasta del 37% por acci&oacute;n de una cepa de <i>Acinetobacter baumannii</i>, acompa&ntilde;ada de la aparici&oacute;n de hasta 8,06 mg/ml<sub>-1</sub> de sustancias solubles con absorbancia a 465 nm; los cambios en el pH del medio sugieren que la actividad biotransformadora de CBR est&aacute; asociada a la liberaci&oacute;n de sustancias alcalinas; finalmente, se encontr&oacute; evidencia para sugerir que las SH presentes en el CBR son transformadas por cometabolismo, posiblemente mediante reacciones de depolimerizaci&oacute;n, decoloraci&oacute;n y repolimerizaci&oacute;n.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n, sustancias h&uacute;micas, El Cerrej&oacute;n, <i>Acinetobacter baumannii</i>.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> in this study were evaluated five bacterial strains isolated from microhabitats with high content of coal particles generated from storage and washing processes, in &quot;The Cerrej&oacute;n&quot; open coal mine (Colombia), their ability to biotransform a low rank coal (LRC) was described by testing solubilization on solid and liquid culture medium, as well as bleaching of humic substances (HS) extracted from LRC. All tested bacteria showed ability to biotransform LRC on solid medium, this activity is greater when the LRC has been pretreated with nitric acid; in liquid medium LRC reached 37% of weight loss by <i>Acinetobacter baumannii</i> strain, accompanied by the appearance of up to 6.8 mg/ml-1 of soluble substances with absorbance at 465 nm, changes in culture medium pH suggest that LRC biotransformations activity is associated with alkaline substances release, finally found evidence to suggest that HS contained within LRC are transformed by cometabolism, possibly by depolymerization reactions, bleaching and repolimerization.</p>     <p><b>Key words</b>: Coal solubilization, humic substances, El Cerrej&oacute;n, by <i>Acinetobacter baumannii</i>.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> La fracci&oacute;n org&aacute;nica del carb&oacute;n es compleja, heterog&eacute;nea y se organiza en tres fases principales (matriz, bitumen y sustancias h&uacute;micas) (Schmiers y Ktipsel, 1997); la matriz comprende un conjunto de estructuras macromoleculares arom&aacute;ticas y alif&aacute;ticas de alto peso molecular, similares a la lignina; el bitumen es una mezcla heterog&eacute;nea de mol&eacute;culas alif&aacute;ticas y arom&aacute;ticas de bajo peso molecular (asfaltenos, ceras, resinas), las sustancias h&uacute;micas (SH) son complejos supramoleculares formados por compuestos arom&aacute;ticos de car&aacute;cter fen&oacute;lico, unidos por cadenas alif&aacute;ticas de diferentes tama&ntilde;os, exhiben diversos grupos funcionales y compuestos nitrogenados, tanto c&iacute;clicos como alif&aacute;ticos; las SH son generadas por repolimerizaci&oacute;n de mol&eacute;culas heterog&eacute;neas relativamente peque&ntilde;as derivadas de la degradaci&oacute;n y descomposici&oacute;n de materiales biol&oacute;gicos (Piccolo, 2002). </p>      <p> Los carbones de bajo rango (CBR) presentan alta humedad, sustancias vol&aacute;tiles, cenizas y bajo contenido de carbono fijado, en consecuencia no son usualmente utilizados para la obtenci&oacute;n de energ&iacute;a debido su bajo poder calor&iacute;fico (Oboirien <i>et al</i>., 2008); por estas razones, los CBR generados en la miner&iacute;a de carb&oacute;n a cielo abierto se consideran un residuo. Sin embargo, se ha demostrado que los CBR pueden transformarse mediante licuefacci&oacute;n para obtener combustibles limpios y diversas sustancias como materia prima con valor agregado en la industria qu&iacute;mica, farmac&eacute;utica, o para aplicaciones ambientales (Gianoulli <i>et al</i>., 2009); la aplicaci&oacute;n m&aacute;s conocida es la extracci&oacute;n de las SH para su utilizaci&oacute;n como acondicionadores org&aacute;nicos del suelo (Piccolo y Mbagwu,1999), estimuladores del crecimiento y desarrollo vegetal (Nardi <i>et al</i>., 2002), o como coadyuvantes en procesos de fitorremediaci&oacute;n de suelos contaminados (Bandeira <i>et al</i>., 2009). </p>      <p> Los procesos de transformaci&oacute;n del carb&oacute;n mediante pirolisis, gasificaci&oacute;n o licuefacci&oacute;n demandan alta energ&iacute;a, por tanto, resultan