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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de muestras de orina para la detección molecular de enfermedades infecciosas. Aplicación en la identificación de citomegalovirus humano]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Molecular biology methods like Polimerase Chain Reaction (PCR) has been used for diagnosis of infectious diseases. Until today, the identification methods are based mainly on cultures and serology due to their sensibility and specificity, but they are expensive and time consuming. Urine samples constitute an alternative, noninvasive, method of obtaining DNA for the accomplishment of molecular Biology analysis. Methodology: implementation of a strategy to obtain DNA from urine samples. Samples were taken from children in daycare centers, to document the presence of inhibitors, PCR amplification of genes of human Cytomegalovirus (HCMV) was done. Results: In 27.1% of the analyzed samples, specific amplification for HCMV was demonstrated. No viral significant differences were found in the three layers, although it was present in the bands. Conclusion: The inhibitor absence was verified using PCR by amplificating the gene of the B-globine. A molecular methodology for the HCMV identification was standardized, which can be applied in prenatal diagnosis of congenital infection.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="3">    <p align="center"><b>An&aacute;lisis de muestras de orina para la detecci&oacute;n molecular de enfermedades infecciosas. Aplicaci&oacute;n en la identificaci&oacute;n de citomegalovirus humano</b></p></font> <font face="Verdana" size="2">    <p align="center"><b><i>Analysis of Urine Samples for the Molecular Detection of Infectious Diseases. Application to the Identification of Human Cytomegalovirus</i></b></p>     <p>Dora Fonseca*, Andr&eacute;s Guti&eacute;rrez†, Heidi Mateus†, Claudia Silva&sect;, Nora Contreras**, Alejandro Giraldo††</p>     <p>* Biol., MSc, Profesor Principal, Unidad de Gen&eacute;tica, Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad del Rosario. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:dfonseca@urosario.edu.co">dfonseca@urosario.edu.co</a>    <br> &dagger; Biol., MSc(c), Fundaci&oacute;n Arthur Stanley Gillow.    <br> &dagger; MD, MSc, Profesor Auxiliar, Unidad de Gen&eacute;tica, Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad del Rosario.    <br> &sect; Biol., MSc(c), Profesor Asistente, Unidad de Gen&eacute;tica, Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad del Rosario.    <br> ** Biol., MSc, Profesor Asistente, Unidad Gen&eacute;tica. Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad del Rosario.    <br> &dagger;&dagger; MD, MPh, Departamento de Medicina Interna, Facultad de Medicina e Instituto de Gen&eacute;tica, Universidad Nacional de Colombia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: agosto de 2005 Aceptado: agosto de 2005</p> <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p>La implementaci&oacute;n de metodolog&iacute;as de biolog&iacute;a molecular como la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), ha permitido la realizaci&oacute;n de diagn&oacute;sticos sensibles y espec&iacute;ficos para m&uacute;ltiples enfermedades, dentro de las cuales son de gran inter&eacute;s las infecciosas. Hasta hoy, los m&eacute;todos de identificaci&oacute;n se basan principalmente en cultivos y serolog&iacute;a por su sensibilidad y especificidad, pero consumen tiempo y dinero. Las muestras de orina se han constituido en una alternativa no invasiva de obtenci&oacute;n de ADN para la realizaci&oacute;n de an&aacute;lisis de biolog&iacute;a molecular.</p>     <p><b>Metodolog&iacute;a:</b> Implementaci&oacute;n de una estrategia para la obtenci&oacute;n de ADN a partir de muestras de orina. Las muestras fueron tomadas de ni&ntilde;os de guarder&iacute;a, para documentar la presencia o no de inhibidores de PCR a trav&eacute;s de la amplificaci&oacute;n de genes de Citomegalovirus humano (CMVH).</p>     <p><b>Resultados:</b> En el 27,1% de las muestras analizadas se evidenci&oacute; amplificaci&oacute;n espec&iacute;fica para CMVH, no se encontraron diferencias significativas en la presencia del virus en los tres estratos, pero s&iacute; en la intensidad de las bandas.</p>     <p><b>Conclusi&oacute;n:</b> Se verific&oacute; la ausencia de inhibidores de PCR mediante la amplificaci&oacute;n del gen de la B-globina. Se estandariz&oacute; una metodolog&iacute;a molecular para la identificaci&oacute;n de CMVH, la cual puede ser aplicada en diagn&oacute;stico prenatal de infecci&oacute;n cong&eacute;nita.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> citomegalovirus, ADN, infecci&oacute;n, diagn&oacute;stico, orina.</p>     <p><b>Abstract</b></p>     <p>Molecular biology methods like Polimerase Chain Reaction (PCR) has been used for diagnosis of infectious diseases. Until today, the identification methods are based mainly on cultures and serology due to their sensibility and specificity, but they are expensive and time consuming. Urine samples constitute an alternative, noninvasive, method of obtaining DNA for the accomplishment of molecular Biology analysis.</p>     <p><b>Methodology:</b> implementation of a strategy to obtain DNA from urine samples. Samples were taken from children in daycare centers, to document the presence of inhibitors, PCR amplification of genes of human Cytomegalovirus (HCMV) was done.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Results:</b> In 27.1% of the analyzed samples, specific amplification for HCMV was demonstrated. No viral significant differences were found in the three layers, although it was present in the bands.</p>     <p><b>Conclusion:</b> The inhibitor absence was verified using PCR by amplificating the gene of the B-globine. A molecular methodology for the HCMV identification was standardized, which can be applied in prenatal diagnosis of congenital infection.