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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Los microorganismos solubilizadores de fósforo (MSF): una alternativa biotecnológica para una agricultura sostenible]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This article reviews in detail the biology of phosphate solubilizing microbes in the soil, to serve as a framework for the development of alternatives for the extensive use of phosphate biofertilizers. Different sources of information, primary and secondary, addressing the various aspects of biosolubilization of phosphorus in the soil, giving priority, but not exclusively, to those published in the last fifteen years, were reviewed. A review of the dynamics of soil phosphorus, the taxonomy of phosphorus solubilizing microorganisms, the mechanisms involved in the solubilization and critical analysis of technology from some relevant results of field tests is presented. It is concluded that phosphate solubilization process is a wide dispersion in the soils of the world, whose biological bases are relatively well understood, which can support in the near future the development of efficient and sustainable biotechnologies for phosphorus nutrition.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Este artigo revê em detalhes a biologia de microrganismos solubilizadores de fosfato do solo feitas pela taxonomia e estilo de vida variadas, para servir como um marco para o desenvolvimento da alternativa biofertilizantes fosfato de base biológica. Diferentes fontes de informação, primárias e secundárias, que abordam os diversos aspectos da biosolubilización de fósforo no solo, dando prioridade, mas não exclusivamente, aos publicados nos últimos 15 anos, foram revisados. Uma análise da dinâmica do P no solo, a taxonomia de microrganismos solubilizadores de fósforo, os mecanismos envolvidos na solubilização e análise crítica da tecnologia de alguns resultados relevantes de testes de campo é apresentado. Conclui-se que processo de solubilização de fosfato é uma grande dispersão nos solos do mundo, cujas bases biológicas são relativamente bem entendido, que podem suportar em um futuro próximo o desenvolvimento de biotecnologias culturas fosfato nutrição eficientes e sustentáveis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Los microorganismos solubilizadores de f&oacute;sforo (MSF): una alternativa biotecnol&oacute;gica para una agricultura sostenible</b></font><sup><a href="#num1" name="nu1">1</a></sup></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Phosphate-solubilizing microorganisms (PSM): a biotechnological alternative solution for a sustainable agriculture</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Os microorganismos solubilizadores de f&oacute;sforo (MSF): uma alternativa biotecnol&oacute;gica para uma agricultura sostenible</b></font></p>      <p align="center">Carlos Omar Pati&ntilde;o-Torres<sup>*</sup>, Oscar Eduardo Sanclemente-Reyes<sup>**</sup></p>      <p><sup>*</sup> Doctor en Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia- Sede Palmira. Mag&iacute;ster en Biotecnolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia- Sede Medell&iacute;n. Director Grupo de Investigaci&oacute;n Rizobiom. Profesor asistente Departamento de Suelos y Aguas, Facultad de Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica de la Universidad del Tolima - Ibagu&eacute;, Tolima - Colombia. <a href="mailto:copatinot@ut.edu.co">copatinot@ut.edu.co</a>.    <br>  <sup>**</sup> Doctor en Agroecolog&iacute;a, Mag&iacute;ster en Ciencias Agrarias e Ingeniero Ambiental de la Universidad Nacional de Colombia- Sede Palmira. Director Grupo de Investigaci&oacute;n Producci&oacute;n Sostenible. Docente ocasional de la Escuela de Ciencias Agr&iacute;colas, Pecuarias y del Medio Ambiente, Universidad Nacional Abierta y a Distancia UNAD- Colombia. <a href="mailto:oscar.sanclemente@unad.edu.co">oscar.sanclemente@unad.edu.co</a>.