inconvenientes econ&oacute;micamente; frente a esta situaci&oacute;n se ha estudiado la transformaci&oacute;n biol&oacute;gica de CBR mediante la actividad de hongos lignonol&iacute;ticos (Elbeyli <i>et al</i>., 2006) y bacterias (Wise, 1990), por medio de mecanismos basados en la similaridad entre la estructura qu&iacute;mica de la lignina, el carb&oacute;n y las SH. Se ha prestado mayor atenci&oacute;n a la biotransformaci&oacute;n del CBR por medio de la actividad de las enzimas manganeso peroxidasa, lignino peroxidasa y lacasas en hongos basidiomicetos de la podredumbre de la madera y hongos saprof&iacute;ticos del suelo; sin embargo, la capacidad de las bacterias para solubilizar el CBR parece estar m&aacute;s asociada a mecanismos no enzim&aacute;ticos como la producci&oacute;n de agentes surfactantes (Yuan <i>et al</i>., 2006), liberaci&oacute;n de agentes quelantes (Bumpus, 1998) y la producci&oacute;n de sustancias alcalinas que disuelven las mol&eacute;culas solubles y SH presentes en el carb&oacute;n (Hofrichter and Fakoussa, 2004); pero tambi&eacute;n se ha asociado a la producci&oacute;n de enzimas laccasas que son secretadas en ambientes naturales para solubilizar lignina (Kiiskinen <i>et al</i>., 2004). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La transformaci&oacute;n biol&oacute;gica del carb&oacute;n es un fen&oacute;meno complejo que involucra varios conceptos; el t&eacute;rmino biotransformaci&oacute;n designa la ocurrencia de cualquier cambio en la forma del material mediado por la actividad biol&oacute;gica (Ward, 1991), la solubilizaci&oacute;n conlleva la formaci&oacute;n de sustancias l&iacute;quidas de color oscuro a partir del carb&oacute;n en estado s&oacute;lido, y es debida a la liberaci&oacute;n microbiana de enzimas, sustancias alcalinas o agentes quelantes y surfactantes (Steinb&uuml;chel, 2001); la decoloraci&oacute;n hace referencia a la p&eacute;rdida de color de los &aacute;cidos h&uacute;micos cuando son utilizados como sustrato, este proceso est&aacute; asociado a la disminuci&oacute;n de absorbancia a 465 nm y ocurre por depolimerizaci&oacute;n (Willmann y Fakoussa,1997).</p>      <p> El objetivo de este trabajo fue describir el potencial para la biotransformaci&oacute;n de un CBR por medio de cinco cepas bacterianas nativas aisladas en microambientes que han estado en contacto permanente con part&iacute;culas de carb&oacute;n en la mina El Cerrej&oacute;n (Colombia), y aproximarse a los mecanismos expresados por estas bacterias para la biotransformaci&oacute;n del CBR, con el prop&oacute;sito de desarrollar futuras aplicaciones biotecnol&oacute;gicas para producir sustancias l&iacute;quidas de valor agregado a partir del carb&oacute;n, o SH para aplicaciones en el manejo de suelos, aprovechando la oferta de CBR derivado de la miner&iacute;a del carb&oacute;n.</p>       <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p> <b>Muestras de carb&oacute;n y sustancias h&uacute;micas.</b> Se utiliz&oacute; un CBR colectado en el manto 40 del frente de extracci&oacute;n denominado Tajo Patilla en la mina El Cerrej&oacute;n; se tamiz&oacute; para obtener part&iacute;culas de 2,36 mm y 300 &micro;m y se aplic&oacute; un pretratamiento oxidativo con HNO<sub>3</sub> al 10% de acuerdo al protocolo utilizado por Machnikowska <i>et al</i>. (2002). Las SH contenidas en el CBR se extrajeron con &aacute;lcali siguiendo el protocolo descrito por Sharif (2002), se determin&oacute; el porcentaje de carbono en el extracto h&uacute;mico total (EHT) y las fracciones de &aacute;cidos h&uacute;micos (AH) y &aacute;cidos f&uacute;lvicos (AF) siguiendo la metodolog&iacute;a descrita por la International Humic Substances Society (IHSS, 2007). El EHT obtenido fue analizado mediante espectroscopia infraroja (FT-IR Nicolet Magna560, con detector MCT/A). El CBR utilizado fue caracterizado para determinar el contenido de metales pesados (As, Co, Pb, V, Cu, Zn, Ni, Cr, B, Mo, Cd), humedad total, contenido de cenizas, poder calor&iacute;fico, contenido de sustancias vol&aacute;tiles, carbono fijado, azufre, hidr&oacute;geno, nitr&oacute;geno y ox&iacute;geno; minerales presentes en las cenizas (Fe<sub>2</sub>O<sub>3</sub>, CaO, MnO<sub>2</sub>, MgO, SrO, K<sub>2</sub>O, BaO); todas las determinaciones se realizaron mediante los m&eacute;todos est&aacute;ndar correspondientes descritos en las normas de la American Society for Testing and Materials (ASTM), estas son las normas de referencia adoptadas para an&aacute;lisis de carb&oacute;n; los metales pesados se determinaron seg&uacute;n la norma D6357, y los minerales en cenizas seg&uacute;n la norma D-6349-08; las determinaciones de humedad, cenizas, sustancias vol&aacute;tiles, poder calor&iacute;fico, S (C, H y N) y O, seg&uacute;n las normas D3302-07, D5142-04, D3175-07, D51-42-(04), D-4239-08a m&eacute;todoB, D-5373-08 y D3176-89(02) respectivamente.