</p>     <p><b>Key words:</b> Cytomegalovirus infection, diagnosis, urine, inhibitors, extraction, DNA, Ethylene glycol.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Las t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular, ampliamente desarrolladas desde la descripci&oacute;n de la estructura del ADN por Watson y Crick en 1953, y la t&eacute;cnica de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) por Karry Mullis en 1986, han permitido la aplicaci&oacute;n en investigaci&oacute;n b&aacute;sica y diagn&oacute;stico cl&iacute;nico, por su mayor sensibilidad y especificidad. Este conocimiento molecular no s&oacute;lo se ha dirigido al an&aacute;lisis de enfermedades monog&eacute;nicas, sino ha incursionado en el campo de las enfermedades infecciosas permitiendo realizar diagn&oacute;sticos r&aacute;pidos que facilitan la toma de decisiones terap&eacute;uticas que disminuyen la morbi-mortalidad asociada a este tipo de entidades (1-4).</p>     <p>Un germen puede generar una enfermedad infecciosa que puede llegar a ser fatal. El hu&eacute;sped atacado puede defenderse de &eacute;l en forma total o parcial, seg&uacute;n el balance que se establezca entre la patogenicidad del germen y la eficacia de la respuesta inmunitaria del hu&eacute;sped. Algunas bacterias, virus, hongos y par&aacute;sitos poseen una patogenicidad intr&iacute;nseca, de tal magnitud, que les permite inducir la enfermedad pr&aacute;cticamente a cualquier individuo (5).</p>     <p>El diagn&oacute;stico de las enfermedades infecciosas se ha abordado teniendo en cuenta cuatro posibilidades: 1) la detecci&oacute;n directa del pat&oacute;geno (microscopio y/o cultivo); 2) la detecci&oacute;n de las prote&iacute;nas de los pat&oacute;genos con la ayuda de anticuerpos espec&iacute;ficos (Elisa); 3) La detecci&oacute;n espec&iacute;fica de anticuerpos IgA, IgM, IgG dirigidos contra un pat&oacute;geno determinado; 4) La detecci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos de los pat&oacute;genos a trav&eacute;s de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) (6).</p>     <p>Debido a su gran sensibilidad, la t&eacute;cnica de PCR se ha convertido en una herramienta potencial para la identificaci&oacute;n de infecciones por diferentes pat&oacute;genos, con miras a ofrecer un tratamiento r&aacute;pido y efectivo en los pacientes afectados. Se ha documentado la aplicaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular en el an&aacute;lisis de diferentes muestras como l&iacute;quido amni&oacute;tico, sangre, humor v&iacute;treo, orina, en b&uacute;squeda de infecciones como toxoplasmosis cong&eacute;nita, infecci&oacute;n con <i>mycobacterium</i>, <i>Chlamydia trachomatis</i>, entre otras, que ofrecen ventajas tales como rapidez, sensibilidad y especificidad frente a los m&eacute;todos convencionales de cultivo y serolog&iacute;a (4, 6-9).</p>     <p>La orina se ha constituido en una importante fuente de obtenci&oacute;n de ADN para la identificaci&oacute;n de varias enfermedades infecciosas, y ha sido ampliamente utilizada en el diagn&oacute;stico de <i>Chlamydia trachomatis</i>, en hombres y mujeres, proporcionando una alternativa de toma de muestra por m&eacute;todos no invasivos (8). La sensibilidad y especificidad de las t&eacute;cnicas de PCR han sido evaluadas en tamizajes para infecciones genitales de <i>Chlamydia</i>, y al compararse con m&eacute;todos inmunoenzim&aacute;ticos convencionales han indicado una alta y espec&iacute;fica detecci&oacute;n del pat&oacute;geno en la orina, por lo que &eacute;sta se convierte en una herramienta confiable para este tipo de diagn&oacute;sticos (8, 10, 11).</p>     <p>Otras enfermedades infecciosas, como la producida por el <i>Citomegalovirus humano</i>, son de gran importancia cl&iacute;nica y han usado como fuente de extracci&oacute;n de ADN muestras de orina. El <i>Citomegalovirus humano</i> (CMVH) es el virus m&aacute;s grande de la familia Herpesviridae (1).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Epidemiol&oacute;gicamente el virus existe en todo el mundo y al parecer el &uacute;nico reservorio es el hombre (12), tiene como caracter&iacute;stica que se excreta durante meses o a&uacute;n a&ntilde;os antes de volverse latente, sobre todo en las infecciones cong&eacute;nitas, perinatales y posnatales tempranas. Frecuentemente se sufren reactivaciones con reaparici&oacute;n de la excreci&oacute;n del virus aunque tambi&eacute;n se pueden producir reinfecciones con cepas antig&eacute;nicamente diferentes (13).</p>     <p>La transmisi&oacute;n puede ser vertical u horizontal; en el primer caso hay tres rutas posibles: prenatal (0,2%-2,2%), perinatal durante el parto (virus en el tracto genital), y por alimentaci&oacute;n al seno (leche materna frecuentemente infectada con el virus) (1). En el caso de la transmisi&oacute;n horizontal, &eacute;sta se puede adquirir de persona a persona (requiere un contacto muy cercano) o por transfusiones de sangre u &oacute;rganos transplantados (2, 14, 15).</p>     <p>El cuadro m&aacute;s frecuente de la infecci&oacute;n con CMVH consiste en la presencia de petequias, hepatoesplenomegalia e ictericia, y microcefalia, prematurez, hernia inguinal y coriorretinitis; se ha reportado alg&uacute;n tipo de autismo (16). Los pacientes susceptibles de sufrir enfermedad sintom&aacute;tica son los fetos en desarrollo, los inmunosuprimidos, y los receptores de &oacute;rganos transplantados (17-20).