</p>      <p align="center">Fecha de recepci&oacute;n: 05-05-2014. Fecha de aceptaci&oacute;n: 30-06-2014</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>      <p>El presente art&iacute;culo pretende revisar de manera detallada la biolog&iacute;a de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos en el suelo, efectuada por microorganismos de muy variada taxonom&iacute;a y estilo de vida, que sirva como marco te&oacute;rico para el desarrollo de alternativas de biofertilizaci&oacute;n fosf&oacute;rica basadas en bioinsumos. Se revisaron diferentes fuentes de informaci&oacute;n, primarias y secundarias, referidas a los diversos aspectos de la biosolubilizaci&oacute;n de f&oacute;sforo en el suelo, con prioridad, aunque no exclusividad, a las publicadas en los &uacute;ltimos quince a&ntilde;os. Se muestra una revisi&oacute;n de la din&aacute;mica del P en el suelo, la taxonom&iacute;a de los microorganismos solubilizadores de f&oacute;sforo, los mecanismos implicados en la solubilizaci&oacute;n y se hace un an&aacute;lisis cr&iacute;tico de la tecnolog&iacute;a a partir de algunos resultados relevantes de ensayos en campo. Se concluye que la solubilizaci&oacute;n de fosfatos es un proceso de amplia dispersi&oacute;n en los suelos del mundo, cuyas bases biol&oacute;gicas est&aacute;n relativamente bien entendidas, lo que puede apoyar en un futuro inmediato el desarrollo de biotecnolog&iacute;as eficientes y sostenibles para la nutrici&oacute;n fosf&oacute;rica de los cultivos.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave:</b> Solubilizaci&oacute;n de fosfatos, PGPR, biofertilizaci&oacute;n.</p>  <hr>      <p><b>Abstract</b></p>      <p>This article reviews in detail the biology of phosphate solubilizing microbes in the soil, to serve as a framework for the development of alternatives for the extensive use of phosphate biofertilizers. Different sources of information, primary and secondary, addressing the various aspects of biosolubilization of phosphorus in the soil, giving priority, but not exclusively, to those published in the last fifteen years, were reviewed. A review of the dynamics of soil phosphorus, the taxonomy of phosphorus solubilizing microorganisms, the mechanisms involved in the solubilization and critical analysis of technology from some relevant results of field tests is presented. It is concluded that phosphate solubilization process is a wide dispersion in the soils of the world, whose biological bases are relatively well understood, which can support in the near future the development of efficient and sustainable biotechnologies for phosphorus nutrition.</p>      <p><b>Keywords:</b> Phosphate solubilization, PGPR, soil phosphorus, biofertilizers.</p>  <hr>      <p><b>Resumo</b></p>      <p>Este artigo rev&ecirc; em detalhes a biologia de microrganismos solubilizadores de fosfato do solo feitas pela taxonomia e estilo de vida variadas, para servir como um marco para o desenvolvimento da alternativa biofertilizantes fosfato de base biol&oacute;gica. Diferentes fontes de informa&ccedil;&atilde;o, prim&aacute;rias e secund&aacute;rias, que abordam os diversos aspectos da biosolubilizaci&oacute;n de f&oacute;sforo no solo, dando prioridade, mas n&atilde;o exclusivamente, aos publicados nos &uacute;ltimos 15 anos, foram revisados. Uma an&aacute;lise da din&acirc;mica do P no solo, a taxonomia de microrganismos solubilizadores de f&oacute;sforo, os mecanismos envolvidos na solubiliza&ccedil;&atilde;o e an&aacute;lise cr&iacute;tica da tecnologia de alguns resultados relevantes de testes de campo &eacute; apresentado. Conclui-se que processo de solubiliza&ccedil;&atilde;o de fosfato &eacute; uma grande dispers&atilde;o nos solos do mundo, cujas bases biol&oacute;gicas s&atilde;o relativamente bem entendido, que podem suportar em um futuro pr&oacute;ximo o desenvolvimento de biotecnologias culturas fosfato nutri&ccedil;&atilde;o eficientes e sustent&aacute;veis.</p>      <p><b>Palavras-chave:</b> Solubiliza&ccedil;&atilde;o de P, microrganismos solubilizadores de fosfato, fosfato do solo.