</p>      <p> <b>Cultivos bacterianos.</b> Se utilizaron 5 cepas bacterianas denominadas BSC5, BSC7, BSC13, BSC19 y BSC20. BSC5 aisladas de la rizosfera de <i>Typha domingensis</i>, una gram&iacute;nea que crece sobre sedimentos con abundantes residuos carbonosos procedentes del proceso de lavado de carb&oacute;n; BSC7 y BSC13 fueron aisladas del sedimento descrito anteriormente, sin presencia de plantas; BSC19 y BSC20 se aislaron de la rizosfera de pasto buffel (<i>Cenchrus ciliaris</i>), una gram&iacute;nea que crece sobre un dep&oacute;sito de materiales rocosos triturados extra&iacute;dos en el proceso de excavaci&oacute;n en la mina, este material est&aacute; mezclado con part&iacute;culas de carb&oacute;n de diferente tama&ntilde;o que se fugan de un patio de almacenamiento de carb&oacute;n. Las cinco cepas bacterianas fueron seleccionadas por su capacidad para crecer abundantemente sobre un medio de cultivo m&iacute;nimo de sales con carb&oacute;n en polvo al 5% como &uacute;nica fuente de carbono, dise&ntilde;ado por Wise (1990).</p>      <p> Solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n en medio s&oacute;lido. Los cinco aislamientos bacterianos se cultivaron en forma masiva sobre placa de agar nutritivo (Oxoid), partiendo de un in&oacute;culo de 0,5 escala de Mcfarland, se incubaron por 48 horas a 37 &deg;C; posteriormente, sobre la superficie del cultivo masivo se colocaron part&iacute;culas de carb&oacute;n est&eacute;ril de 2,36 mm, tratadas y sin tratar con HNO<sub>3</sub> al 10%, se incubaron por 8 d&iacute;as m&aacute;s a 30 &deg;C y se determin&oacute; la solubilizaci&oacute;n a las 24, 48 y 72 horas, midiendo el di&aacute;metro de un halo de color marr&oacute;n formado alrededor de la part&iacute;cula de CBR, generado por la difusi&oacute;n de sustancias solubilizadas procedentes de la matriz del carb&oacute;n; como control se colocaron part&iacute;culas de CBR sobre una placa de agar nutritivo sin crecimiento bacteriano.</p>      <p> <b>Solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n en medio l&iacute;quido.</b> A partir de un in&oacute;culo bacteriano de 0,5 escala de Mcfarland en caldo nutritivo (Merck), se tom&oacute; 0,1 ml y se inocul&oacute; en tubos con 20 ml de caldo nutritivo con adici&oacute;n de 5% (p/v) de part&iacute;culas de CBR de tama&ntilde;o inferior a 300 &micro;m, tratado y sin tratar con HNO3, los cultivos se incubaron en agitaci&oacute;n por 7 d&iacute;as a 25 &ordm;C, despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n el cultivo se centrifug&oacute; a 3200 rpm por 10 min, el sobrenadante de color marr&oacute;n fue filtrado en papel Whatman N&deg; 42 con un di&aacute;metro de poro de 2,5 &micro;m, y se midi&oacute; la absorbancia del filtrado a 465 nm para determinar la presencia de las sustancias solubles derivadas del CBR que fueron liberadas al medio por actividad bacteriana (Oboiren <i>et al</i>., 2008), se midi&oacute; el pH inicial y final de los medios de cultivo. La p&eacute;rdida de peso del carb&oacute;n se determin&oacute; despu&eacute;s de lavar tres veces el CBR residual en agua destilada y secarlo en horno a 105 &ordm;C hasta obtener peso constante. Para determinar la concentraci&oacute;n de las sustancias solubles con absorbancia a 465 nm producidas a partir del CBR, se elabor&oacute; una curva de interpolaci&oacute;n con los valores de absorbancia de soluciones de concentraci&oacute;n conocida de EHT obtenidos previamente del CBR.</p>      <p> <b>Prueba de depolimerizaci&oacute;n de sustancias h&uacute;micas (SH).