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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diagnóstico de enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas y recién nacidos de Moniquirá y Miraflores, Boyacá, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: To study Trypanosoma cruzi infection in pregnant women and its transplacental transmission in Moniquira and Miraflores, Boyaca, Colombia. Materials and methods: Screening of 862 pregnant women in both municipalities was planned; 689 participants were screened by Elisa technique on blood samples drawn on filter paper from whom 659 samples were processed (358 from Moniquira and 301 from Miraflores). Elisa and IFAT in serum, blood cultures and PCR were carried out in positive pregnant women and their children. Results: The total prevalence of Chagas disease in pregnant women was 3.3% (22/659), 3.9% (12/301) in Miraflores and 2.7% (10/358) in Moniquira. Of the 22 pregnant women who were followed, data was obtained from 18 of their newborns, 6 of whom had positive blood culture tests. Blood cultures were considered as the confirmatory technique for parasitemia in newborns before 8 months of age. Therefore, the overall rate of transmission of congenital infection was 33.3% (6/18). After following-up at the homes and peridomiciles, searching for triatomine bugs and spraying the homes, we began treatment for the infected newborns with benznidazole at a dose of 5-8 mg/kg/day for 60 days. Conclusions: The prevalence found in pregnant women was similar to that reported for Casanare. The rate of transmission of congenital infection was similar to that reported in Chile (16%-28%) and higher than those in Brazil (1%), Argentina (1.5%-4.5%), Uruguay (0.5%-3%), Bolivia (7%) and Paraguay (7%).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font face="verdana" size="2">     <p>ORIGINAL </p>     <p><font size="4"><b>Diagn&oacute;stico de enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas y reci&eacute;n nacidos de Moniquir&aacute; y Miraflores, Boyac&aacute;, Colombia </b></font></p>      <p><b>Fred Manrique-Abril </b><sup><b>a, *</b></sup><b>, Juan Manuel Ospina </b><sup><b>a </b></sup><b>, Giomar Herrera A </b><sup><b>c </b></sup><b>, Astrid Carolina Florez</b><sup><b>b</b></sup><b><b>, Paula Ximena Pavia </b><b><sup>c</sup> </b><b>, Marleny Montilla </b><b><sup>b</sup></b><b>, Rub&eacute;n Santiago Nicholls </b><b><sup>b</sup></b>y Concepci&oacute;n Puerta Bula </b><sup><b>c </b></sup></p>      <p><sup>a</sup>  <i>Grupo de investigaci&oacute;n en Salud P&uacute;blica, Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia, Tunja, Colombia </i> </p>     <p><sup>b</sup>  <i>Grupo de Parasitolog&iacute;a, Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute;, Colombia </i> </p>     <p><sup>c</sup> <i>Laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular, Departamento de Microbiolog&iacute;a, Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, Colombia </i></p>     <p>Recibido el 10 de diciembre de 2012; aceptado el 19 de febrero de 2013 </p> <hr size="1">     <p><b>Resumen </b></p>     <p><i>Objetivo</i>: Estudiar la infecci&oacute;n por Trypanosoma cruzi en mujeres embarazadas en Moniquir&aacute; y Miraflores, en Boyac&aacute;, Colombia y su transmisi&oacute;n transplacentaria. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Materiales y m&eacute;todos</i>: Se program&oacute; la tamizaci&oacute;n de 826 mujeres embarazadas en los 2 municipios; se logr&oacute; un total de 689 participantes, de las cuales se procesaron 659 muestras (358 de Moniquir&aacute; y 301 de Miraflores), mediante t&eacute;cnicas de Elisa en muestras de sangre en papel de filtro. A las mujeres embarazadas positivas y a sus hijos se les aplicaron las pruebas de Elisa e inmunofluorescencia indirecta en suero, hemocultivo y reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. </p>      <p><i>Resultados</i>: La prevalencia total de enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas fue de3,34% (22/659), de 3,99% (12/301) en Miraflores y de 2,79% (10/358) en Moniquir&aacute;. De 22 mujeres embarazadas en seguimiento, se logr&oacute; obtener datos de 18 de los reci&eacute;n nacidos (RN), de los cuales 6 fueron positivos para las pruebas de hemocultivo. Se consider&oacute; el hemocultivo como la t&eacute;cnica confirmatoria de parasitemia en RN antes de 8 meses. Por lo tanto, la tasa de transmisi&oacute;n de infecci&oacute;n cong&eacute;nita fue de 33,33% (6/18). Luego del seguimiento del entorno hogar y peridomicilio, b&uacute;squeda de triatom&iacute;neos y fumigaci&oacute;n de la vivienda, se inici&oacute; tratamiento de los reci&eacute;n nacidos infectados con benzonidazole a una dosis de 5-8 mg/kg/d&iacute;a durante 60 d&iacute;as. </p>     <p><i>Conclusiones</i>: La prevalencia en mujeres embarazadas obtenida fue similar a la reportada en Casanare (4%). La tasa de transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita fue similar a la reportada en Chile (16 al 28%), superior a la de Brasil (1%), Argentina (1,5% a 4,5%), Uruguay (0,5 a 3%), Bolivia y Paraguay (7%).  </p>     <p><b>PALABRAS CLAVE </b> Enfermedad de Chagas; <i>Trypanosoma cruzi; </i> Transmisi&oacute;n transplacentaria;  Colombia</p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados.</p>  <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Diagnosis of Chagas disease in Pregnant Women and Newborns in Moniquir&aacute; and Mira-Florez</b><b>, Boyac&aacute;, Colombia </b></font></p>      <p><b>Abstract </b></p>     <p><i>Objective</i>: To study Trypanosoma cruzi infection in pregnant women and its transplacental transmission in Moniquira and Miraflores, Boyaca, Colombia. </i></p>      <p><i>Materials and methods</i>: Screening of 862 pregnant women in both municipalities was planned; 689 participants were screened by Elisa technique on blood samples drawn on filter paper from whom 659 samples were processed (358 from Moniquira and 301 from Miraflores). Elisa and IFAT in serum, blood cultures and PCR were carried out in positive pregnant women and their children. </i></p>      <p><i>Results</i>: The total prevalence of Chagas disease in pregnant women was 3.3% (22/659), 3.9% (12/301) in Miraflores and 2.7% (10/358) in Moniquira. Of the 22 pregnant women who were followed, data was obtained from 18 of their newborns, 6 of whom had positive blood culture tests. Blood cultures were considered as the confirmatory technique for parasitemia in newborns before 8 months of age. Therefore, the overall rate of transmission of congenital infection was 33.3% (6/18). After following-up at the homes and peridomiciles, searching for triatomine bugs and spraying the homes, we began treatment for the infected newborns with benznidazole at a dose of 5-8 mg/kg/day for 60 days. </i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Conclusions</i>: The prevalence found in pregnant women was similar to that reported for Casanare. The rate of transmission of congenital infection was similar to that reported in Chile (16%-28%) and higher than those in Brazil (1%), Argentina (1.5%-4.5%), Uruguay (0.5%-3%), Bolivia (7%) and Paraguay (7%). </p>      <p><b>KEYWORDS: </b></p>     <p>Chagas disease; <i>Trypanosoma cruzi </i>; Transmisi&oacute;n transplacentaria; Colombia </p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Published by Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. All rights reserved. </p> <hr size="1">      <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>     <p>La enfermedad de Chagas es una parasitosis causada por el flagelado <i>Trypanosoma cruzi </i>, que afecta a alrededor de 10 millones de personas en 21 pa&iacute;ses end&eacute;micos en Centro y Sudam&eacute;rica <sup>1</sup>. <i>T. cruzi </i>es un par&aacute;sito heterog&eacute;neo clasificado en seis Unidades Discretas de Tipificaci&oacute;n (DTU, por sus siglas en ingl&eacute;s) I-VI, las cuales parecen estar asociadas con los ciclos de transmisi&oacute;n, manifestaciones cl&iacute;nicas y gravedad de la enfermedad <sup>2,3</sup>. En Colombia se considera que la poblaci&oacute;n del par&aacute;sito de mayor circulaci&oacute;n es la DTU I seguida de la DTU II <sup>4,5</sup>. </p>     <p>Aunque la principal v&iacute;a de transmisi&oacute;n de esta enfermedad es a trav&eacute;s de los insectos vectores de la familia <i>Reduviidae </i>, el par&aacute;sito tambi&eacute;n puede ser transmitido de madres infectadas al feto <i>in utero </i><sup>6-10</sup>. La infecci&oacute;n intrauterina puede ocurrir tanto en la etapa aguda como cr&oacute;nica de la infecci&oacute;n materna y afectar a embarazos sucesivos y gemelares. Los reci&eacute;n nacidos (RN) infectados pueden presentar un amplio espectro de manifestaciones que van desde RN aparentemente sanos y de peso adecuado para la edad gestacional (90%) hasta cuadros graves que pueden conducir a la muerte, especialmente de los RN prematuros, siendo la hepatoesplenomegalia el hallazgo m&aacute;s com&uacute;n <sup>6-8,11</sup> . Otras observaciones menos frecuentes son s&iacute;ntomas neurol&oacute;gicos tales como convulsiones, hipoton&iacute;a y temblor de brazos y piernas. Tambi&eacute;n se pueden presentar fiebre, ictericia, anemia y edemas </s><sup>7</sup>. </p>     <p>A pesar de que la transmisi&oacute;n vertical de <i>T. cruzi </i>no puede ser prevenida, el diagn&oacute;stico r&aacute;pido y oportuno de los RN infectados es prioritario por cuanto se sabe que, cuanto m&aacute;s temprano se inicie el tratamiento antiparasitario espec&iacute;fico, mayor es la probabilidad de eliminar el par&aacute;sito, llegando a presentarse tasas de curaci&oacute;n hasta del 100% tras el tratamiento, con lo cual se evita el desarrollo posterior de cardiopat&iacute;a chag&aacute;sica cr&oacute;nica <sup>10,12</sup>. Los medicamentos de elecci&oacute;n actualmente son el benzonidazole (Rochagan &reg; ) y el nifurtimox (Lampit &reg; , Bayer), los cuales tienen muy pocos efectos secundarios en RN <sup>10,13,14</sup>. </p>     <p>El diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n materna se basa en la serolog&iacute;a convencional, en tanto que el diagn&oacute;stico en el RN se realiza por ex&aacute;menes parasitol&oacute;gicos directos que demuestren la presencia del par&aacute;sito <sup>8,10,15</sup>, de manera que se utilizan tanto ex&aacute;menes directos como examen en fresco, frotis sangu&iacute;neo seguido de tinci&oacute;n de Giemsa y de m&eacute;todos de concentraci&oacute;n tales como el m&eacute;todo de Strout, microhematocrito, gota gruesa y hemocultivo, entre otros. Estos m&eacute;todos no presentan ning&uacute;n inconveniente en el caso de RN con elevadas parasitemias. </p>     <p>No obstante, en el caso de RN asintom&aacute;ticos con bajos niveles de par&aacute;sitos circulantes se hace necesario el uso de otras t&eacute;cnicas que tengan una mayor sensibilidad. Es as&iacute; como la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) se ha constituido en una herramienta &uacute;til para el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n en los RN, la cual est&aacute; siendo ampliamente utilizada en pa&iacute;ses como Chile y Argentina <sup>12,16-18</sup>. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Entre las reacciones de PCR m&aacute;s utilizadas para la detecci&oacute;n de <i>T. cruzi </i>en muestras biol&oacute;gicas, se encuentran las basadas en la amplificaci&oacute;n del ADN del cinetoplasto <sup>19,20</sup> y la secuencia repetida nuclear de 195 pb del par&aacute;sito <sup>12</sup>. Por su parte, en el laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular de la Pontificia Universidad Javeriana se dise&ntilde;&oacute; y estandariz&oacute; la prueba histona H2A de <i>T. cruzi </i>, la cual mostr&oacute; un buen desempe&ntilde;o en la detecci&oacute;n del par&aacute;sito en muestras de insectos vectores y de sangre de pacientes cr&oacute;nicos. Sus resultados fueron concordantes con los obtenidos con los iniciadores S35-S36, cebadores que amplifican el ADN del cinetoplasto <sup>21,22</sup>. Asimismo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han propuesto diferentes pruebas de PCR en tiempo real <sup>23,24</sup>, las cuales tienen la ventaja de cuantificar la carga parasitaria <sup>25,26</sup>. </p>     <p>La enfermedad de Chagas transplacentaria no se limita a las &aacute;reas rurales, en donde ocurre transmisi&oacute;n vectorial, sino que cada vez con mayor frecuencia se tienen reportes de ciudades a las cuales han migrado desde el campo mujeres infectadas en edad f&eacute;rtil <sup>10</sup>. Es as&iacute; como se han notificado casos en Argentina, Bolivia, Brasil, Chile, Honduras, Guatemala, Paraguay, Uruguay, Venezuela y Colombia <sup>6</sup>. Por ejemplo, en Buenos Aires (Argentina), como resultado de la migraci&oacute;n desde zonas end&eacute;micas, la infecci&oacute;n se detecta en un 2,6 a 6,7% de las mujeres embarazadas <sup>11</sup>. </p>     <p>La tasa de transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita de la enfermedad de Chagas, definida como el cociente resultante de dividir el n&uacute;mero de casos cong&eacute;nitos por el n&uacute;mero de madres chag&aacute;sicas, puede variar en diferentes zonas geogr&aacute;ficas, incluso dentro de un mismo pa&iacute;s <sup>6</sup>. Por ejemplo, en Brasil se ha reportado una tasa del 1% <sup>6</sup>, en Uruguay del 0,5 al 3,5% <sup>27</sup>, en Argentina del 1,5 al 4,5% <sup>10,13</sup>, en algunas regiones de Bolivia y Paraguay se han encontrado tasas mayores del 7% <sup>6</sup> y en Chile var&iacute;a del 16 al 28% dependiendo de la localidad <sup>8</sup>. </p>     <p>En Colombia, aun cuando se estima que 427.000 personas residentes en las &aacute;reas end&eacute;micas se encuentran infectadas y un 11% de la poblaci&oacute;n en general se encuentra en riesgo de adquirir la infecci&oacute;n <sup>28,29</sup> , existen pocos reportes de estudios de infecci&oacute;n materna por <i>T. cruzi </i>, as&iacute; como de la transmisi&oacute;n transplacentaria de esta enfermedad. As&iacute;, el primer caso de enfermedad de Chagas transplacentaria en Colombia, analizado por AP-PCR, se present&oacute; en Moniquir&aacute;, Boyac&aacute; <sup>30</sup> y los factores de riesgo asociados con la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi </i>en mujeres embarazadas en Casanare fueron descritos en 2012 <sup>16</sup>. </p>     <p>Este trabajo presenta la prevalencia en mujeres embarazadas y la incidencia en RN de la enfermedad transplacentaria en los municipios de Miraflores y Moniquir&aacute; de Boyac&aacute;, municipios que representan zonas de alta endemia. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p><b>Tipo de estudio </b></p>     <p>El estudio “Enfermedad de Chagas transplacentaria en los municipios de Miraflores y Moniquir&aacute;, Boyac&aacute;” tuvo 3 fases en 2 dise&ntilde;os, uno de corte transversal y el segundo longitudinal. En la primera se realiz&oacute;, como prueba de tamizaci&oacute;n, serolog&iacute;a mediante ensayo inmunoenzim&aacute;tico (Elisa) en muestras de sangre tomada en papel de filtro Whatmann # 3 a mujeres embarazadas de los municipios de Miraflores y Moniquir&aacute; en el segundo o &uacute;ltimo trimestre del embarazo, seg&uacute;n la metodolog&iacute;a del Instituto Nacional de Salud <sup>31</sup> (INS) y protocolo estandarizado. En la segunda fase, se aplicaron las pruebas serol&oacute;gicas confirmatorias a las madres positivas en la tamizaci&oacute;n, dos pruebas convencionales de principio diferente, Elisa <sup>32</sup> e inmunofluorescencia indirecta (IFI) en muestras de suero, seg&uacute;n lineamientos de la Organizaci&oacute;n Mundial de Salud <sup>6</sup> , y se realiz&oacute; toma de muestras de sangre total para diagn&oacute;stico parasitol&oacute;gico, por microhematocrito, hemocultivo y PCR a los hijos de madres seropositivas. En la tercera fase, se realiz&oacute; el tratamiento de los ni&ntilde;os infectados. En los casos en que se encontraron hemocultivos positivos, se realiz&oacute; PCR para tipificaci&oacute;n molecular de los aislamientos de <i>T. cruzi </i>. </p>     <p><b>Poblaci&oacute;n de estudio </b></p>     <p>Se trabaj&oacute; en los municipios de Miraflores y Moniquir&aacute;, los cuales constituyen zonas de alta endemia para la enfermedad de Chagas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la primera fase del estudio, se incluy&oacute; a las mujeres embarazadas que asistieron a control prenatal durante un a&ntilde;o (abril de 2006-marzo de 2007) a los Hospitales Regional de Moniquira y Hospital Regional de Miraflores que cumplieron el criterio de inclusi&oacute;n y firmaron el consentimiento informado en conjunto con su pareja. El criterio de inclusi&oacute;n fue mujeres embarazadas que asistieron a control prenatal en los municipios objeto de estudio. A todas las mujeres embarazadas se les tom&oacute; una muestra de sangre mediante punci&oacute;n capilar en papel filtro para la tamizaci&oacute;n mediante la prueba de Elisa y aquellas muestras que resultaron positivas fueron confirmadas mediante Elisa e IFI en muestras de suero, procedimientos realizados en el Laboratorio de Parasitolog&iacute;a del INS <sup>31,32</sup>. </p>     <p>Se calcul&oacute; una muestra de 826 (600 a 950) mujeres embarazadas en ambos municipios durante el a&ntilde;o de estudio, seg&uacute;n indicadores hist&oacute;ricos de control prenatal y atenci&oacute;n del parto. En la segunda fase del estudio, se estudiaron tanto los ni&ntilde;os RN de las madres positivas para la infecci&oacute;n como sus respectivas madres. Se esperaba una muestra de 95 (25 a 165) madres positivas para la infecci&oacute;n. Todos los ni&ntilde;os se evaluaron cl&iacute;nicamente, fueron pesados, y se les tom&oacute; una muestra de sangre total entre el s&eacute;ptimo y d&eacute;cimo d&iacute;a de nacimiento, para las pruebas parasitol&oacute;gicas de microhematocrito y hemocultivo y las pruebas serol&oacute;gicas de Elisa e IFI, las cuales fueron realizadas en el Laboratorio de Parasitolog&iacute;a del INS, y para las pruebas de PCR que se realizaron en el Laboratorio de Parasitolog&iacute;a Molecular, Pontificia Universidad Javeriana. Teniendo en cuenta una incidencia de infecci&oacute;n transplacentaria del 3-20% al a&ntilde;o se esperaba en ambos municipios una ocurrencia de 9 (3 a 19) RN infectados. </p>     <p>El criterio de positividad determinado