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p>Uno de los nutrientes m&aacute;s necesarios y, parad&oacute;jicamente, m&aacute;s deficitarios para los cultivos es el f&oacute;sforo (P). A pesar de un relativo alto contenido de P total en la mayor&iacute;a de los suelos, el 98% tienen un inadecuado suplemento de P disponible para la nutrici&oacute;n de los cultivos, condici&oacute;n que induce deficiencias en distinto grado de severidad, con graves repercusiones en los niveles de productividad y rendimiento (Awasthi y otros, 2011). Esta condici&oacute;n de deficiencia es superada normalmente con la aplicaci&oacute;n de fertilizantes fosf&oacute;ricos de s&iacute;ntesis qu&iacute;mica, alternativa que pese a su eficiencia implica enfrentarse a varios problemas: a) altos costos energ&eacute;ticos y econ&oacute;micos, b) muy baja eficiencia (5-30%), c) acumulaci&oacute;n cr&oacute;nica de fosfatos en el ambiente, y d) escasez global de roca fosf&oacute;rica, insumo esencial para la producci&oacute;n de fertilizantes fosf&oacute;ricos.</p>      <p>En estas condiciones, la utilizaci&oacute;n biotecnol&oacute;gica de microorganismos con capacidad para solubilizar las reservas fosf&oacute;ricas del suelo, merece especial atenci&oacute;n por sus m&uacute;ltiples ventajas (Antoun, 2012; Zaidi y otros, 2014). En este documento se analizan la biolog&iacute;a de la capacidad solubilizadora y su relaci&oacute;n con la din&aacute;mica del P del suelo, la distribuci&oacute;n taxon&oacute;mica del fenotipo y se exponen los resultados de algunas experiencias pr&aacute;cticas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>1. La naturaleza y din&aacute;mica del P en el suelo</b></font></p>      <p>El contenido de P en los suelos var&iacute;a entre 200 y 5000 mg Kg<Sup>-1</sup>, con un promedio de 600 mg kg<Sup>-1</sup> (Arai y Sparks, 2007; Sharpley, 2012), incluyendo formas inorg&aacute;nicas (Pi) y formas org&aacute;nicas de P (Po). En la mayor&iacute;a de los suelos el P<Sub>i</Sub> comprende el 50%-70% del P total, aunque la fracci&oacute;n puede variar entre el 10% y el 90%, dependiendo del tipo de suelo. En las rocas primarias y en los suelos j&oacute;venes, el P se encuentra unido principalmente al Ca y Mg, dando al P una solubilidad t&iacute;pica que se estima entre 0.01 y 0.1 mg L<Sup>-1</sup> (Sharpley, 2012), mientras, en los suelos altamente lavados como los del tr&oacute;pico, el P se une principalmente al Fe y Al, formando fosfatos de Fe (Fe-P) y de aluminio (Al-P), de solubilidad mucho m&aacute;s baja que la de los fosfatos de Ca (Ca-P) (Arai y Sparks, 2007; Sharpley, 2012; Tiessen, 2008).</p>      <p>En la soluci&oacute;n del suelo, las formas i&oacute;nicas del P<Sub>i</Sub> son dependientes del pH. A valores de pH entre 4.0 y 6.0, la mayor&iacute;a del P<Sub>i</Sub> est&aacute; presente como ion H<Sub>2</Sub>PO<Sub>4</Sub><Sup>- </Sup>, a pH entre 6.5 y 7.5, el P<Sub>i</Sub> en la soluci&oacute;n del suelo est&aacute; presente principalmente como H<Sub>2</Sub>PO<Sub>4</Sub><Sup>-</Sup> y HPO<Sub>4</Sub><Sup>2-</Sup> mientras, a pH entre 8.0 y 10.0, el ion HPO<Sub>4</Sub><Sup>2-</Sup> es dominante. En suelos altamente &aacute;cidos con pH &le; 3.0, el P est&aacute; presente como H<Sub>3</Sub>PO<Sub>4</Sub>, una forma qu&iacute;mica extremadamente reactiva, por lo que en estos suelos, la fijaci&oacute;n del fosfato es bastante r&aacute;pida, al producirse reacciones de precipitaci&oacute;n que forman Al-P y Fe-P insolubles, no asimilables para las plantas (Arai y Sparks, 2007; Prasad y Power, 1997; Vance y otros, 2003; Pigna y Violante, 2003). Estas reacciones de precipitaci&oacute;n son usualmente las responsables de la muy baja eficiencia de la fertilizaci&oacute;n fosfatada, la cual en casos extremos puede ser de tan solo 5 a 10%.</p>      <p>Por su parte, la contribuci&oacute;n del Po dentro del P total del suelo generalmente es de al menos 30%, aunque ocasionalmente puede alcanzar valores de hasta 80% (Richardson, 2007; McKelvie, 2005).