</p>     <p>Existen diferentes m&eacute;todos diagn&oacute;sticos de la infecci&oacute;n activa por CMVH, pero las t&eacute;cnicas de la biolog&iacute;a molecular han representado una estrategia diagn&oacute;stica r&aacute;pida y sensible que gracias a la amplificaci&oacute;n de segmentos espec&iacute;ficos del ADN viral, permiten su detecci&oacute;n en diferentes tipos de muestras como orina, l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo, l&iacute;quido amni&oacute;tico, leche materna y otros. El proceso de amplificaci&oacute;n se realiza de un gen que por su funci&oacute;n est&aacute; altamente conservado en el genoma viral, garantizando de esta forma que no se presenten resultados falsos negativos, o cruzados con especies afines. La aplicaci&oacute;n de esta detecci&oacute;n mediante m&eacute;todos moleculares ha permitido realizar diagn&oacute;stico prenatal en gestantes con evidencia inmunol&oacute;gica de infecci&oacute;n activa, proceso que permite instaurar terapia que evite o aten&uacute;e la infecci&oacute;n cong&eacute;nita; as&iacute; mismo, esta metodolog&iacute;a ha permitido el monitoreo del efecto de medicamentos en la disminuci&oacute;n de la secreci&oacute;n viral en pacientes con infecci&oacute;n adquirida por inmunosupresi&oacute;n o transplante (18, 21-24).</p>     <p>A pesar de las importantes ventajas del uso de orina como fuente de ADN para realizar estudios moleculares de enfermedades infecciosas, tambi&eacute;n se ha documentado la presencia de m&uacute;ltiples inhibidores que pueden llevar a resultados falsos negativos, por lo que es necesario estandarizar metodolog&iacute;as que permitan la remoci&oacute;n de estas sustancias que afectan los procesos de amplificaci&oacute;n, dentro de las cuales se destacan los cristales, la hemoglobina y la presencia de hormonas como la beta gonadotrofina cori&oacute;nica, entre otros (25, 26).</p>     <p>El presente trabajo tuvo como objetivo la implementaci&oacute;n de diferentes metodolog&iacute;as de extracci&oacute;n de ADN a partir de muestras de orina obtenidas de ni&ntilde;os de guarder&iacute;a de tres estratos socioecon&oacute;micos, para evaluar la presencia de inhibidores mediante su amplificaci&oacute;n con genes espec&iacute;ficos que identifican la presencia de Citomegalovirus humano.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Universo de estudio</b></p>     <p>Previa explicaci&oacute;n verbal del objeto del presente estudio a los padres y el diligenciamiento del consentimiento informado, se recolectaron muestras de orina de 96 ni&ntilde;os con edades comprendidas entre 1 y 3 a&ntilde;os procedentes de guarder&iacute;as infantiles de tres estratos socioecon&oacute;micos (alto, medio y bajo) de la ciudad de Bogot&aacute;. Del estrato bajo se cont&oacute; con la colaboraci&oacute;n de dos guarder&iacute;as de barrios de la Localidad 19 (Ciudad Bol&iacute;var). Del estrato medio colaboraron dos guarder&iacute;as de barrios de la Localidad 2 (Chapinero). Y del estrato alto se tuvieron dos guarder&iacute;as de dos barrios de la Localidad 1 (Usaqu&eacute;n). Se recolectaron 10 ml de orina en recipientes pl&aacute;sticos usados comercialmente para tal fin; la muestra fue mantenida en condiciones de refrigeraci&oacute;n mediante uso de cubetas refrigerantes en cajas de poliestireno hasta su traslado al laboratorio de la Fundaci&oacute;n Gillow. A todas las muestras se les realiz&oacute; parcial de orina, para verificar presencia de hemoglobina, cristales u otros metabolitos que pudieran interferir con la t&eacute;cnica de PCR. Posteriormente fueron centrifugadas a 2500 rpm por 10 minutos. Del sobrenadante obtenido, se tomaron 1,5 ml que fueron congelados de 24 a 48 horas para el an&aacute;lisis posterior.</p>     <p><b>Extracci&oacute;n de ADN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dado que la orina es un fluido caracterizado por poseer muchos inhibidores de la PCR, se evaluaron diferentes metodolog&iacute;as con el fin de eliminar de las muestras la hemoglobina, el exceso de &uacute;rea, cristales y dem&aacute;s part&iacute;culas del sedimento. Dentro de las estrategias utilizadas se evaluaron los m&eacute;todos de extracci&oacute;n directa mediante centrifugaci&oacute;n (27), extracci&oacute;n directa mediante ebullici&oacute;n (28), extracci&oacute;n mediante t&eacute;cnica “salting out” (29), y extracci&oacute;n con tratamiento con polietilenglicol (30).</p>     <p><b>Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa</b></p>     <p>Para la detecci&oacute;n de CMVH en las muestras analizadas se emple&oacute; un par de primers que amplifican selectivamente una porci&oacute;n del gen que codifica para la glicoprote&iacute;na H. Para cada mezcla de reacci&oacute;n se utilizaron 200 ng de ADN en 10 ul, 5 ul de buffer 10X, 2 ul de cada uno de los primers (10 pm/ul), 4 ul de MgCl2 (50 mM), 4ul de dNTP (4 mM) y 1,5 U de Taq ADN polimerasa; los vol&uacute;menes finales de reacci&oacute;n se completaron a 50 ul con agua MQ. Para la detecci&oacute;n del gen de la B-globina se emplearon primers espec&iacute;ficos descritos en la literatura.</p>     <p>Las mezclas de reacci&oacute;n fueron llevadas a un termociclador Perkin Elmer 2400 y fueron sometidas a desnaturalizaci&oacute;n inicial por 5 minutos a 95 &ordm;C, 35 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n parcial a 94 &ordm;C x 1 minuto, alineaci&oacute;n a 60 &ordm;C x 1 minuto, extensi&oacute;n a 72 &ordm;C x 1 minuto y extensi&oacute;n final a 72 &ordm;C por 10 minutos.</p>     <p>Los productos amplificados fueron analizados en el transiluminador mediante visualizaci&oacute;n directa de geles de poliacrilamida al 12% te&ntilde;idos con bromuro de etidio. Se concluy&oacute; la presencia del virus en los productos amplificados que evidenciaron se&ntilde;al positiva de 225 pb; as&iacute; mismo, las se&ntilde;ales analizadas fueron clasificadas seg&uacute;n su intensidad como d&eacute;biles, n&iacute;tidas e intensas, tomando como punto de referencia las amplificaciones de controles positivos correspondientes a neonatos con evidencia cl&iacute;nico- serol&oacute;gica de infecci&oacute;n. Como control negativo de PCR se us&oacute; una mezcla de reacci&oacute;n que conten&iacute;a agua en lugar de ADN.</p>     <p>Para realizar el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se utiliz&oacute; el an&aacute;lisis de Ji-cuadrado (2 grados de libertad y a: 0,05) para ver si exist&iacute;an o no diferencias significativas de infecci&oacute;n por CMVH en los tres estratos socioecon&oacute;micos analizados; as&iacute; mismo, mediante el test de Fisher (a= 0,05 de una sola cola) se estableci&oacute; la comparaci&oacute;n de la intensidad de las bandas en las muestras positivas de los tres grupos analizados.