</b> Se evalu&oacute; esta actividad en caldo nutritivo (CN) y en caldo m&iacute;nimo de sales (CMS) seg&uacute;n la siguiente composici&oacute;n (g/l<sup>-1</sup>): NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> 2,50, KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 1,75, MgSO<sub>4</sub> 0,75, K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 0,75, NaCl 0,25, ZnSO<sub>4</sub> 0,088, FeCl<sub>3</sub> 0,08, CuSO<sub>4</sub> 0,016, MnCl<sub>2</sub> 0,014, MoO<sub>3</sub> 0,007, Co(NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub> 0,005; a cada uno de los medios se le adicion&oacute; SH al 15% (p/v) como fuente de carbono. El in&oacute;culo se prepar&oacute; como fue descrito anteriormente, el cultivo se incub&oacute; con agitaci&oacute;n a 420 rpm durante 7 d&iacute;as a 30 &deg;C &plusmn; 3, despu&eacute;s de la incubaci&oacute;n se centrifug&oacute; a 3200 rpm por 10 min, se filtr&oacute; el sobrenadante y se midi&oacute; la absorbancia a 465 nm, la disminuci&oacute;n en el valor de absorbancia indica la depolimerizaci&oacute;n de las SH por la actividad microbiana (Willmann y Fakoussa, 1997).</p>      <p> En cada experimento el dise&ntilde;o fue completamente al azar, se utilizaron tres r&eacute;plicas para cada tratamiento. Los datos obtenidos para las variables respuesta de los tres experimentos fueron analizados mediante la prueba no param&eacute;trica de Kruskal Wallis, utilizando el programa estad&iacute;stico SPS versi&oacute;n 14.</p>      <p><b> Resultados y discusi&oacute;n </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Caracterizaci&oacute;n del carb&oacute;n y las SH. El carb&oacute;n utilizado present&oacute; humedad del 28,44%, 11,12% de cenizas, 47,79% de sustancias vol&aacute;tiles, poder calor&iacute;fico de 4781 Kcal/kg<sup>-1</sup>, 41,09% de carbono fijado, C 57,75%, S 0,13%, H 2,67%, N 2,3%, O 26,03%; los minerales en cenizas presentan valores de Fe<sub>2</sub>O<sub>3</sub> 4,24%, CaO 69,3, MnO<sub>2</sub> 0,14%, MgO 9,37% SrO 0,89% K<sub>2</sub>O 0,05% BaO 0,08%. Estos resultados confirman que la muestra de carb&oacute;n corresponde a un CBR tipo lignito, por su alto contenido de humedad y de materiales vol&aacute;tiles, y poder calor&iacute;fico menor a 6,390 Kcal/kg<sup>-1</sup>. La determinaci&oacute;n de elementos traza con valores de 0,71, 2,31, 1,73, 1,66, 0,55, 22,43, 3,35, 2,4, 15,11 y 2,52 y 0,08 ppm respectivamente para As, Co, Pb, V, Cu, Zn, Ni, Cr, B, Mo y Cd, indica que el CBR no ofrece riesgo de toxicidad por estos elementos.</p>      <p> Los valores para el contenido de carbono del extracto h&uacute;mico total (CEHT), carbono de &aacute;cidos h&uacute;micos (CAH) y carbono de &aacute;cidos f&uacute;lvicos CAF fue de 32,91, 24,31 y 8,6% respectivamente. El espectro IR (<a href="#f1">figura 1</a>) muestra las bandas caracter&iacute;sticas para espectros de SH, alrededor de 3400, 1600, 1300 y 1000 ondas/cm<sup>-1</sup> (Dick <i>et al</i>., 2002); estas bandas corresponden a los grupos funcionales esperados, que incluyen grupos OH en fenoles, alcoholes y polisac&aacute;ridos, grupos C = O y COOH, C = C en compuestos arom&aacute;ticos y N-H; adem&aacute;s, hay evidencia de aromaticidad y de uniones covalentes en unidades alif&aacute;ticas. Los anteriores resultados confirman la presencia de SH en el carb&oacute;n que se utiliz&oacute; para el experimento, este hecho permite suponer que al ocurrir el contacto entre el carb&oacute;n y las bacterias estas pueden actuar sobre el carb&oacute;n para solubilizarlo y liberar al medio las SH que contiene, debida a la expresi&oacute;n de los mecanismos de acci&oacute;n relacionados con la liberaci&oacute;n microbiana de enzimas, sustancias alcalinas o agentes quelantes y surfactantes (Hofrichter y Fakoussa, 2004). A la fecha se ha comprobado que la presencia de microorganismos en la superficie y el interior del carb&oacute;n, principalmente el lignito, es un fen&oacute;meno natural que contribuye a la transformaci&oacute;n y evoluci&oacute;n de los minerales y la materia org&aacute;nica del mismo, no solo cuando es expuesto a la superficie sino tambi&eacute;n en el interior de los yacimientos (Yossifova <i>et al</i>., 2010; Bulankina <i>et al</i>., 2007).</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a08f1.jpg"></a></p>      <p> <b>Solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n en medio s&oacute;lido.