</p>      <p>De manera general, la disponibilidad del P del suelo para la nutrici&oacute;n de las plantas depende de tres procesos principales que afectan la concentraci&oacute;n del P en la soluci&oacute;n del suelo (Pierzynski y otros, 2005): a) disoluci&oacute;n/ precipitaci&oacute;n (equilibrio mineral), b) adsorci&oacute;n/ desorci&oacute;n (interacciones entre el P en soluci&oacute;n y las superficies s&oacute;lidas del suelo) y c) mineralizaci&oacute;n / inmovilizaci&oacute;n (conversiones mediadas biol&oacute;gicamente entre formas org&aacute;nicas e inorg&aacute;nicas del P).</p>      <p>Desde una perspectiva nutricional, el P disponible para las plantas es el fosfato inorg&aacute;nico (P<Sub>i</Sub>) presente en la soluci&oacute;n del suelo como iones ortofosfato, procedentes de la mineralizaci&oacute;n de materiales org&aacute;nicos y la solubilizaci&oacute;n de fuentes minerales (Gojon, 2009), cuya concentraci&oacute;n, como se mencion&oacute;, var&iacute;a en forma considerable temporal y espacialmente (200 - 5000 mg P kg<Sup>-1</sup>) (Arai y Sparks, 2007; Sharpley, 2012; Gojon y otros, 2009; Robinson, 2005).</p>      <p>Como respuesta evolutiva a la baja disponibilidad del P en los suelos, las plantas desarrollaron diferentes estrategias morfol&oacute;gicas, bioqu&iacute;micas y simbi&oacute;ticas adaptativas para incrementar la adquisici&oacute;n del Pi y/o para mejorar la eficiencia de su utilizaci&oacute;n interna (Vance y otros, 2003; Lambers y otros, 2006; Lambers y otros, 2011), siendo una de las m&aacute;s importantes la asociaci&oacute;n de la ra&iacute;z con microorganismos del suelo, capaces de mineralizar y/o solubilizar las fuentes de P org&aacute;nicas e inorg&aacute;nicas, respectivamente.</p>      <p><font size="3"><b>2. Los microorganismos como fuente y dinamizadores del f&oacute;sforo en el suelo</b></font></p>      <p>Los organismos involucrados en las transformaciones del P en el suelo incluyen bacterias, hongos, chromista, protozoos y algunos nematodos (Awasthi y otros, 2011; Oberson y Joner, 2005; B&uuml;nemann y otros, 2011; Jones y Oburger, 2011). En general, los microorganismos del suelo dinamizan el ciclo del P a trav&eacute;s de procesos de mineralizaci&oacute;n, inmovilizaci&oacute;n y solubilizaci&oacute;n, los cuales est&aacute;n relacionados con su metabolismo nutricional.</p>      <p>Debido a que las fuentes org&aacute;nicas no son utilizadas directamente para la nutrici&oacute;n microbiana, &eacute;stas deben primero hidrolizarse por la acci&oacute;n de enzimas fosfatasas, producidas y secretadas al suelo por los microorganismos (Singh y Satyanarayana 2012). La revisi&oacute;n de Nannipieri y otros (2011) analiza exhaustivamente la naturaleza y roles de las fosfatasas en el suelo. Entre los factores que influyen la mineralizaci&oacute;n e inmovilizaci&oacute;n del Po en el suelo se incluyen la naturaleza qu&iacute;mica de la materia org&aacute;nica y su reactividad asociada, la cantidad de Po, la proporci&oacute;n C:P y N:P de los materiales org&aacute;nicos, la temperatura, la humedad, la aireaci&oacute;n, el pH, la intensidad de cultivo y la fertilizaci&oacute;n con P (Condron, 2004; Sims y Vadas, 2005).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Es importante considerar que, adem&aacute;s de mediar varios procesos clave en el ciclo biogeoqu&iacute;mico del P, los microorganismos constituyen en s&iacute; mismos una importante reserva de P en el suelo (Chuang y otros, 2007).</p>      <p><font size="3"><b>3. Solubilizaci&oacute;n de fosfatos en el suelo. Naturaleza y taxonom&iacute;a</b></font></p>      <p>La solubilizaci&oacute;n del P del suelo es el proceso por el cual las reacciones de precipitaci&oacute;n se revierten, liberando P en la soluci&oacute;n del suelo, mediado generalmente por la acci&oacute;n metab&oacute;lica de los microorganismos y las ra&iacute;ces de las plantas. La solubilizaci&oacute;n del P como una capacidad bacteriana se reconoci&oacute; ya hace m&aacute;s de un siglo (Goldstein y Krishnaraj, 2007), y Gerretsen compil&oacute; en una revisi&oacute;n de 1948 (Gerretsen, 1948), lo que se conoc&iacute;a hasta entonces. Durante las d&eacute;cadas siguientes, varios estudios pusieron en evidencia la capacidad solubilizadora de fosfatos de: <i>Erwinia, Pseudomonas, Bacillus, Rhizobium, Klebsiella, Burkholderia, Serratia, Achromobacter, Agrobacterium, Microccocus, Aereo-bacter, Flavobacterium, Enterobacter, Klebsiella, Arthrobacter, Rhodobacter, Pantotea y Klebsiella, entre las bacterias y, Aspergillus, Penicillium, Trichoderma y Fusarium</i> entre los hongos (Awasthi y otros, 2011; Khan y otros, 2007; Sharan y otros, 2008; Khan y otros, 2010; Zaidi y otros, 2009).