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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[South American Leaf Blight (SALB), caused by Microcyclus ulei (anamorph Fusicladium macrosporum), is an endemic major disease of the rubber tree (Hevea brasiliensis) in America. As well as in other crop systems, its management on rubber plantations relies on plant genetic resistance availability, among other means. FX 3864 is a rubber tree clone widely planted in Colombia due to its production capability and disease resistance. During 2010 SALB symptoms developed in commercial crops at the Meta region of Colombia. Crop traps located nearby the plantations showed mean disease severity levels of 5.78%. Once the causal organism was microscopically confirmed as responsible for the diseased tissue, their origin was characterized by molecular means using 4 microsatellites specific to the rubber tree. The procedure confirmed that FX 3864 was the clone of origin of the leaf tissue. SALB occurring over FX 3864 implies the need to redirect crop disease management measures to be followed on the new development areas of rubber cultivation, warning growers about potential hazards of disease incidence.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO CORTO</b></font></p>     <p><font size="4"><b> Primer reporte de susceptibilidad del clon de caucho natural FX-3864 a <i>Microcyclus ulei</i> en la altillanura colombiana </b></font></p>     <p><font size="3"> First report of susceptibility of natural rubber clone FX-3864 a <i>Microcyclus ulei</i> en la altillanuera colombiana </font></p>     <p><i> Ibonne A. Garc&iacute;a <sup>1</sup> , Olga M. Castro <sup>2</sup> , Fabio Aristiz&aacute;bal <sup>1</sup> , An&iacute;bal L. Tapiero <sup>2</sup>.</i></p>     <p> <sup>1</sup> Instituto de Biotecnolog&iacute;a (IBUN),  Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogot&aacute;, <a href="mailto:iagarciar@unal.edu.co">iagarciar@unal.edu.co</a>     <br> <sup>2</sup> Corporaci&oacute;n Colombiana de Investigaci&oacute;n Agropecuaria (Corpoica).    <br> </p>     <p>Recibido: marzo 15 de 2011 Aprobado: mayo 26 de 2011</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El mal suramericano de las hojas (SALB), enfermedad end&eacute;mica del caucho (<i>Hevea brasiliensis</i>), es causado por <i>Microcyclus ulei</i> (forma imperfecta <i>Fusicladium macrosporum</i>) y constituye el principal limitante del cultivo en Am&eacute;rica, &aacute;rea donde el microorganismo pat&oacute;geno es end&eacute;mico. En forma semejante al de otros cultivos agr&iacute;colas, el manejo de esta enfermedad est&aacute; condicionado a la disponibilidad de resistencia gen&eacute;tica en el hospedero. En raz&oacute;n de su productividad y condici&oacute;n de resistencia gen&eacute;tica, el clon FX 3864 ha sido ampliamente plantado en zonas con diferente potencialidad epid&eacute;mica a la incidencia del SALB en Colombia, particularmente las denominadas de &quot;no escape&quot; a la enfermedad. Durante el 2010, plantaciones con el clon FX 3864 en fase productiva presentaron s&iacute;ntomas de SALB en zonas de escape ubicadas en la altillanura colombiana (departamento del Meta). En parcelas trampa ubicadas en &aacute;reas aleda&ntilde;as a los cultivos se estableci&oacute; que la severidad promedio de la enfermedad alcanz&oacute; niveles de 5,78% en este clon. Verificada la causalidad de la enfermedad mediante observaciones al microscopio se procedi&oacute; a confirmar el origen del material sobre el cual se desarrollaban las lesiones, utilizando marcadores moleculares (4 microsat&eacute;lites espec&iacute;ficos). Los resultados de la prueba permitieron confirmar la susceptibilidad del hasta hace poco resistente clon FX 3864 al SALB en Colombia. Se sugiere tomar en consideraci&oacute;n la nueva condici&oacute;n de este clon y, en concordancia, reorientar los programas de fomento del cultivo advirtiendo a los agricultores sobre los riesgos potenciales de ocurrencia de la enfermedad en las nuevas &aacute;reas programadas.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: SALB, <i>Hevea brasiliensis</i>, <i>Fusicladium macrosporum</i>, cultivo de caucho.