</p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de presencia de inhibidores de PCR en orina:</b> la presencia de sustancias que interfieren con la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa fue evaluada mediante la amplificaci&oacute;n del gen de la B-globina y del gen de la glicoprote&iacute;na H del CMVH en 96 muestras de orina obtenidas de ni&ntilde;os de guarder&iacute;a en Bogot&aacute;. Se consider&oacute; como ausencia de inhibidores el ADN extra&iacute;do de orina que tuvo amplificaci&oacute;n exitosa en el 100% de los casos para la B-globina. La metodolog&iacute;a de congelaci&oacute;n de la muestra por 48 horas, seguida de tratamiento con polietilenglicol al 20% y NaCl 2M, mostr&oacute; los mejores resultados, por lo que fue considerada la &oacute;ptima para este tipo de an&aacute;lisis.</p>     <p><b>Aplicaci&oacute;n en la determinaci&oacute;n de CMVH en muestras de ADN obtenidas de orina:</b> del total de los 96 ni&ntilde;os estudiados se obtuvo banda positiva de amplificaci&oacute;n de 225 pb, y correspondiente al gen de la glicoprote&iacute;na H en 26 muestras, lo que corresponde a un &iacute;ndice de positividad de 27,1% (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>     <p><a name="f1"></a>Figura 1. Productos amplificados del gen de la Glicoprote&iacute;na H de CMVH en orina. (Gel de Poliacrilamida al 12%, te&ntilde;ido con Bromuro de Etidio). Carriles: 1. Patr&oacute;n de peso molecular PBR322 HAE III. 2-7. Banda de 225 pb, amplificaci&oacute;n positiva en muestras de orina. 8. Control negativo. 9. Control positivo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><img src="img/revistas/recis/v3n2/v3n2a4f1.jpg"></p>     <p><b>Presencia de CMVH seg&uacute;n el estrato socioecon&oacute;mico:</b> las muestras positivas para la amplificaci&oacute;n fueron clasificadas seg&uacute;n el estrato socioecon&oacute;mico de los ni&ntilde;os de quienes fueron aisladas, encontr&aacute;ndose para el estrato bajo una positividad de 31,25%, para el medio 28,13% y para el alto 21,88% (<a href="#t1">tabla 1</a> y <a href="#f2">figura 2</a>).</p>     <p><a name="t1"></a>Tabla 1. &Iacute;ndice de positividad seg&uacute;n estrato socioecon&oacute;mico.</p>     <p><img src="img/revistas/recis/v3n2/v3n2a4t1.jpg"></p>     <p><a name="f2"></a>Figura 2. Porcentaje de muestras positivas seg&uacute;n estrato socioecon&oacute;mico.</p>     <p><img src="img/revistas/recis/v3n2/v3n2a4f2.jpg"></p>     <p><b>Determinaci&oacute;n de la intensidad de las bandas de amplificaci&oacute;n</b></p>     <p>La se&ntilde;al que se obtuvo en los casos positivos se clasific&oacute; de acuerdo con su intensidad en tres categor&iacute;as: d&eacute;bil, n&iacute;tida e intensa, tomando como punto de referencia las amplificaciones de los controles positivos correspondientes a neonatos con evidencia cl&iacute;nico-serol&oacute;gica de infecci&oacute;n. La mayor cantidad de casos positivos se observ&oacute; en el estrato bajo, con un total de diez casos, en el estrato medio no se observaron se&ntilde;ales n&iacute;tidas y el estrato alto no present&oacute; se&ntilde;ales intensas (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>     <p><a name="f3"></a>Figura 3. Porcentaje de positividad seg&uacute;n intensidad de bandas y estrato socioecon&oacute;mico.</p>     <p><img src="img/revistas/recis/v3n2/v3n2a4f3.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico:</b> para establecer la frecuencia de infecci&oacute;n por CMVH se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de Ji-cuadrado (<i>&Chi;</i><sup>2</sup>) para diferencia de proporciones, partiendo de la hip&oacute;tesis nula Ho:</p>     <p>P1 = P2 =P3 y H1 = P1 &ne; P2 &ne; P3 a= 0,05.</p>     <p>SE&Ntilde;ALES :</p>     <p>P1: proporci&oacute;n de positivos del estrato bajo, 10/32= 31,25%</p>     <p>P2: proporci&oacute;n de positivos del estrato medio, 9/32 = 28,125%</p>     <p>P3: proporci&oacute;n de positivos del estrato alto, 7/32 = 21,875%</p>     <p>El X<sup>2</sup> con dos grados de libertad: 0,74, corresponde al valor de P= 0,691266</p>     <p>De acuerdo con lo anterior, no se puede rechazar la hip&oacute;tesis de las proporciones, por lo que se debe aceptar que P1 y P2 son sustancialmente iguales.</p>     <p>Adicionalmente, se analizaron los estratos bajo y alto de acuerdo con la H0: P1 = P3 y H1: P1 &ne; P3.</p>     <p>El X<sup>2</sup> con un grado de libertad = 0,72 corresponde al valor de P = 0,3958, por lo que tampoco se puede rechazar la H0; se concluye entonces que no hay diferencia significativa entre los dos estratos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico seg&uacute;n intensidad de las bandas:</b> si se asume que la intensidad de la se&ntilde;al puede ser un reflejo de la intensidad de la viruria, entonces se propone analizar la relaci&oacute;n entre las dos categor&iacute;as (n&iacute;tida, intensa) en los diferentes estratos:</p>     <p>Estrato bajo: 9/32 = 28,12%    <br> Estrato medio: 2/32 = 6,25%    <br> Estrato alto: 2/32 = 6,25%</p>     <p>El an&aacute;lisis de bandas n&iacute;tidas o intensas con respecto a las d&eacute;biles en los tres grupos se realiz&oacute; con el Test de Fisher, por la obtenci&oacute;n de valores menores de 5, encontr&aacute;ndose un valor P con una sola cola = 0,048 &lt; 0,05= Rechazo Ho si hay diferencia. a= 0,05. Ho= P1 = P2 = P3 H1 = P1 &ne; P3.</p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>Los problemas de inhibici&oacute;n de PCR se han documentado principalmente en algunos espec&iacute;menes cl&iacute;nicos como orina y muestras cervicales, esos inhibidores fueron evidentes cuando algunas muestras que resultaron positivas en cultivos (considerado el “gold est&aacute;ndar”) resultaron negativos en PCR (26). Estas observaciones hicieron necesaria la implementaci&oacute;n de metodolog&iacute;as, principalmente en la extracci&oacute;n de ADN, que evitaran los resultados falsos negativos. Los porcentajes de inhibidores de PCR en orina se han cuantificado como de 1,8% (mujeres) a 2,6% (hombres y mujeres), esos porcentajes de inhibidores son mayores en espec&iacute;menes cervicales, con valores de hasta 19% (26).