</p>      <p>Las estimaciones de la microflora del suelo con capacidad para solubilizar fosfatos var&iacute;an ampliamente. Mientras Chabot y otros (1993) estimaron que los MSF representaban entre el 26% y el 46% de la microflora total de un suelo en Quebec, Bouchard (2002) encontr&oacute; que en suelos cultivados con papa esta poblaci&oacute;n podr&iacute;a representar entre del 4% al 30% de la poblaci&oacute;n total. En suelos Mollisoles del Canad&aacute;, Kucey y Legget (1989) hallaron que &eacute;sta proporci&oacute;n era del 0.5% entre poblaciones de bacterias y 0.1% de la poblaci&oacute;n total de hongos. En un Typic Argiudoll, Azziz y otros (2011) encontraron que las poblaciones de bacterias solubilizadoras de fosfato daban cuenta del 0.18% al 13.3% de las bacterias heterotr&oacute;ficas totales, con una media de 3.8%, sin que se evidenciaran diferencias estad&iacute;sticas significativas entre suelos con diversas pr&aacute;cticas de manejo. En cualquier caso, es evidente que la capacidad solubilizadora de fosfatos est&aacute; ampliamente distribuida dentro de la taxonom&iacute;a bacteriana y ed&aacute;fica.</p>      <p><font size="3"><b>4. Mecanismos responsables de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos</b></font></p>      <p>Los mecanismos m&aacute;s ampliamente aceptados como responsables de la solubilizaci&oacute;n microbiana del P mineral son: a) la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, b) la producci&oacute;n de protones (normalmente asociada a la asimilaci&oacute;n de NH<Sub>4</Sub><Sup>+</Sup> y/o a los procesos respiratorios), y c) la producci&oacute;n de &aacute;cidos inorg&aacute;nicos y CO<Sub>2</Sub>.</p>      <p><b>4.1. Solubilizaci&oacute;n de Pi por &aacute;cidos org&aacute;nicos</b></p>      <p>En la mayor&iacute;a de las bacterias se ha demostrado que la capacidad de solubilizaci&oacute;n del Pi est&aacute; estrechamente relacionada con la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, resultantes de la respiraci&oacute;n oxidativa o de procesos fermentativos microbianos. Desde una perspectiva mecanicista, la acci&oacute;n de los &aacute;cidos org&aacute;nicos sobre la solubilizaci&oacute;n del P resulta de tres procesos generales (Antoun, 2012; Chuang y otros, 2007; Paredes Mendoza y Espinoza, 2010; Archana y otros, 2012; Khan y otros, 2014):</p>  <ol type="a">     <li>La disociaci&oacute;n de los &aacute;cidos org&aacute;nicos libera protones que contribuyen a reducir el pH del suelo y favorecen la disoluci&oacute;n de los minerales fosf&oacute;ricos;</li>      <li>las reacciones de quelataci&oacute;n en las cuales los componentes ani&oacute;nicos de los &aacute;cidos org&aacute;nicos se intercambian por el grupo ortofosfato de los fosfatos de Ca<Sup>2+</sup>, Fe<Sup>3+</sup> y Al<Sup>3+</sup>, liber&aacute;ndolo en la soluci&oacute;n del suelo, y;</li>      ]]></body>
<body><![CDATA[<li>el desplazamiento de los fosfatos adsorbidos no espec&iacute;ficamente sobre las part&iacute;culas s&oacute;lidas del suelo, por las componentes ani&oacute;nicas de los &aacute;cidos org&aacute;nicos</li>     </ol>      <p>Varios estudios se&ntilde;alan que en t&eacute;rminos de eficiencia solubilizadora, el n&uacute;mero de grupos carboxilo del &aacute;cidos org&aacute;nicos guarda relaci&oacute;n directa con la capacidad solubilizadora, debido a que un n&uacute;mero mayor de grupos carboxilo significa un mayor poder de quelataci&oacute;n y/o un mayor n&uacute;mero de protones liberados en los procesos de disociaci&oacute;n, en consecuencia, el orden de efectividad solubilizadora es: &aacute;cidos monocarbox&iacute;licos &lt; dicarbox&iacute;licos &lt; tricarbox&iacute;licos.