</p>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> South American Leaf Blight (SALB), caused by <i>Microcyclus ulei</i> (anamorph <i>Fusicladium macrosporum</i>), is an endemic major disease of the rubber tree (<i>Hevea brasiliensis</i>) in America. As well as in other crop systems, its management on rubber plantations relies on plant genetic resistance availability, among other means. FX 3864 is a rubber tree clone widely planted in Colombia due to its production capability and disease resistance. During 2010 SALB symptoms developed in commercial crops at the Meta region of Colombia. Crop traps located nearby the plantations showed mean disease severity levels of 5.78%. Once the causal organism was microscopically confirmed as responsible for the diseased tissue, their origin was characterized by molecular means using 4 microsatellites specific to the rubber tree. The procedure confirmed that FX 3864 was the clone of origin of the leaf tissue. SALB occurring over FX 3864 implies the need to redirect crop disease management measures to be followed on the new development areas of rubber cultivation, warning growers about potential hazards of disease incidence.</p>     <p><b>Key words</b>: SALB, <i>Hevea brasiliensis</i>, <i>Fusicladium macrosporum</i>, rubber crop.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p> El mal suramericano de las hojas (SALB), enfermedad end&eacute;mica del caucho (<i>Hevea brasiliensis</i>), y principal limitante del cultivo en Am&eacute;rica, es causado por el hongo ascomycete <i>Microcyclus ulei</i> (anamorfo <i>Fusicladium macrosporum</i>). Su manejo en condiciones favorables para el desarrollo de epidemias depende, entre otros, de la disponibilidad de resistencia gen&eacute;tica. El clon de caucho FX 3864, aunque susceptible al pat&oacute;geno en varias regiones de Brasil (Furtado et al., 2008), ha conservado su condici&oacute;n de resistencia durante a&ntilde;os en diferentes ambientes en Colombia y es ampliamente utilizado por sus caracter&iacute;sticas productivas. </p>      <p> Durante el 2010, plantaciones con FX 3864 en fase productiva ubicadas en la altillanura plana del Meta (Colombia) presentaron SALB con &iacute;ndices de severidad de 0,46% en promedio (medidos como &aacute;rea foliar cubierta por lesiones estrom&aacute;ticas en hojas adultas). Tambi&eacute;n durante el 2010, en parcelas trampa localizadas en un &aacute;rea ubicada en el Centro de Investigaciones de Corpoica &quot;La Libertad&quot;, en Villavicencio, Meta, plantada con clones de diferente composici&oacute;n gen&eacute;tica en estado de emisi&oacute;n permanente de hojas nuevas mediante podas, se evalu&oacute; la incidencia de la enfermedad observ&aacute;ndose que la severidad pod&iacute;a alcanzar hasta 6% de &aacute;rea foliar afectada. Foliolos en estado inmaduro o juvenil (estado C) (Hall&eacute; et al., 1978 citado por Gasparotto et al., 1997) con alrededor de 7 d&iacute;as de edad comenzaron a desarrollar lesiones transparentes, las cuales se tornaron necr&oacute;ticas con el paso a estado maduro (estado D). M&aacute;s adelante, estas lesiones se desarrollaron afectando la superficie de las hojas y ocasionando lesiones del tipo &quot;perdig&oacute;n&quot;, aunque en ning&uacute;n caso se evidenci&oacute; la formaci&oacute;n de estromas. La enfermedad en las parcelas fue observada desde el 29 de octubre de 2010, cuando la infecci&oacute;n ten&iacute;a 0,5% de severidad en promedio, hasta el 21 de enero de 2011, &eacute;poca en donde comenz&oacute; a descender, en concomitancia con el avance de la estaci&oacute;n seca en esta zona del pa&iacute;s. El nivel de severidad media m&aacute;xima observada fue de 5,78% y se present&oacute; entre el mes de diciembre y comienzos de enero. La presencia de lesiones t&iacute;picas de SALB en plantaciones y campos de observaci&oacute;n con el clon FX 3864 en los Llanos Orientales de Colombia recientemente, requieren la confirmaci&oacute;n plena de que el material de origen corresponde efectivamente a este clon, dado que por su