</b> Las cinco cepas bacterianas estudiadas presentaron actividad solubilizadora en mayor grado sobre las part&iacute;culas de CBR tratado con HNO<sub>3</sub> (<a href="#f2">figura 2</a>), el di&aacute;metro del halo de solubilizaci&oacute;n aument&oacute; con el tiempo alcanzando valores entre 23 y 33 mm a las 72 horas (<a href="#f3">figura 3</a>); este efecto ha sido descrito previamente para muestras de carb&oacute;n de diferente rango, incluyendo carbones duros (Machnikowska <i>et al</i>., 2002). Sobresale la actividad de la BSC7con diferencia significativa sobre las dem&aacute;s bacterias y el control (P&lt; 0,05) que desde las 24 horas registr&oacute; mayores valores en el di&aacute;metro del halo de solubilizaci&oacute;n.</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a08f2.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a08f3.jpg"></a></p>      <p> <b>Solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n en medio l&iacute;quido.</b> Los cinco cultivos bacterianos evaluados ocasionaron disminuci&oacute;n del CBR con p&eacute;rdida de peso que va desde el 4,17% hasta el 37,4% (BSC13), la disminuci&oacute;n del CBR s&oacute;lido est&aacute; acompa&ntilde;ada de la aparici&oacute;n de sustancias solubles con absorbancia a 465 nm (<a href="#f4">figura 4a</a>). En estudios previos se ha comprobado que las sustancias solubles con absorbancia a 465 nm obtenidas por solubilizaci&oacute;n microbiana del carb&oacute;n presentan alta similaridad en cuanto a su composici&oacute;n elemental, grupos funcionales y caracter&iacute;sticas espectrosc&oacute;picas, al ser comparadas con SH obtenidas mediante extracci&oacute;n qu&iacute;mica a partir del mismo carb&oacute;n (Wilson <i>et al</i>., 1987; Quigley <i>et al</i>., 1988; Filip y Kub&aacute;t, 2001); estos antecedentes permiten sugerir que las sustancias producidas por la actividad de las cinco cepas bacterianas evaluadas en este estudio pueden ser SH.</p>      <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a08f4.jpg"></a></p>      <p> Se encontr&oacute; diferencia significativa (P&lt; 0,05) para el valor promedio de carb&oacute;n transformado por las bacterias BSC13, 19 y 20 con respecto al control, y las bacterias BSC5 y BSC7, utilizando tanto el carb&oacute;n pretratado como sin tratar, y diferencia significativa en la producci&oacute;n de SH por todas las bacterias utilizando carb&oacute;n con y sin pretratamiento previo, pero con disminuci&oacute;n en la magnitud de la solubilizaci&oacute;n, excepto para la BSC19.</p>      <p> La p&eacute;rdida de peso, tanto del CBR preoxidado con HNO<sub>3</sub> (2,55%) y sin oxidar (2,22%), en el tratamiento control indica que ocurre cierto grado de autosolubilizaci&oacute;n del CBR en el medio de cultivo sin presencia de microorganismos. La biosolubilidad del carb&oacute;n est&aacute; correlacionada fuertemente con su grado de oxidaci&oacute;n; as&iacute;, Machnikowska <i>et al</i>. (2002) reportan un mayor rendimiento en la solubilizaci&oacute;n de CBR mediada por hongos y bacterias al someter el CBR a pretratamiento con HNO<sub>3</sub>, sin embargo, los resultados demuestran que en este caso el pretratamiento oxidativo no ocasiona un mayor rendimiento en la solubilizaci&oacute;n con respecto al carb&oacute;n sin tratar. La biotransformaci&oacute;n de un 37,4% de CBR sin pretratamiento oxidativo por la BSC 13 es un porcentaje mayor al rendimiento de extracci&oacute;n de SH con &aacute;lcali, que fue del 33%, aunque se ha demostrado que la optimizaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a con extracciones sucesivas puede alcanzar rendimientos hasta del 60,85% de material h&uacute;mico potencialmente extractable de este tipo de carbones (Siong <i>et al</i>., 2007).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Utilizando CBR sin tratamiento &aacute;cido se observ&oacute; transformaci&oacute;n del mismo con incremento del pH en los cultivos con respecto al valor inicial (pH = 7,02) y al valor de pH final en los cultivos bacterianos sin adici&oacute;n de CBR (<a href="#f4">figura 4b</a>), este resultado se puede relacionar con la solubilizaci&oacute;n bacteriana del CBR por mecanismos no enzim&aacute;ticos como la producci&oacute;n de sustancias alcalinas que disuelven las mol&eacute;culas solubles y sustancias h&uacute;micas de la matriz del carb&oacute;n, como ha sido reportado por Hofrichter y