</p>      <p>El &aacute;cido gluc&oacute;nico es uno de los &aacute;cidos org&aacute;nicos reportados con mayor frecuencia en los estudios de solubilizaci&oacute;n y su biolog&iacute;a se conoce con un gran nivel de detalle. Goldstein (1996) propuso la oxidaci&oacute;n directa de la glucosa a &aacute;cido gluc&oacute;nico como uno de los principales mecanismos para la solubilizaci&oacute;n del fosfato mineral en las bacterias Gram negativas, hip&oacute;tesis que ha sido confirmada por muchos estudios posteriores (Miller y otros, 2008; Sashidhar y Podile, 2010).</p>      <p>En algunas bacterias, la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n de la glucosa a &aacute;cido gluc&oacute;nico ocurre por acci&oacute;n de la enzima extracelular glucosa deshidrogenasa (GDH, E.C. 1.1.99.17), la cual requiere invariablemente la pirroloquinolina quinina (PQQ) como coenzima. En este punto, es importante considerar que muchas bacterias del suelo son incapaces de producir el cofactor PQQ.</p>      <p>Otros &aacute;cidos org&aacute;nicos reportados como mediadores del proceso de solubilizaci&oacute;n son: &aacute;cido ox&aacute;lico, c&iacute;trico, but&iacute;rico, mal&oacute;nico, l&aacute;ctico, succ&iacute;nico, m&aacute;lico, gluc&oacute;nico, ac&eacute;tico, glic&oacute;lico, fum&aacute;rico, ad&iacute;pico, indolac&eacute;tico y 2-cetogluc&oacute;nico (Paredes Mendoza y Espinoza, 2010).</p>      <p>Es evidente que la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos est&aacute; fuertemente regulada por la fuente de carbono y nitr&oacute;geno disponibles para la nutrici&oacute;n del microorganismo. Patel y otros (2008) aislaron, a partir de la rizosfera de plantas de ca&ntilde;a de az&uacute;car, un aislado bacteriano de <i>Citrobacter</i> sp., el cual fue capaz de crecer en medio con sucrosa y roca fosf&oacute;rica como fuentes &uacute;nicas de C y P, respectivamente. La bacteria aislada tambi&eacute;n fue capaz de utilizar fructosa como fuente de C. Este az&uacute;car, junto con la sucrosa, no son sustrato de la enzima glucosa deshidrogenasa. Cuando la bacteria creci&oacute; en medio de cultivo que contenia sucrosa o fructosa, el an&aacute;lisis por HPLC de los filtrados demostr&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico. Se detect&oacute;, adem&aacute;s, un bajo nivel de &aacute;cido pir&uacute;vico cuando la bacteria creci&oacute; sobre fructosa. En medio con glucosa o maltosa, s&oacute;lo se revel&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cido gluc&oacute;nico; sin embargo, este &aacute;cido no se evidenci&oacute; en los sobrenadantes de medio con sucrosa o fructosa.</p>      <p>La importancia de este estudio radica en que en condiciones <i>in situ</i>, las plantas exudan a trav&eacute;s de la ra&iacute;z gran cantidad de fuentes de C, entre las que destacan la fructosa y en menor proporci&oacute;n la sucrosa, adem&aacute;s de la glucosa. La versatilidad de algunas cepas de microorganismos para utilizar varias fuentes de C, como <i>Citrobacter</i> sp. cepa DHRSS, hace de estos mejores candidatos para aplicaciones pr&aacute;cticas de biofertilizaci&oacute;n, debido a sus ventajas competitivas en la rizosfera.</p>      <p>Chuang y otros (2007) y experiencias en el laboratorio de uno de los autores, demostraron adem&aacute;s, que la fuente de P insoluble utilizada en el medio de cultivo, determina el tipo de &aacute;cidos org&aacute;nicos producido por el hongo responsable de la solubilizaci&oacute;n. Los investigadores observaron que cuando el P era suministrado como Ca-P, el principal &aacute;cido org&aacute;nico producido era el &aacute;cido gluc&oacute;nico, mientras que cuando el P se suministr&oacute; como Al-P o Fe-P, la mayor producci&oacute;n de &aacute;cido correspondi&oacute; al &aacute;cido ox&aacute;lico y no se detect&oacute; producci&oacute;n del &aacute;cido gluc&oacute;nico. Cuando