por el grupo de investigadores y la asesora internacional de la Universidad de Chile se defini&oacute; como los RN con resultado parasitol&oacute;gico positivo en las pruebas de microhematocrito o hemocultivo. A los RN negativos se les repitieron todas las pruebas entre los 8 y 10 meses de nacidos para descartar definitivamente la infecci&oacute;n. Finalmente, en la tercera y &uacute;ltima etapa del estudio, los ni&ntilde;os RN infectados fueron sometidos a tratamiento de la infecci&oacute;n. </p>     <p><b>Pruebas serol&oacute;gicas </b></p>     <p>Las pruebas convencionales de Elisa en suero y en elu&iacute;dos de sangre en papel de filtro e IFI a partir de suero fueron estandarizadas en el Laboratorio de Parasitolog&iacute;a del INS. Ambas utilizan ant&iacute;geno total de cepas de <i>T. cruzi </i>colombianas. Para este estudio fue utilizada la cepa MHOM/CO/03/CG de <i>T. cruz </i>i <sup>32</sup>. </p>     <p><b>Pruebas parasitol&oacute;gicas </b></p>     <p>Se realizaron las pruebas de microhematocrito <sup>33</sup> y hemocultivo <sup>34</sup>. Los hemocultivos se hicieron con muestras de sangre anticoagulada con citrato de sodio de la madre a los 9 meses de gestaci&oacute;n, y de su hijo, a los 2 y 4 meses del nacimiento. Se sembraron, aproximadamente, 1,5 ml de cada muestra en 3 tubos con medio Tobie para la madre y 2 tubos para el beb&eacute;. Los hemocultivos se observaron en microscopio invertido cada 8 d&iacute;as despu&eacute;s del d&iacute;a de siembra durante un periodo de hasta 6 meses. </p>     <p><b>Pruebas de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa </b></p>     <p>A partir de las muestras de sangre y de las cepas aisladas de los hemocultivos positivos de madres e hijos, se obtuvo el ADN con los m&eacute;todos que utilizan clorhidrato de guanidina, en el caso de las muestras de sangre, o NP40 al 10% para las cepas aisladas en cultivo, seguido de extracci&oacute;n con fenol-cloroformo-alcohol isoam&iacute;lico <sup>21,35</sup>. Con el fin de comprobar la integridad del ADN y descartar la presencia de inhibidores en la muestra, se corri&oacute; la PCR que amplifica una regi&oacute;n del gen de la &szlig;-globina <sup>36</sup>. Para la identificaci&oacute;n de <i>T. cruzi, </i>se utilizaron los iniciadores TcH2AF-R 21,35 y S35- S36 <sup>37</sup> . Para determinar la DTU de los par&aacute;sitos aislados por hemocultivo, se realizaron diferentes reacciones de PCR. En primer lugar, con los iniciadores Tc/TcI/TcII, se amplific&oacute; una regi&oacute;n del gen miniex&oacute;n, la cual permite la discriminaci&oacute;n de la DTU I (fragmento de 350 pb) de las DTU II, V y VI <sup>38</sup> (fragmento de 300 pb). Tambi&eacute;n se utilizaron los iniciadores V1-V2 que amplifican una regi&oacute;n del dominio variable del gen codificante para el ARNr 18S, la cual arroja el siguiente perfil de amplificaci&oacute;n: un fragmento de 155 pb para el caso de la DTU IV y uno de 165 pb para las DTU II, III y V. Finalmente, se usaron los iniciadores D71-D72, que amplifican una regi&oacute;n del dominio divergente del gen codificante para el ARNr 24S del par&aacute;sito amplificando un fragmento de 110 pb para el caso de la DTU I y III, uno de 125 pb para la DTU II y VI, ambos fragmentos para la DTU V y una serie de fragmentos de 120, 125 y 130 pb para la DTU IV <sup>39</sup>. En todas las reacciones de PCR se incluyeron los siguientes controles: de reacci&oacute;n (adici&oacute;n de agua como templado en el cuarto de preparaci&oacute;n de la mezcla de reacci&oacute;n), control negativo (ADN de un individuo sano) y positivo (1 ng de ADN gen&oacute;mico de <i>T. cruzi </i>I para las PCR de identificaci&oacute;n y para las de genotipificaci&oacute;n, ADN gen&oacute;mico de cepas de las DTU I-VI). Todos los productos de amplificaci&oacute;n se analizaron en geles de agarosa te&ntilde;idos con bromuro de etidio. </p>     <p><b>Tratamiento y seguimiento de los reci&eacute;n nacidos </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se inici&oacute; tratamiento a los RN con 5-8 mg/kg/peso/d&iacute;a de benzonidazole (Rochagan &reg; ), por v&iacute;a oral despu&eacute;s de las comidas, en 2 dosis diarias, con la intenci&oacute;n de administrarlo durante 60 d&iacute;as <sup>10,12,17</sup>. Los ni&ntilde;os prematuros o con bajo peso iniciaron el tratamiento con la mitad de la dosis durante 72 horas, al cabo de las cuales se administr&oacute; la dosis total. </p>     <p>El protocolo del estudio incluy&oacute; la realizaci&oacute;n, a los RN tratados, de ex&aacute;menes cl&iacute;nicos semanales, control de peso y talla, observaci&oacute;n de aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas adversos colaterales y an&aacute;lisis de laboratorio como hemograma, creatinina, transaminasas y parcial de orina al inicio, a la mitad y al final del tratamiento. Tambi&eacute;n se inici&oacute; tratamiento a las madres seropositivas una vez terminado su embarazo, con el mismo esquema y protocolo de seguimiento. </p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></p>     <p>Los datos fueron consignados en un formulario de recolecci&oacute;n de datos individual precodificado, de forma independiente y ciega. Se realiz&oacute; una base de datos en computador utilizando el programa EPIINFO 2002. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico tuvo por objeto describir en primera instancia las proporciones de infecci&oacute;n de las madres en los municipios de Miraflores y Moniquir&aacute; y su respectiva comparaci&oacute;n. En segundo lugar, se determinaron las incidencias de la enfermedad de Chagas transplacentaria en los RN de los municipios bajo estudio y su respectiva comparaci&oacute;n. El an&aacute;lisis de datos se llev&oacute; a cabo a trav&eacute;s de los programas estad&iacute;sticos Epiinfo y SPSS 11.5. Se procedi&oacute; a la descripci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas sociodemogr&aacute;ficas de la poblaci&oacute;n de estudio previa evaluaci&oacute;n de la distribuci&oacute;n de las variables del estudio y los c&aacute;lculos de las variables anteriormente mencionadas. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p>Se incluyeron 689 mujeres embarazadas en el estudio, de las cuales en 11 la muestra result&oacute; insuficiente para el tamizaje y se perdieron o se da&ntilde;&oacute; la muestra en el transporte de 19 de ellas, quedando 659 muestras tamizadas en la primera fase del estudio a trav&eacute;s de papel filtro. </p>     <p>La edad media de las participantes en el estudio fue de 24,7 a&ntilde;os con una desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DS) de 6,7; la edad m&iacute;nima fue de 14 a&ntilde;os y la m&aacute;xima de 43. </p>     <p>De las 659 mujeres embarazadas en tamizaci&oacute;n, resultaron positivas a Elisa en papel de filtro 22 de ellas, lo cual indica un positividad para <i>T. cruzi </i>del 3,34% (intervalo de confianza &#91;IC&#93; 95%: 2,2-5,1%). Las positivas ingresaron en el estudio para confirmaci&oacute;n del diagn&oacute;stico y seguimiento hasta el momento del parto; estas ten&iacute;an una edad media de 26,5 a&ntilde;os, DS 5,17, con edad m&iacute;nima de 17 a&ntilde;os y m&aacute;xima de 38. La absorbancia registrada en las negativas estuvo entre 0,0030 y 0,3960 con una media de 0,16 y DS de 0,08. De acuerdo con el protocolo de lectura, la absorbancia registrada para las positivas estuvo entre 0,40 y 0,845 con una media de 0,48, DS 0,01, con diferencia estad&iacute;stica significativa p &lt; 0,01. </p>     <p>La prevalencia global de la enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas fue de 3,34% (22/659), 3,99% (12/301) en Miraflores y 2,79% (10/358) en Moniquir&aacute;. </p>     <p>De 22 mujeres embarazadas positivas en la tamizaci&oacute;n, se obtuvieron muestras para confirmaci&oacute;n de 18 de ellas mediante las pruebas de Elisa e IFI en suero, hemocultivo y PCR (<a href="#tabla1">tabla 1</a>). Las 4 restantes se perdieron por cambio de residencia de las participantes. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center>   <a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v17n1/v17n1a05t1.gif"></a></center> </p>     <p>De las 18 mujeres embarazadas en seguimiento, se lograron datos de todos sus RN, de los cuales 6 fueron positivos para las pruebas de hemocultivo. Se consider&oacute; el hemocultivo como la t&eacute;cnica confirmatoria de parasitemia en RN antes de 8 meses. Por lo tanto, la tasa de transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita por <i>T. cruzi </i>fue del 33,33% (6/18) (<a href="#tabla2">tabla 2</a>). A 3 embarazadas y 6 beb&eacute;s procedentes de los municipios de Moniquir&aacute; y Miraflores se les logr&oacute; aislar el par&aacute;sito a partir de muestras de sangre. </p>     <p>    <center>   <a name="tabla2"><img src="img/revistas/inf/v17n1/v17n1a05t2.gif"></a></center> </p>     <p>La prueba directa de hematocrito en los RN fue totalmente ineficaz, probablemente por falta de acogimiento al protocolo y homogenizaci&oacute;n del mismo en su realizaci&oacute;n por parte de los diferentes hospitales. </p>     <p>En cuanto a los resultados obtenidos con las pruebas de PCR TcH2AF-R y S35-S36, se encontr&oacute; que en las 17 mujeres embarazadas la positividad fue del 100% con ambas parejas de iniciadores, observando los fragmentos esperados de amplificaci&oacute;n de 234 pb y 330 pb, respectivamente (<a href="#tabla1">tabla 1</a>, <a href="#figura1">fig. 1</a>). En el caso de los RN, para los iniciadores TcH2AF-R la positividad fue del 94,1% y para la PCR S35- S36 fue del 100% (<a href="#tabla2">tabla 2</a>). Todas las muestras de ADN fueron amplificadas con los iniciadores de la &szlig;-globina para descartar la presencia de inhibidores de la PCR que pudieran generar resultados falsos negativos. As&iacute;, se observ&oacute; el fragmento esperado de aproximadamente 210 pb en todas las muestras analizadas. </p>     <p>    <center>   <a name="figura1"><img src="img/revistas/inf/v17n1/v17n1a05i1.jpg"></a></center> </p>     <p>La tipificaci&oacute;n molecular de los 9 aislados de los hemocultivos positivos mostr&oacute;, de acuerdo con los resultados de la PCR TC/TCI/TCII, que 6 de estos pertenec&iacute;an a aislados de la DTU I (fragmento espec&iacute;fico de 350 pb), 2 a las DTU II-VI (fragmento espec&iacute;fico de 300 pb) y 1 result&oacute; ser una mezcla de varias poblaciones. Posteriormente, con las pruebas de PCR que utilizan los iniciadores V1-V2 y D71- D72 se identificaron los dos aislados DTU II-VI como pertenecientes a la DTU II (productos de amplificaci&oacute;n espec&iacute;ficos de 165 y 125 pb, respectivamente). En el caso de la mezcla de varias DTU, se amplificaron fragmentos de 165 y 110 pb, respectivamente, lo cual sugiere una infecci&oacute;n mixta por las DTU I y II. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De acuerdo con el protocolo de seguimiento y tratamiento, se inici&oacute; la terapia a un RN luego del tiempo de lactancia, consistente en la administraci&oacute;n de 5-8 mg/kg de peso de benzonidazole por d&iacute;a durante 60 d&iacute;as. Antes de iniciar el tratamiento, se practicaron las pruebas de laboratorio cl&iacute;nico, valoraci&oacute;n m&eacute;dica y se realiz&oacute; desinfecci&oacute;n y fumigaci&oacute;n de vivienda. </p>     <p>Por aceptaci&oacute;n voluntaria de los padres, se inici&oacute; el tratamiento en otros 2 de los 6 ni&ntilde;os infectados. Sin embargo, los padres decidieron suspender el tratamiento tras 15 d&iacute;as de administraci&oacute;n por presentaci&oacute;n de n&aacute;useas y dolor de cabeza en las madres que igualmente hab&iacute;an iniciado el tratamiento. Por estas razones, no fue posible evaluar la eficacia del tratamiento. </p>     <p>Vale la pena se&ntilde;alar que, en general, durante el tiempo de tratamiento, no se presentaron reacciones adversas graves en los RN y que tan solo una de las madres complet&oacute; el tratamiento, mitad con benzonidazole y mitad con nifurtimox. Los resultados de las pruebas de funci&oacute;n hep&aacute;tica y renal, el electrocardiograma y la valoraci&oacute;n pedi&aacute;trica fueron normales luego de interrupci&oacute;n del tratamiento tras 1 mes de su aplicaci&oacute;n. </p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>Este