</p>     <p>Varias estrategias se han seguido para la remoci&oacute;n o reducci&oacute;n de inhibidores, dentro de las que se encuentran la realizaci&oacute;n de diluciones de las muestras de orina, la ebullici&oacute;n, el congelamiento y el tratamiento con sales saturadas. En el presente estudio se implementaron varias metodolog&iacute;as en el proceso de extracci&oacute;n de ADN, como la ebullici&oacute;n directa, en la que el sometimiento a altas temperaturas s&oacute;lo lograba una ruptura de membranas para la liberaci&oacute;n directa del ADN, sin lograr la remoci&oacute;n de los inhibidores inherentes a las muestras, como cristales y hormonas, ni de las prote&iacute;nas asociadas al ADN, esto debido a la ausencia de tratamiento con enzimas proteol&iacute;ticas como la proteinasa K. Este hallazgo se correlaciona con estudios previos que han indicado que el tratamiento con calor (95 &ordm;C) reduce inhibidores en tan s&oacute;lo un 9,3% (31). Mohoney et al., reportaron previamente una gran remoci&oacute;n de inhibidores del ADN obtenido de orina a trav&eacute;s del almacenamiento de las muestras durante toda la noche a bajas temperaturas, y una diluci&oacute;n posterior a 1:10. Teniendo en cuenta esta observaci&oacute;n, en el presente trabajo se realiz&oacute; congelamiento de las muestras por 24 horas, y diluci&oacute;n posterior, sin obtener amplificaci&oacute;n en todos los casos para el gen B-globina, quiz&aacute;s no por la presencia de inhibidores sino por una inefectiva recuperaci&oacute;n de todo el ADN en las muestras diluidas dada por la disminuci&oacute;n de blancos de amplificaci&oacute;n que potencialmente podr&iacute;an ser reconocidos por los primers utilizados.</p>     <p>De los protocolos analizados se obtuvieron los mejores resultados cuando la orina fue sometida a congelaci&oacute;n por 48 horas, seguida por tratamiento con polietilenglicol al 20% y NaCl 2M. El efecto de la temperatura fue quiz&aacute; directo hacia la ruptura de membranas de las bacterias y da&ntilde;o de los cristales presentes en la orina, dos inhibidores fuertemente asociados a este tipo de muestras. El efecto inhibitorio de los cristales ha sido asociado a las sales que contienen cationes divalentes, particularmente iones magnesio, los cuales tienen un efecto significativo sobre la actividad de la Taq polimerasa.</p>     <p>Alternativamente, la congelaci&oacute;n act&uacute;a sobre inhibidores l&aacute;biles de tipo proteico, induciendo cambios conformacionales y la subsecuente p&eacute;rdida de la actividad inhibidora. El uso de polietilenglicol conduce a da&ntilde;o de las membranas celulares, facilitando la liberaci&oacute;n del ADN. El cloruro de sodio concentrado es rutinariamente utilizado en la t&eacute;cnica de extracci&oacute;n de ADN conocida como “salting out”, y cumple su funci&oacute;n adhiri&eacute;ndose preferencialmente a las membranas degradadas por el efecto de la temperatura y el polietilenglicol, por lo que luego de centrifugaciones subsecuentes el ADN es f&aacute;cilmente liberado.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La importancia de remoci&oacute;n de inhibidores de PCR en orina radica en la posibilidad del uso de este tipo de muestras no invasivas en el diagn&oacute;stico de enfermedades infecciosas, por ello, una vez se determin&oacute; el mejor m&eacute;todo para tratar estas muestras, se realiz&oacute; aplicaci&oacute;n en la detecci&oacute;n de CMV.</p>     <p>El CMVH es el mayor herpes virus humano y s&oacute;lo existe un serotipo. La orina constituye una fuente importante de infecci&oacute;n en ni&ntilde;os y el pat&oacute;geno puede diseminarse en las embarazadas a trav&eacute;s de la sangre, para infectar la placenta y el feto. Muchas veces en la leche materna se encuentran peque&ntilde;as cantidades del virus, aunque tal hecho tiene significado dudoso respecto a la transmisi&oacute;n. La investigaci&oacute;n sobre la transmisi&oacute;n y prevalencia de CMVH se hace importante debido a la alta prevalencia de infecciones por este virus en algunas poblaciones, y a que &eacute;stas, en un porcentaje superior al 99%, no son cl&iacute;nicamente aparentes. Tambi&eacute;n porque se producen infecciones cr&oacute;nicas y latentes. Es claro que este pat&oacute;geno es una causa significativa de morbilidad y mortalidad en el feto, en el reci&eacute;n nacido y actualmente en los pacientes inmunocomprometidos.</p>     <p>El diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por CMVH en ni&ntilde;os y adultos, inmunosuprimidos o no, requiere una confirmaci&oacute;n de laboratorio y no puede hacerse s&oacute;lo bas&aacute;ndose en la cl&iacute;nica. Se requiere por lo tanto de un diagn&oacute;stico r&aacute;pido y simple que permita una detecci&oacute;n oportuna del virus. El CMVH no puede hacerse crecer f&aacute;cilmente en ning&uacute;n animal de experimentaci&oacute;n, aunque se ha logrado cultivar con &eacute;xito en fibroblastos humanos. Sin embargo, el tiempo necesario para el desarrollo de su efecto citop&aacute;tico puede estar entre 1 y 4 semanas, constituy&eacute;ndose este lapso en una gran desventaja.</p>     <p>Recientemente la t&eacute;cnica de PCR ha sido utilizada como un m&eacute;todo m&aacute;s sensible y r&aacute;pido para la detecci&oacute;n de CMVH en orina y muestras de sangre. Esta t&eacute;cnica tiene la ventaja de poder detectar la presencia del virus a partir de una peque&ntilde;a cantidad de muestra de orina que puede ser a&ntilde;adida directamente a la mezcla de PCR sin previa purificaci&oacute;n del ADN viral (27, 32).