se adicionaron los &aacute;cidos org&aacute;nicos solos a los medios de cultivo en concentraciones similares a las producidas por el hongo, no se encontr&oacute;, sin embargo, un nivel de solubilizaci&oacute;n similar, sino mucho m&aacute;s bajo que aquel que se obten&iacute;a en presencia del hongo. El estudio de qu&eacute; factores podr&iacute;an estar incrementando la solubilizaci&oacute;n del P bajo la presencia del hongo, demostr&oacute; que en el sobrenadante del cultivo, se presentaban metabolitos con peso molecular mayor a 500 Da, los cuales fueron responsables del 48% y 33% del P solubilizado para los aislados 1B y 6A de <i>A. niger</i>, respectivamente.</p>      <p>Chuang y otros (2007), demostraron que <i>Aspergillus </i>spp. solubiliz&oacute; P insoluble en medio de cultivo, con una reducci&oacute;n concomitante en el valor del pH, sin importar la fuente de Pi usada. Seg&uacute;n los autores, el mayor contenido de protones responsable de la reducci&oacute;n del pH del medio pudo deberse a la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos y/o a la excreci&oacute;n de H<Sup>+</sup> que acompa&ntilde;a a la asimilaci&oacute;n del NH<Sub>4</Sub><Sup>+</Sup> presente en el medio. Se observ&oacute; igualmente que la presencia de NH<Sub>4</Sub><Sup>+</Sup> en lugar de NO<Sub>3</Sub><Sup>-</Sup> en el medio de cultivo, originaba mayor nivel de solubilizaci&oacute;n del AlPO<Sub>4</Sub>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>4.2. Otros mecanismos involucrados en la solubilizaci&oacute;n de P<Sub>i</Sub></b></p>      <p>Se ha demostrado que algunos microorganismos pueden solubilizar fosfatos insolubles, sin producir cualquier tipo de &aacute;cidos org&aacute;nicos En estos casos, se ha propuesto que el mecanismo principal responsable de la solubilizaci&oacute;n es la producci&oacute;n de protones durante la asimilaci&oacute;n del NH<Sub>4</Sub><Sup>+</Sup>, o resultantes de las actividades respiratorias (Mullen, 2005), pues la reducci&oacute;n concomitante del pH de la soluci&oacute;n del suelo favorece la solubilizaci&oacute;n de los fosfatos precipitados.</p>      <p>En otro estudio, Yi y otros (2007) demostraron que la producci&oacute;n de exopolisac&aacute;ridos por los aislados <i>Enterobacter</i> sp. EnHy-401, <i>Arthrobacter</i> sp. ArHy-505 y <i>Azotobacter</i> sp. AzHy-510, confer&iacute;a a estos microorganismos mayor capacidad de solubilizaci&oacute;n de fosfatos insolubles en relaci&oacute;n en la cepa <i>Enterobacter </i>sp. EnHy-402, la cual no produce exopolisac&aacute;ridos.</p>      <p>Otros mecanismos propuestos como responsables de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos insolubles son la producci&oacute;n de &aacute;cidos inorg&aacute;nicos como el &aacute;cido n&iacute;trico y el &aacute;cido sulf&uacute;rico, generados, respectivamente, por las bacterias nitrificantes y <i>Thiobacillus</i> sp., durante la oxidaci&oacute;n de compuestos nitrogenados o del azufre inorg&aacute;nico, los cuales reaccionan con los fosfatos insolubles torn&aacute;ndolos biodisponibles (Yi y otros, 2007).</p>      <p><font size="3"><b>5. Aproximaciones moleculares a la solubilizaci&oacute;n de fosfatos</b></font></p>      <p>Se ha avanzado en forma considerable en la comprensi&oacute;n de los procesos moleculares que subyacen a la solubilizaci&oacute;n de P<Sub>i</Sub>, lo cual ha llevado a la manipulaci&oacute;n gen&eacute;tica del proceso de solubilizaci&oacute;n. En este sentido, la introducci&oacute;n o sobreexpresi&oacute;n de los genes involucrados en la solubilizaci&oacute;n del P del suelo en bacterias nativas de la rizosfera es una aproximaci&oacute;n muy atractiva para mejorar la capacidad de los microorganismos para ser utilizados como inoculantes. La inserci&oacute;n de genes que determinen la capacidad solubilizadora de fosfatos en microorganismos que no la poseen, puede evitar la necesidad de mezclar dos poblaciones microbianas, por ejemplo, cuando se usan como biofertilizantes con capacidad para fijar N2 atmosf&eacute;rico y solubilizadora de P (Rodriguez y otros, 2006). Sin embargo, cabe recordar que muchos de los MPCV combinan naturalmente estas dos habilidades. Los siguientes son algunos ejemplos de avances hechos en la biotecnolog&iacute;a de la solubilizaci&oacute;n de fosfatos.