Fakoussa (2004) o, en segundo lugar, por el car&aacute;cter alcalino de los metabolitos producidos por la solubilizaci&oacute;n del CBR. Sin embargo, utilizando CBR pretratado con HNO<sub>3</sub> hubo menor porcentaje del mismo transformado y, a la vez, los valores de pH final en el medio de cultivo fueron m&aacute;s bajos que en en los cultivos bacterianos sin CBR, excepto para la BSC13 que a su vez present&oacute; la mayor actividad sobre el CBR. Los resultados descritos sugieren que las bacterias evaluadas expresaron la producci&oacute;n de metabolitos alcalinos como mecanismo para solubilizar el CBR, tambi&eacute;n se puede sugerir que este mecanismo es inducido por la presencia del CBR en el medio, pero al utilizarlo pretratado su acci&oacute;n es neutralizada por el HNO<sub>3</sub> residual que en medio l&iacute;quido se puede difundir desde la matriz del CBR.</p>      <p> La cepa BSC13 que present&oacute; la mayor actividad fue identificada mediante la amplificaci&oacute;n por PCR de una regi&oacute;n de 1465 pb del gen rDNA16S utilizando los iniciadores 27F, 1492R, 518F y 800R, los productos de la reacci&oacute;n fueron secuenciados y ensamblados en una secuencia consenso problema, la comparaci&oacute;n con bases de datos de referencia del Centro Nacional de Biotecnolog&iacute;a de los Estados Unidos (NCBI) gener&oacute; la clasificaci&oacute;n taxon&oacute;mica mediante la elaboraci&oacute;n de un &aacute;rbol filogen&eacute;tico del grupo de secuencias con mayor similitud a la secuencia consenso; as&iacute; se determin&oacute; que este aislamiento corresponde a <i>Acinetobacter baumannii</i>. str. CCGE2017 con un 99% de identidad con el identificador 569106 del gene bank.</p>      <p> <b>Depolimerizaci&oacute;n de SH.</b> Se present&oacute; disminuci&oacute;n en la absorbancia en todos los cultivos bacterianos en caldo nutritivo con sustancias h&uacute;micas (CN-SH) con respecto al tratamiento control, excepto para la BSC20, pero la diferencia solo fue significativa (P&lt;0,05) para las BSC7 y 13; en el caldo m&iacute;nimo de sales (CMS-SH) solo hubo una leve disminuci&oacute;n en la absorbancia para la BSC19, para los dem&aacute;s cultivos bacterianos hubo incremento en los valores de absorbancia con respecto al tratamiento control pero son diferencias significativas (<a href="#f5">figura 5</a>). Se sabe que los mismos mecanismos enzim&aacute;ticos responsables de la biosolubilizaci&oacute;n de CBR tambi&eacute;n pueden desencadenar depolimerizaci&oacute;n de las SH una vez liberadas de la matriz del carb&oacute;n, estos sistemas enzim&aacute;ticos presentan una regulaci&oacute;n compleja que depende de la presencia de fuentes de nitr&oacute;geno y fuentes adicionales de carbono de f&aacute;cil asimilaci&oacute;n (Bublitz <i>et al</i>., 1994). En la degradaci&oacute;n de lignina por bacterias, estas utilizan primero la glucosa para su crecimiento y luego la lignina como co-metabolito (Jeffries <i>et al</i>., 1981), lo anterior sugiere que en este caso el fen&oacute;meno de depolimerizaci&oacute;n de SH puede estar asociado a fen&oacute;menos de cometabolismo, dado que solo se present&oacute; una disminuci&oacute;n marcada en la absorbancia en caldo nutritivo, mas no en caldo m&iacute;nimo de sales. Incrementos en los valores de absorbancia en el caldo m&iacute;nimo de sales pueden indicar que tras la depolimerizaci&oacute;n de SH por mecanismos no enzim&aacute;ticos (sustancias alcalinas y agentes quelantes), la concentraci&oacute;n de los productos de la solubilizaci&oacute;n inducen reacciones de repolimerizaci&oacute;n mediados por la acci&oacute;n de enzimas extracelulares (principalmente lacasas), hecho demostrado por Hofrichter y Fritsche (1997). Ecol&oacute;gicamente, fen&oacute;menos como la solubilizaci&oacute;n de carb&oacute;n por cometabolismo y la repolimerizaci&oacute;n de los productos resultan adecuados como una forma de controlar el consumo o la degradaci&oacute;n completa de los materiales h&uacute;micos en el suelo (Kydralieva, 2006), puesto que es conveniente que permanezcan all&iacute; para poder desencadenar los efectos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos sobre el suelo y los efectos fisiol&oacute;gicos ben&eacute;ficos sobre las plantas (van Trump <i>et al</i>., 2006).