</p>     <p>En los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha venido registrando un incremento en la prevalencia de la infecci&oacute;n por CMVH en los ni&ntilde;os en edad preescolar debido especialmente a que muchos de &eacute;stos asisten a guarder&iacute;as o jardines infantiles. La transmisi&oacute;n en estos centros puede deberse a la excreci&oacute;n de CMVH en orina (30).</p>     <p>En el presente estudio se analizaron un total de 96 muestras de orina de ni&ntilde;os entre 1 y 3 a&ntilde;os de edad. Teniendo en cuenta que &eacute;ste es un grupo considerado como de alto riesgo de sufrir la infecci&oacute;n por CMVH (33), y que el estrato socioecon&oacute;mico es un factor determinante del riesgo de infecci&oacute;n por CMVH (34), se escogieron al azar seis guarder&iacute;as de tres estratos socioecon&oacute;micos diferentes en la ciudad de Bogot&aacute;.</p>     <p>De las 96 muestras analizadas por PCR 26 fueron positivas, lo que representa un 27,1%, encontr&aacute;ndose la mayor positividad para el estrato bajo con un 31,25%, y la m&aacute;s baja para el estrato alto con un 21,87%. Shen realiz&oacute; un estudio en el cual analiz&oacute; 103 ni&ntilde;os y compar&oacute; la tasa de infecci&oacute;n en centros de cuidado diario de estratos socioecon&oacute;micos alto y bajo, encontrando que en un 80% la positividad estaba referida al estrato socioecon&oacute;mico bajo (34).</p>     <p>Es importante tener en cuenta que, en muchos casos, las condiciones de aseo y salubridad brindan un ambiente propicio para la diseminaci&oacute;n del virus y de otras infecciones. En estos centros, los juguetes pueden pasar de un ni&ntilde;o a otro sin un previo aseo o desinfecci&oacute;n, adem&aacute;s, los ni&ntilde;os de estas edades se hallan en fase de desarrollo oral, lo que indudablemente aumenta el riesgo de infecci&oacute;n (30, 33).</p>     <p>Adicionalmente se analiz&oacute; la intensidad de la banda, ya que es posible que &eacute;sta refleje el nivel de viruria; es decir, a mayor intensidad de la banda, mayor cantidad de virus en la muestra.</p>     <p>El 50% de las muestras positivas constituyen bandas de intensidad d&eacute;bil, 30,7% de intensidad n&iacute;tida y 19,2% de nivel intenso. Esto nos lleva a asumir que las muestras positivas ten&iacute;an una baja cantidad de virus. El menor porcentaje, sin embargo, se presenta en el estrato medio donde no hubo aparici&oacute;n de ninguna banda n&iacute;tida, mientras que con banda d&eacute;bil se obtuvo un 21,8% de positividad.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El estrato alto no present&oacute; amplificaci&oacute;n con banda intensa y el porcentaje de muestras con banda d&eacute;bil y n&iacute;tida fue relativamente bajo lo cual, en comparaci&oacute;n con el estrato bajo, hace presumir que aunque aqu&iacute; se presenta la infecci&oacute;n, la transmisi&oacute;n puede ser menor.</p>     <p>De acuerdo con el an&aacute;lisis estad&iacute;stico realizado (<i>&Chi;</i><sup>2</sup>), la comparaci&oacute;n entre los tres estratos (p=0,69 con 2GL) no muestra una diferencia significativa entre &eacute;stos. Adicionalmente, se analizaron en forma conjunta los estratos alto y bajo, en donde tampoco se presentaron diferencias significativas (p=0,39 con 1GL). Contrario a lo reportado por Shen, en nuestro estudio no se obtuvo diferencia significativa entre los tres estratos. Esto se puede explicar debido a que en una guarder&iacute;a infantil de un determinado estrato socioecon&oacute;mico se pueden encontrar ni&ntilde;os con diferentes capacidades econ&oacute;micas, estados nutricionales y otros factores que promueven la infecci&oacute;n (34).</p>     <p>Gracias a la alta sensibilidad de esta metodolog&iacute;a (100%) para la identificaci&oacute;n del CMVH (35), puede ser implementada como m&eacute;todo de tamizaje en neonatos con el objetivo de identificar a aquellos pacientes que presentan infecci&oacute;n cong&eacute;nita por CMVH para poder brindarles un manejo encaminado a la prevenci&oacute;n y correcci&oacute;n inmediata de posibles secuelas de la enfermedad, como lo son el compromiso del sistema nervioso central y la sordera. Esta aproximaci&oacute;n al estudio de biolog&iacute;a molecular del CMVH nos permite delinear estrategias apropiadas para el an&aacute;lisis de este pat&oacute;geno en otro tipo de muestras, con lo que podremos ofrecer una alternativa diagn&oacute;stica en los pacientes en quienes la infecci&oacute;n viral es causa de mortalidad. T&eacute;cnicas m&aacute;s actuales como la PCR en tiempo real deben ser implementadas para lograr la sensibilidad y especificidad requerida para este tipo de an&aacute;lisis.</p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>Los resultados obtenidos en el presente estudio utilizando el m&eacute;todo cualitativo de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) demostraron que la infecci&oacute;n por Citomegalovirus humano puede ser detectada en personas asintom&aacute;ticas que porten grandes cantidades de carga viral.</p>     <p>Qued&oacute; demostrado que el fluido urinario con previo tratamiento en congelamiento por 48 horas, el y uso de polietilglicol al 20% y NaCL 2M es una muestra apta para la detecci&oacute;n de pat&oacute;genos como el CMVH.</p>     <p>El an&aacute;lisis realizado determin&oacute; que la frecuencia de CMVH es com&uacute;n entre ni&ntilde;os de guarder&iacute;a, pero no se encontr&oacute; una diferencia significativa en la prevalencia del agente infeccioso en los estratos bajo, medio y alto.</p>     <p>Existe una marcada diferencia en la intensidad de las bandas entre los estratos bajo y alto, la cual puede estar relacionada con la cantidad de virus presente en la muestra.</p>     <p>Se evidenci&oacute; que la PCR puede servir como prueba diagn&oacute;stica cualitativa en personas que presenten infecci&oacute;n activa por CMVH, aunque se reitera que es necesario implementar metodolog&iacute;as como PCR tiempo real que permitan dar mejores conclusiones respecto a concentraci&oacute;n viral en muestras de orina.