condici&oacute;n de resistencia es ampliamente recomendado para su siembra en zonas de riesgo de ocurrencia de la enfermedad. </p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p> Lesiones iniciales observadas desarroll&aacute;ndose sobre hojas en estado juvenil en las parcelas trampa y con baja esporulaci&oacute;n fueron trasladadas al laboratorio para confirmar los signos de la enfermedad, estado anamorfo de <i>M. ulei</i> (<i>Fusicladium macrosporum</i>). Con ayuda de un estereoscopio y mediante la observaci&oacute;n de improntas tomadas de la superficie de las lesiones con cinta pegante transparente en el microscopio se identific&oacute; la presencia del pat&oacute;geno procediendo al aislamiento de conidias desarrolladas en lesiones individuales y su transferencia a cajas de Petri con medio de cultivo PDA al cual se le hab&iacute;a adicionado un antibi&oacute;tico (cloramfenicol). Los aislamientos obtenidos se conservan en c&aacute;maras de incubaci&oacute;n del laboratorio de fitopatolog&iacute;a en La Libertad para an&aacute;lisis posteriores.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p> De foliolos sanos obtenidos de los mismos &aacute;rboles de FX3864 en donde se observaron las hojas con lesiones y se aislaron las conidias del hongo, y de foliolos de plantas de referencia del mismo clon obtenidos del jard&iacute;n clonal de la plantaci&oacute;n Michelin&reg; en el estado de Bah&iacute;a (Brasil) se tom&oacute; 0,1 g de tejido y se macer&oacute; en tubos de 1,5 ml utilizando perlas de cuarzo con el equipo Mini-Beadbeater&reg; (Biospec Products). El tejido macerado se utiliz&oacute; para realizar la extracci&oacute;n de ADN mediante el m&eacute;todo propuesto por Varghese et al. (1997). Una vez aislado, el ADN obtenido se cuantific&oacute; por fluorometr&iacute;a (Qubit fluorormeter con el kit Quant-IT&reg; dsDNA HS assay de Invitrogen) y se llev&oacute; a una concentraci&oacute;n de 5 ng/&micro;l en una soluci&oacute;n de TE para su posterior amplificaci&oacute;n por PCR a fin de determinar la homolog&iacute;a entre el material vegetal.</p>      <p> La identificaci&oacute;n del origen de los tejidos enfermos y sanos se realiz&oacute; mediante la amplificaci&oacute;n por PCR del ADN extra&iacute;do, utilizando cuatro juegos de iniciadores de microsat&eacute;lites espec&iacute;ficos para Hevea sp. (<a href="#t1">tabla 1</a>) y siguiendo los procedimientos (condiciones de reacci&oacute;n, tiempos de amplificaci&oacute;n y visualizaci&oacute;n de los ampl&iacute;meros obtenidos) propuestos por Garc&iacute;a et al. (2011). La reacci&oacute;n de PCR se llev&oacute; a cabo para un volumen final de 12,5 &micro;l que conten&iacute;a 12,5 ng de ADN gen&oacute;mico, 0,4 &micro;M de cada uno de los iniciadores, 1,5 mM de MgCl2, 200 mM de dNTP y 1 unidad de taq ADN polimerasa (BioLine), el volumen se complet&oacute; con agua HPLC. La mezcla maestra se llev&oacute; al termociclador MyCycler de BioRad&reg; y se utiliz&oacute; el siguiente programa de amplificaci&oacute;n: temperatura inicial de denaturaci&oacute;n de 94 &deg;C por 3 min, seguido de 35 ciclos de 94 &deg;C por 15 s, 57 &deg;C por 1 min y 72 &deg;C por 15 s, y una extensi&oacute;n final de 7 min a 72 &deg;C. Como patr&oacute;n de referencia se utiliz&oacute; ADN extra&iacute;do de foliolos del clon FX 3864 suministrado por la plantaci&oacute;n de Caucho natural de Michelin&reg; - Bah&iacute;a, Brasil. Los amplicones fueron separados por electroforesis en condiciones denaturantes (Urea 7 M) en geles de poliacrilamida al 7% (<a href="#f2">figura 2</a>) y posteriormente visualizados mediante tinci&oacute;n con nitrato de plata.</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a19t1.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a19f1.jpg"></a></p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v13n1/v13n1a19f2.jpg"></a></p>      <p><b> Resultados y discusi&oacute;n </b></p>     <p> A partir de las observaciones en el estereoscopio y al microscopio fue posible identificar morfol&oacute;gicamente las lesiones caracter&iacute;sticas y las conidias t&iacute;picas de <i>F. macrosporum</i> (<a href="#f1">figuras 1a y 1b</a>) en conformidad con las descripciones consignadas en la literatura especializada (Gasparotto et al., 1997).