es el primer estudio epidemiol&oacute;gico de transmisi&oacute;n transplacentaria de enfermedad de Chagas en Colombia. La prevalencia total de la enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas fue estimada mediante tamizaci&oacute;n con la t&eacute;cnica de Elisa en papel de filtro, de acuerdo con los lineamientos de la OMS de utilizar una prueba convencional en estudios de encuestas epidemiol&oacute;gicas utilizando muestras de suero, plasma o sangre recogidas en papel de filtro <sup>6,31,40</sup>. La prevalencia fue similar a la del 4% obtenida en un estudio realizado en Casanare, Colombia <sup>16</sup>. Aunque se logr&oacute; tomar sangre total venosa para realizar la confirmaci&oacute;n serol&oacute;gica en suero de 18 mujeres seropositivas de las 22 obtenidas en la tamizaci&oacute;n, la concordancia entre los resultados de ambas pruebas fue muy baja, posiblemente por problemas externos como hem&oacute;lisis de las muestras, y no por inconvenientes intr&iacute;nsecos de la prueba <sup>31,32</sup>. </p>     <p>La tasa de transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita obtenida en este estudio, 33,3%, fue similar a la reportada en Chile <sup>8</sup> (16 al 28%), pero muy superior a la de Brasil <sup>6</sup> (1%), Argentina <sup>10,13</sup> (1,5% a 4,5%), Uruguay <sup>27</sup> (0,5 a 3%) y Bolivia y Paraguay <sup>6</sup> (7%). </p>     <p>En concordancia con lo descrito en la literatura, las pruebas serol&oacute;gicas que detectan IgG no constituyen criterio diagn&oacute;stico al momento del nacimiento, a menos que su positividad se mantenga despu&eacute;s de los 9 meses de edad <sup>10</sup> . Antes de esta edad, el estudio serol&oacute;gico detecta anticuerpos de clase IgG que o bien pueden ser producidos directamente por el RN o bien pueden provenir de la madre y ser transmitidos al RN a trav&eacute;s de la placenta <sup>10,11</sup>. De acuerdo con lo anterior, en este estudio se consider&oacute; el hemocultivo como la prueba confirmatoria diagn&oacute;stica, siendo positiva en 6 de 18 RN. Llamativamente, no se encontr&oacute; concordancia entre los resultados del hemocultivo y los de las pruebas serol&oacute;gicas confirmatorias en suero de los RN, hecho que concuerda con un estudio en Argentina que mostr&oacute; que entre los 6 y 9 meses de edad la parasitemia detect&oacute; un 36,2% de m&aacute;s casos que las pruebas serol&oacute;gicas <sup>41</sup>. </p>     <p>Contrario al desempe&ntilde;o del microhematocrito en estudios realizados en Bolivia y en otros pa&iacute;ses del Cono Sur <sup>41,42</sup>, en este trabajo, el microhematocrito no logr&oacute; detectar ninguno de los casos de Chagas cong&eacute;nito. Este resultado podr&iacute;a explicarse bien por una baja carga parasitaria o por fallas en la metodolog&iacute;a empleada. </p>     <p>Aun cuando las pruebas de PCR fueron positivas en todos los casos de los RN, dado que su positividad puede obedecer a la presencia de detritos del par&aacute;sito que pasaron de la madre al feto, mas no a infecci&oacute;n activa, se tiene como criterio de apoyo y se recomienda su repetici&oacute;n a los 9 meses de vida de los infantes. </p>     <p>De hecho, en este estudio se pudo evidenciar en 3 RN, a quienes se les tom&oacute; muestra en 2 o 3 oportunidades durante su primer a&ntilde;o de vida, que mientras el RN positivo por hemocultivo present&oacute; pruebas de PCR positivas en todos los muestreos, en el caso de los 2 ni&ntilde;os negativos por hemocultivo, sus PCR se negativizaron tras el a&ntilde;o de vida. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En relaci&oacute;n con el tratamiento, no hubo adherencia al mismo tanto de parte de los RN como de las madres a quienes se les inici&oacute; una vez terminado su embarazo. En el caso de los RN esto podr&iacute;a atribuirse, al menos parcialmente, a la falta de disponibilidad de presentaciones pedi&aacute;tricas del medicamento. </p>     <p>En conclusi&oacute;n, se demostr&oacute; por primera vez la transmisi&oacute;n transplacentaria de <i>T. cruzi </i>en Colombia, la cual se presenta por cepas de las DTU I y II del par&aacute;sito, existiendo adem&aacute;s la presencia de infecciones mixtas. Se recomienda realizar estudios similares en otras zonas end&eacute;micas de transmisi&oacute;n de enfermedad de Chagas en Colombia para determinar la prevalencia de infecci&oacute;n en mujeres embarazadas y la incidencia de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita. Los resultados de estos estudios ser&aacute;n &uacute;tiles para formular e implementar programas de tamizaci&oacute;n de embarazadas y diagn&oacute;stico y tratamiento a los reci&eacute;n nacidos de madres infectadas para evitar que ellos desarrollen las formas cr&oacute;nicas e incapacitantes de la enfermedad. </p>     <p><b>Financiaci&oacute;n </b></p>     <p>Proyecto financiado por COLCIENCIAS, C&oacute;digo del Proyecto: 1109-04-18231; Contrato UPTC-Colciencias RC 439-2005. Cofinanciado por la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia, Tunja, Boyac&aacute;, la Pontificia Universidad Javeriana, Bogot&aacute;, D.C., y el Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute;, D.C. </p>     <p><b>Agradecimientos </b></p>     <p>A la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia, a los j&oacute;venes investigadores Leonardo Cely, Diego Manrique y Marlon Tejedor y a la Dra. Myriam Lorca por su papel como asesora internacional del proyecto. </p>     <p>* Autor para correspondencia.    <br>   Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:fgma75@hotmail.com">fgma75@hotmail.com</a> (F. Manrique-Abril).</p>     <p>0123-9392/$ - see front matter &copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados.</p>     <p><b>Bibliograf&iacute;a </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. World Health Organization (WHO). Working to overcome the global impact of neglected tropical diseases, First WHO report on neglected tropical diseases. Ginebra: WHO; 2010. p. 75-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-9392201300010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>2. Zingales B, Andrade SG, Briones MR, Cambpell DA, Chiari E, Fernandes O, et al. A new consensus for <i>Trypanosoma cruzi </i>intraspecific nomenclature: second revision meeting recommends Tc I to Tc VI. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104:1051-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-9392201300010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>3. Zingales B, Miles MA, Campbell DA, Tibayrenc M, Macedo AM, Teixeira MM, et al. The revised <i>Trypanosoma cruzi </i>subspecific nomenclature: Rationale, epidemiological relevance and research applications. Infect Genet Evol. 2012;12:240-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-9392201300010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>4. Zafra G, Mantilla JC, Valadares HM, Macedo A M, Gonz&aacute;lez CI. Evidence of <i>Trypanosoma cruzi </i>II infection in Colombian chagasic patients. Parasitol Res. 2008;103:731-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-9392201300010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>5. Zafra G, Mantilla J C, J&aacute;come J, Macedo A M, Gonz&aacute;lez C I. Direct analysis of genetic variability in <i>Trypanosoma cruzi </i>populations from tissues of Colombian chagasic patients. Hum Pathol. 2011;42:1159-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-9392201300010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>6. World Health Organization: Control of Chagas Disease: Report of a WHO Expert Committee, Vol. 905. Ginebra: World Health Organization; 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-9392201300010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. World Health Organization: Control of Chagas Disease: Report of a WHO Expert Committee, Vol. 811. Ginebra: World Health Organization; 1991.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-9392201300010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>8. Lorca M. Enfermedad de Chagas transplacentaria en Am&eacute;rica L&aacute;tina. Experiencias de intervenci&oacute;n en Chile. En: Guhl F, editor. Primer Taller Internacional Sobre Control de la enfermedad de Chagas, Curso de Diagn&oacute;stico, Manejo y Tratamiento de la Enfermedad de Chagas, VI Reuni&oacute;n de la Iniciativa Andina para el Control de la Enfermedad de Chagas. Bogot&aacute;: Corcas Editores; 2005. p. 237-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-9392201300010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>9. Neto EC, Rubin R, Schulte J, Giugliani R. Newborn screening for congenital infectious diseases. Emerg Infect Dis. 2004;10:1068-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-9392201300010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. Carlier Y, Torrico F, Sosa-Estani S, Russomando G, Luquetti A, Freilij H, et al. Congenital Chagas disease: recommendations for diagnosis, treatment and control of newborns, siblings and pregnant women. PLoS Negl Trop Dis. 2011;5:e1250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-9392201300010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>11. Freilij H, Altcheh J. Congenital Chagas' disease: diagnostic and clinical aspects. Clin Infect Dis Off Publ Infect Dis Soc Am. 1995;21:551-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-9392201300010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Russomando G, De Tomassone MM, De Guill&eacute;n I, Acosta N, Vera N, Almiron M, et al. Treatment of congenital Chagas' disease diagnosed and followed up by the polymerase chain reaction. Am J Trop Med Hyg. 1998;59:487-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-9392201300010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13. Blanco SB, Segura EL, Cura EN, Chuit R, Tuli&aacute;n L, Flores I, et al. Congenital transmission of <i>Trypanosoma cruzi </i>: an operational outline for detecting and treating infected infants in northwestern Argentina. Trop Med Int Health. 2000;5:293-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-9392201300010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>14. Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud (OPS), Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud. Tratamiento etiol&oacute;gico de la enfermedad de Chagas. Conclusiones de una consulta t&eacute;cnica. Washington DC. 1999. p. 1-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-9392201300010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>15. Lorca M, Thiermann E. Congenital Chagas disease and its serological diagnosis through conventional serology and methods of molecular biology. En: Erlich R, Nieto A, editores. Biology of parasitism. Montevideo: Ediciones Trilce; 1995. p. 160-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-9392201300010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>16. Cucunub&aacute; ZM, Fl&oacute;rez AC, C&aacute;rdenas A, Pav&iacute;a P, Montilla M, Aldana R, et al. Prevalence and risk factors for Chagas disease in pregnant women in Casanare, Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2012;87:837-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-9392201300010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17. Schijman AG, Altcheh J, Burgos JM, Biancardi M, Bisio M, Levin MJ, et al. Aetiological treatment of congenital Chagas' disease diagnosed and monitored by the polymerase chain reaction. J Antimicrob Chemother. 2003;52:441-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-9392201300010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>18. Virreira M, Torrico F, Truyens C, Alonso-Vega C, Solano M, Carlier Y, et al. Comparison of polymerase chain reaction methods for reliable and easy detection of congenital <i>Trypanosoma cruzi </i>infection. Am J Trop Med Hyg. 2003;68:574-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-9392201300010000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>19. Sturm NR, Degrave W, Morel C, Simpson L. Sensitive detection and schizodeme classification of <i>Trypanosoma cruzi </i>cells by amplification of kinetoplast minicircle DNA sequences: use in diagnosis of Chagas' disease. Mol Biochem Parasitol. 