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los autores expresan su agradecimiento a la Fundaci&oacute;n Arthur Stanley Gillow, quien financi&oacute; en su totalidad este trabajo de investigaci&oacute;n, y a las directivas, alumnos y padres de familia asociados con las guarder&iacute;as que permitieron la toma de muestras de orina.</p>     <p><b>Conflicto de intereses:</b> los autores declaran que no tienen intereses de ning&uacute;n tipo con las empresas comerciales que puedan beneficiarse de la presente investigaci&oacute;n. Esta investigaci&oacute;n fue financiada con fondos de la Fundaci&oacute;n Arthur Stanley Gillow, organismo privado sin &aacute;nimo de lucro, que posee y genera sus propios fondos, de acuerdo con las normas legales vigentes.</p> <hr>     <p><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p>1. Yasuda A, Kimura H, Hayakawa M, Oshiro M, Kato Y, Matsuura et al. Evaluation of Cytomegalovirus infections transmited via breast milk in preterm infants with a Real-Time Polymerase chain reaction assay. Pediatrics 2003;111(6):1333-1335.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1692-7273200500020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Demmler GJ, Buffone GJ, Schimbor CM, May RA. Detection of Cytomegalovirus in urine from newborns by using polimerase chain reaction ADN amplification. J Infect Dis 1998;158(6):1177-1184.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1692-7273200500020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Schlesinger Y, Halle D, Eidelman A et al. Urine polymerasa Chain Reaction as a screening tool for the detection of congenital cytomegalovirus infection. Arch Dis Child Fetal Neon Ed. 2003; 88:F371-374.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1692-7273200500020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Mahony J, Luinstra K, Sellors J, Jang D, Chernesky M. Confirmatory Polymerase Chain Reaction Testing for Chlamydia trachomatis in first void urine from asymptomatic and symptomatic men. J Clin Microbiol 1992;30(9):2241-2245.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1692-7273200500020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Rojas W. Mecanismos de defensa contra infecciones microbianas. 5 ed. Corporaci&oacute;n para Investigaciones Biol&oacute;gicas; 1996.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S1692-7273200500020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Reischi U. Application of molecular Biology-based methods to the diagnosis of infectious diseases. Frontiers of Bioscience 1996; e72-77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S1692-7273200500020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Chernesky M, Jang D, Chong S, Sellors J, Mahony J. Impact of urine collection order on the ability of assays to identify chlamydia trachomatis in men. Sexually Transmitted diseases 2003;30(4):345-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S1692-7273200500020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Templeton K, Roberts J, Jeffries D, Forster G, Aitken C. The detection of Chlamydia trachomatis by DNA amplification methods in uirne samples from men with urethritis. International Journal of STD and AIDS 2001;12(12):793-796.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S1692-7273200500020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Giraldo A, Fonseca D, Lozano F, Orjuela J, Guti&eacute;rrez A, Ruiz I. Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa para la detecci&oacute;n de Toxoplasma gondii: hallazgos en 534 casos estudiados en la Fundaci&oacute;n Gillow. Revista Colombiana de Ginecolog&iacute;a y Obstetricia 2001;4(2):44-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S1692-7273200500020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Harindra V, Underhill G, Tobin J. Screening for genital chlamydia infection: DNA amplification techniques should be the test of choice. International Journal of STD and AIDS 2003;14(11):723-726.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S1692-7273200500020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Martinez A. Diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico de Chlamydia trachomatis: estado actual de un problema. Rev Chil Infectol 2001;18(4).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S1692-7273200500020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Weller TH. The cytomegaloviruses: ubiquitous agents with protean clinical manifestations I. N Engl J Med 1971;285(4):203-214.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S1692-7273200500020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Shen CY, Chang WW, Chang SF, Chao MF, Huanng ES, Wu CW. Seroepidemiology of Cytomegalovirus infection among children between the ages of 4 and 12 years in Taiwan. J Med Virol 1992;37(1):72-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S1692-7273200500020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Nelson CT, Demmler GJ. Cytomegalovirus infection in the pregnant mother, fetus, and Newborn Infant. Clin Perin 1997;24 (1):151-159.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S1692-7273200500020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Lipitz S, Achiron R, Zalel Y. Outcome of pregnancies with vertical transmission of primary cytomegalovirus infection. Obst Gyn 2002;100(3):428-433.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S1692-7273200500020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sweeten TL, Posey DJ, McDougle CJ. Brief report: autistic disorder in three children with cytomegalovirus infection. J Autism Dev Disord 2004;34(5):583-586.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S1692-7273200500020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Maschmann J, Hamprecht K. Cytomegalovirus infection of extremely low birth weigth infants via breast milk. Clin Infect. Dis 2001;33(12):1998-2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S1692-7273200500020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Yoshida A, Hitomi S, Fukui T. Diagnosis and monitoring of human Cytomegalovirus disease in patients with human immunodeficiency virus infection by use of a real time PCR. Clin Infect Dis 2001;33(10):1756-1761.