</p>      <p> Los cuatro microsat&eacute;lites evaluados permitieron la amplificaci&oacute;n de fragmentos de ADN del mismo tama&ntilde;o y representando el mismo n&uacute;mero de alelos tanto del tejido proveniente de las plantas con lesiones de SALB, como con el de la planta sana utilizada como patr&oacute;n de referencia para la identificaci&oacute;n del clon FX3864. Con los iniciadores SSRH102 se obtuvo la amplificaci&oacute;n de dos alelos, uno con tama&ntilde;o de 270 y otro de 278 pb; con SSRH103 se obtuvo tambi&eacute;n la amplificaci&oacute;n de dos alelos con tama&ntilde;os de 262 y 246 pb; con SSRH358 igualmente dos alelos con tama&ntilde;os aproximados de 236 y 222 pb y, por &uacute;ltimo, con SSRH 403 se obtuvieron alelos con tama&ntilde;os entre 250 y 226 pb (figura 3).</p>      <p><b> Conclusiones </b></p>      <p> El presente trabajo confirma la presencia de infecciones de <i>M. ulei</i> (anamorfo <i>F. macrosporum</i>), agente causal del SALB en el clon FX 3864, cuya identidad fue certificada por marcadores moleculares. La confirmaci&oacute;n de la presencia de segmentos de la poblaci&oacute;n del pat&oacute;geno con capacidad de infectar este clon hasta hace poco resistente al SALB en diversos ambientes de Colombia, implica la necesidad de reorientar los programas de manejo de la enfermedad en las nuevas &aacute;reas de fomento del cultivo, advirtiendo a los agricultores sobre la posibilidad de desarrollo de lesiones durante los estados de desarrollo juvenil de las plantas en viveros y fases de establecimiento de las plantaciones en las zonas de cultivo identificadas como &quot;de escape&quot;, y en cualquier estado de desarrollo en las zonas &quot;de no escape&quot; a la enfermedad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Agradecimientos</b></p>      <p> Los autores agradecen al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural y al Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n (Colciencias), programa J&oacute;venes Investigadores e Innovadores &quot;Virginia Guti&eacute;rrez de Pineda&quot;, por la provisi&oacute;n de fondos para la realizaci&oacute;n de la investigaci&oacute;n. Especiales agradecimientos al doctor Carlos R. R. Mattos, gerente de Pesquisa &amp; Desenvolvimento, Planta&ccedil;&otilde;es Michelin da Bahia Ltda., por facilitaros el material de referencia del clon FX 3864.</p>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>1 Furtado, E. L., Menten, J. O. M., Passos, J. R. 2008. Intensidade do mal das folhas em plantas jovens e adultas de seis clones da seringueira na regi&atilde;o do Vale do Ribeira. <i>Tropical Plant Pathology</i>, 33(2): 130-137.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000036&pid=S0123-3475201100010001900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2 Garc&iacute;a, R. I. A., Gonz&aacute;lez, S. S. M., Aristiz&aacute;bal, G. F. A., Casta&ntilde;o, M. D. 2011. Identificaci&oacute;n por microsat&eacute;lites de genotipos de caucho natural de jardines clonales colombianos. Agronom&iacute;a Colombiana (aceptado para publicaci&oacute;n).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000037&pid=S0123-3475201100010001900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3 Gasparotto, L., Figuredo dos Santos, A., Rezende-Pereira, J. C., Alves-Ferreira, F. 1997. Doen&ccedil;as da seringueira no Brasil. Bras&iacute;lia: Embrapa-SPI: Manaus.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000038&pid=S0123-3475201100010001900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4 Varghese, Y., Knaak, A., Sethuraj, R. 1997. Evaluation of random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers in Hevea. Rubber Research Institute of India, Kottayam 686009, Institute of Agronomy and Plant Breeding, 116: 47-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000039&pid=S0123-3475201100010001900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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