1989;33:205-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-9392201300010000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>20. Vallejo GA, Guhl F, Chiari E, Macedo AM. Species specific detection of <i>Trypanosoma cruzi </i>and <i>Trypanosoma rangeli </i>in vector and mammalian hosts by polymerase chain reaction amplification of kinetoplast minicircle DNA. Acta Trop. 1999;72:203-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-9392201300010000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>21. Pavia PX, Vallejo GA, Montilla M, Nicholls RS, Puerta CJ. Detection of <i>Trypanosoma cruzi </i>and <i>Trypanosoma rangeli </i>infection in triatomine vectors by amplification of the histone H2A/SIRE and the sno-RNA-C11 genes. Rev Inst Med Trop S&atilde;o Paulo. 2007;49:23-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-9392201300010000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>22. Gil J, Pav&iacute;a P, Montilla M, Florez AC, Quintero C, Mercado M, et al. Comparison of a PCR test based on the histone H2A/ SIRE genes with classical serological tests for the diagnosis of chronic Chagas disease in Colombian patients. Biom&eacute;dica. 2007;27:83-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-9392201300010000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>23. Piron M, Fisa R, Casamitjana N, L&oacute;pez-Chejade P, Puig L, Verg&eacute;s M, et al. Development of a real-time PCR assay for <i>Trypanosoma cruzi </i>detection in blood samples. Acta Trop. 2007;103:195-200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-9392201300010000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>24. Duffy T, Bisio M, Altcheh J, Burgos, JM, Diez M, et al. Accurate real-time PCR strategy for monitoring bloodstream parasitic loads in Chagas disease patients. Plos Neg Trop Dis. 2009;3:e419.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0123-9392201300010000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>25. Schijman AG, Bisio M, Orellana L, Sued M, Duffy T, Mejia AM et al. International study to evaluate PCR methods for detection of <i>Trypanosoma cruzi </i>DNA in blood samples from Chagas disease patients. PLoS Negl Trop Dis. 2011;5:e931 &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0123-9392201300010000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Duffy T, Cura CI, Ramirez JC, Abate T, Cayo NM, Parrado R, et al. Analytical performance of a multiplex Real-Time PCR assay using TaqMan probes for quantification of <i>Trypanosoma cruzi </i>satellite DNA in blood samples. PLoS Negl Trop Dis. 2013;7:e2000.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0123-9392201300010000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>27. Rosa R, Basmadji&aacute;n Y, Gonz&aacute;lez Murguiondo M, Gonz&aacute;lez Arias M, Salvatella R. Actualizaci&oacute;n cl&iacute;nico-epidemiol&oacute;gica y terap&eacute;utica de la enfermedad de Chagas en Uruguay. Rev Med Uruguay. 2001;17:125-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0123-9392201300010000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>28. Organizaci&oacute;n Panamericana de la salud (OPS). Estimaci&oacute;n cuantitativa de la enfermedad de Chagas en las Am&eacute;ricas. OPS. 2006;1-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0123-9392201300010000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>29. Moncayo A, Silveira A. Current epidemiological trends for Chagas disease in Latin America and future challenges in epidemiology, surveillance and health policy. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104(Suppl 1):17-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0123-9392201300010000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>30. Pavia PX, Montilla M, Fl&oacute;rez C, Herrera G, Ospina JM, Manrique F, et al. The first case of congenital Chagas' disease analyzed by AP-PCR in Colombia. Biom&eacute;dica. 2009;29:513-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0123-9392201300010000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>31. Orozco LC, Camargo D, Lopez MC, Duque S, Gualdron LE, C&aacute;ceres E, et al. Inmunodiagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n en humanos por <i>Trypanosoma cruzi </i>mediante Elisa utilizando sangre recolectada en papel de filtro. Biom&eacute;dica. 1999;19:164-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0123-9392201300010000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>32. Lopez MC, Duque S, Orozco LC, Camargo D, Gualdron LE, C&aacute;ceres E, et al. Inmunodiagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n chagasica por Elisa. Biom&eacute;dica. 1999;19:159-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0123-9392201300010000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>33. Freilij H, Muller L, Gonzalez Cappa SM. Direct micromethod for diagnosis of acute and congenital Chagas' disease. J Clin Microbiol. 1983;18:327-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0123-9392201300010000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>34. Duque S, Pelaez D, Corredor A. Cultivo in vitro de par&aacute;sitos de la familia Tripanosomatidae. Manual de Procedimientos. Bogot&aacute;: Editorial Instituto Nacional de Salud; 1993.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0123-9392201300010000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>35. Pavia P, Cuervo C, Montilla M, Nicholls RS, Puerta C. Dise&ntilde;o y estandarizaci&oacute;n de una prueba de PCR para la detecci&oacute;n espec&iacute;fica de <i>Trypanosoma cruzi </i>. Infectio. 2003;7:129-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0123-9392201300010000500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>36. Virreira M, Torrico F, Truyens C, Alonso-Vega C, Solano M, Carlier Y, et al. Comparison of PCR methods for the diagnosis of congenital <i>Trypanosoma cruzi </i>infection. 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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Estimation of the parasitemia in Trypanosoma cruzi human infection: high parasitemias are associated with severe and fatal congenital Chagas disease]]></article-title>
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