</p>      <p align="center"><a name="f5"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a08f5.jpg"></a></p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> Se demostr&oacute; que las bacterias nativas aisladas de microambientes que han estado en contacto permanente con part&iacute;culas de carb&oacute;n presentan la capacidad de solubilizar el CBR en medio s&oacute;lido y en medio l&iacute;quido, como resultado ocasionan p&eacute;rdida de peso del carb&oacute;n y la consecuente producci&oacute;n de sustancias coloreadas con absorbancia a 465 nm, que posiblemente corresponden a las SH contenidas en la macroestructura del CBR. El pretratamiento oxidativo del CBR con HNO<sub>3</sub> incrementa su solubilizaci&oacute;n en medio s&oacute;lido pero no en medio l&iacute;quido. Se encontr&oacute; evidencia para sugerir que las bacterias producen sustancias alcalinas que disuelven el CBR; estas bacterias tambi&eacute;n presentan la capacidad de depolimerizar las SH presentes en el CBR, posiblemente por cometabolismo. Los hallazgos demuestran la posibilidad de uso de las bacterias estudiadas, especialmente la BSC13 (<i>Acinetobacter baumannii</i>), para la solubilizaci&oacute;n del CBR producido en la mina El Cerrej&oacute;n, para producir SH que posteriormente pueden tener diferentes aplicaciones.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p> Los autores agradecen a la Universidad Popular del Cesar, Carbones del Cerrej&oacute;n Limited y Colciencias por la financiaci&oacute;n de la presente investigaci&oacute;n desarrollada en el marco del proyecto &quot;Evaluaci&oacute;n de carbones meteorizados generados en El Cerrej&oacute;n para su aprovechamiento como materia prima en la producci&oacute;n de enmiendas org&aacute;nicas&quot;, seg&uacute;n convenio RC-591-2008.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Bandeira, M., Mosca, G., Vamerali, T. 2009. Humic acids affect root characteristics of fodder radish (<i>Raphanus sativus</i> L. var. oleiformis Pers.) in metal-polluted wastes. <i>Desalination</i>, 246: 78-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0123-3475201100010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Bublitz, F., G&uuml;nther, T., Fritsche, W. 1994. Screening of fungi for the biological modification of hard coal and coal derivatives. <i>Fuel Processing Technology</i>, 40 (2-3): 347-354.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S0123-3475201100010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Bulankina, M. A., Lysak, L. V., Zvyagintsev, D. G. 2007. Lignite microorganisms. <i>Biology Bulletin</i>, 34 (2): 194-197.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0123-3475201100010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Bumpus, J., Senko, J., Lynd, G., Morgan, R., Sturm, K., Stimpson, J., Roe, S. 1998. Biomimetic solubilization of a low rank coal: Implications for its use in methaneproduction. <i>Energy and Fuels</i>, 12: 664-671.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S0123-3475201100010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5 Dick, D., Mangrich, A., Menezes, S. M., Pereira, B. 2002. Chemical and Spectroscopical Characterization of Humic Acids from two South Brazilian Coals of Different Ranks. <i>J. Braz. Chem. Soc.</i>, 13 (2) 177-182.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0123-3475201100010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6 Elbeyli, I., Palantoken, A., Piskin, S., Kuzu, H., Peksel, A. 2006. Liquefaction/Solubilization of Low-Rank Turkish Coals by White-Rot Fungus (<i>Phanaerochete chrysosporium</i>). <i>Energy Sources</i>, 28 (11): 1063-1073.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0123-3475201100010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7 Filip, Z., Kub&aacute;t, J. 2001. Microbial utilization and transformation of humic substances extracted from soils of long-term field experiments. <i>Eur. J. Soil Biol.</i>, 37: 167-174.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0123-3475201100010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8 Giannouli, A., Stavros, K., Siavalas, G., Chatziapostolou, A., Christanis, K., Papazisimou, S., Papanicolaou, C., Foscolos, A. 2009. Evaluation of Greek low-rank coals as potential raw material for the production of soil amendments and organic fertilizers. <i>International Journal of Coal Geology</i>, 477 (3-4): 383-393.