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S1692-7273200500020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Priparien H, Hockerstedt K. Monitoring of viral load by quantitative plasma PCR during active cytomegalovirus infection of individual liver transplant patients. J Clin Microbiol 2002;40(8):2945-2952.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S1692-7273200500020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Jaber S, Chanques G, Borry J, Souche B, Verdier R, Perrigault PF et al. Cytomegalovirus Infection in Critically Ill Patients: Associated Factors and Consequences. Chest. 2005;127(1):233-241.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S1692-7273200500020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Grose C, Meehan T, Weiner CP. Prenatal diagnosis of congenital Cytomegalovirus infection by virus isolation after amniocentesis. Pediatr Infect Dis J. 1992;11(8):605-607.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S1692-7273200500020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Nicolini U, Kustermann A, Tassis B, Fogliani R, Galimberti A, Percivalle E et al. Prenatal diagnosis of congenital human cytomegalovirus infection. Prenat Diagn. 1994;14(10):903-906.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S1692-7273200500020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Calvario A, Bozzi A, Ventola C. Herpes consensus PCR test: a useful diagnostic approach to the screening of viral disease of the central nervous system. J Clin Virol. 2002;suppl:71-78.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S1692-7273200500020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Yamamoto AY, Mussi Pinhata M, Pinto P. Usefulness of blood and urine samples collected on filter paper in detecting cytomegalovirus by PCR technique. J Virol Meth. 2001;97(1):159-164.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S1692-7273200500020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Tam M. Specimen processing and concentration of chlamydia trachomatis added can influence falsenegative rates in the LCx assay but not in the APTIMA Combo 2 assay when testing inhibitors. J Clin Microbiol 2003;41:778-782.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S1692-7273200500020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. National Chlamydia Laboratory Committee. Inhibition of amplification assays for Chlamydia trachomatis. Association of Public health laboratories; 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S1692-7273200500020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Lisby G, Dessau RB, Andersen CB, Ladefoged S. Polymerase chain reaction as a rapid diagnostic assay for Cytomegalovirus infection in renal transplant patients. APMIS 1994;102:690-694.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S1692-7273200500020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Lorina G, Lilli D, Dicuonzo G, Rivanera D, Filadoro F, Alfani D et al. Cytomegalovirus infection followup in renal transplant patients by the polymerase chain reaction. Transplant Proc 1993;25(3):2280-2281.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S1692-7273200500020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Miller SA, Dykes DD, Polesky HF. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Res 1988;16(3):1215.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S1692-7273200500020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Mahony J, Chong S, Jang D, Luinstra K, Faught M. Urine specimens from pregnant and nonpregnat women inhibitory to amplification of Chlamydia trachomatis nucleic acid by PCR, ligase chain reaction, and transcription-mediated amplification: Identification of urinaly substances associated with inhibition and removal of inhibitory activity. J Clin Microbiol. 1998;36(11):3122-3126.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S1692-7273200500020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Verkooyen R, Luijendijk W, Huisman W, Goessesns J. Detection of PCR inhibitors in cervical specimens by using the amplicor Chlamydia trachomatis assay. J Clin Microbiol 1996;34:3072-3074.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S1692-7273200500020000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Sanchez P, Britt W, Soong SJ, Whitley RJ. National Institute of Allergy and Infectious Diseases Collaborative Antiviral Study Group. Detection of cytomegalovirus (CMV) DNA by polymerase chain reaction is associated with hearing loss in newborns with symptomatic congenital CMV infection involving the central nervous system. J Infect Dis.2005;191(2):227-233.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S1692-7273200500020000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Adler SP. The Molecular epidemiology of Cytomegalovirus transmission among children attending a day care center. J Infect Diseas. 1985;152(4):760-768.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S1692-7273200500020000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Shen CY, Chang BL, Chang SF, Yang SL, Tseng SL, Chen CY et al. Molecular epidemiology of cytomegalovirus infection in kindergarten children. J Med Virol. 1996;48(1):33-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S1692-7273200500020000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Bhatia J, Shah BV, Mehta AP, Deshmukh M, Sirsat RA, Rodrigues C. Comparing serology, antigenemia assay and polymerase chain reaction for the diagnosis of cytomegalovirus infection in renal transplant patients. J Assoc Phys India. 2004;52:297-300.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S1692-7273200500020000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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