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0123-3475201100010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9 Hofrichter, M., Fakoussa, R. 2004. Microbial degradation and modification of coal. In: Steinb&uuml;chel, A. (ed.). Biopolymers, vol 1. Lignin, humic substances and coal. Weinheim: Wiley-VCH.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0123-3475201100010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10 Hofrichter, M., Fritsche, W. 1997. Depolymerization of low-rank coal by extracellular fungal enzyme systems. II. The ligninolytic enzymes of coal-humic-acid-depolimerizing fungus <i>Nematoloma frowardii</i> b19. <i>Appl. Microbiol. Biotechnol.</i>, 47: 419-424.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-3475201100010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11 International Humic Substances Society (IHSS) 2007. Isolation of IHSS soil fulvic and humic Acids. <a href="www.ihss.gatech.edu/soilhafa.html" target="_blank">www.ihss.gatech.edu/soilhafa.html</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-3475201100010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Jeffries, T., Choi, W., Kirk, S. (1981). Nutritional degradation of lignin degradation by <i>Phanerochaete chrysosporium</i>. <i>Appl. Environ. Microbiol. Rev.</i>, 13: 125-135.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-3475201100010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13 Kidralieva, K. 2006. Biodegradation of soil humic subsatances by autochtonous microorganisms. <i>Geophysical Research Abstracts</i>, 8: 3 -12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-3475201100010000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14 Kiiskinen, L., Rato, M., Kruus, K. 2004. Screening for novel laccasa - producing microbes. <i>Journal of applied microbiology</i>, 97: 640-646.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-3475201100010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15 Machnikowska, H., Pawelec, A., Podgorska, A. 2002. A microbial degradation of low rank coals. <i>Fuel Processing Technology</i>, 77 (78): 17-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-3475201100010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16 Nardi, S., Pizzeghello, D., Muscolo, A., Vianello, A. 2002. Physiological effects of humic substances on higher plants. <i>Soil Biol. Biochem.</i>, 34: 1527-1536.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-3475201100010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17 Oboirien, B., Burton, S., Cowan, D., Harrison, S. 2008. The effect of the particulate phase on coal biosolubilisation mediated by <i>Trichoderma</i> atroviride in a slurry bioreactor. <i>Fuel Processing Technology</i>, 89 (2): 123-130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475201100010000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18 Piccolo, A., Mbagwu, J.1999. Role of hydrophobic components of soil organic matter on soil aggregate stability. <i>Soil Sci. Soc. Am. J.</i>, 63: 1801-1810.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-3475201100010000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19 Piccolo, A. 2002. The supramolecular structure of humic substances: A novel understanding of humus chemistry and implications in soil science. <i>Advances in Agronomy,</i> 75: 57-134.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475201100010000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20 Quigley, D., Wey, J., Breckenridge, C., Stoner, D. 1988.The influence of pH on biological solubilization of oxidised low rank coal. Science Direct, 1: 163-174.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-3475201100010000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21 Schmiers, H., Ktipsel, R.1997. Macromolecular structure of brown coal in relationship to the degradability by microorganisms. <i>Fuel processing technology</i>, 52: 109-114.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475201100010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22 Sharif, M., Khattak, R., Sarir, M. 2002. Effect of different levels of lignitic coal derived humic acid on growth of maize plants. <i>Commun. Soil Sci. 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