</p>      <p><i>E. coli</i> puede sintetizar glucosa deshidrogenasa (GDH), pero no PQQ, de tal manera que en condiciones naturales no produce &aacute;cido gluc&oacute;nico. Goldstein y Liu (1987) fueron los primeros en clonar un gen involucrado en la solubilizaci&oacute;n del Pi a partir de la bacteria <i>Erwinia herbicola</i>. La incorporaci&oacute;n y expresi&oacute;n de este gen en el genoma de <i>E. coli</i> HB101 permiti&oacute; la producci&oacute;n de &aacute;cido gluc&oacute;nico y le confiri&oacute; habilidad para solubilizar hidroxiapatita.</p>      <p>Igualmente, algunas otras bacterias Gram negativas como <i>Azospirillum</i>, no poseen los genes <i>pqq</i> que les confieran la habilidad para solubilizar fosfatos. Vikram y otros (2007) produjeron transconjugantes en <i>Azospirillum</i> sp., usando el constructo pMCG 898. Este pl&aacute;smido artificial contiene los genes <i>ppq</i> necesarios para la bios&iacute;ntesis del cofactor PQQ, responsable del ensamblaje de la holoenzima glucosa-deshidrogenasa. Al contrario de la cepa nativa, los transconjugantes mostraron actividad solubilizadora de fosfatos <i>in vitro</i>, cuando se utiliz&oacute; fosfato bic&aacute;lcico y fosfato tric&aacute;lcico como fuente de P en el medio de cultivo. Los transconjugantes conservaron intacta su capacidad para fijar N<Sub>2</Sub>, al mismo nivel que la cepa nativa.</p>      <p><font size="3"><b>6. Factores que determinan la eficacia de la bioinoculaci&oacute;n</b></font></p>      <p>Cualquier acci&oacute;n pr&aacute;ctica de biofertilizaci&oacute;n que pretenda ser efectiva debe considerar invariablemente la ecolog&iacute;a de la rizosfera, en la cual se desenvuelven los MSF, pues en condiciones de campo, la efectividad de los inoculantes depende de la capacidad de los aislados para colonizar la rizosfera y mantener en ella una alta actividad.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las caracter&iacute;sticas identificadas como importantes para la competencia de los aislados inoculados en la rizosfera incluyen: motilidad, alta tasa de crecimiento, habilidad para sintetizar amino&aacute;cidos y vitamina B1, habilidad para utilizar &aacute;cidos org&aacute;nicos y ciertas prote&iacute;nas de superficie celular, as&iacute; como r&aacute;pido ajuste a las condiciones cambiantes del ambiente ed&aacute;fico (Marschner, 2007). En relaci&oacute;n con las condiciones del suelo, el pH, salinidad y temperatura, entre otros, especialmente en condiciones de estr&eacute;s, determinan en buena medida la estabilidad y el adecuado desempe&ntilde;o de las bacterias solubilizadoras de fosfato (Sharan y otros, 2008; Marschner, 2007).</p>      <p><font size="3"><b>7. Resultados de experiencias de inoculaci&oacute;n con MSF en laboratorio y campo</b></font></p>      <p>Varios ensayos han demostrado que la inoculaci&oacute;n con hongos y bacterias solubilizadoras de P pueden incrementar el rendimiento o el crecimiento de las plantas en invernadero y campo (Chuang y otros, 2007; Valverde y otros, 2007). Supanjani y otros (2006) y Han y otros (2006) encontraron que la aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus megaterium</i> var. <i>phosphaticum</i> (Bmp) junto con roca fosf&oacute;rica (RF) produjo incrementos en varios par&aacute;metros de crecimiento y rendimiento, en cultivos de aj&iacute; y pepino, en condiciones de invernadero y campo. Cuando en invernadero el sustrato de siembra se inocul&oacute; con la bacteria y se fertiliz&oacute; con RF 3 g kg<Sup>-1</sup>, los contenidos de N, P y K en la materia seca del tallo y la ra&iacute;z del aj&iacute; fueron mayores y significativamente diferentes de los obtenidos por el tratamiento control sin RF ni Bmp. Tambi&eacute;n se obtuvieron incrementos significativos, pero menores a los anteriores, cuando s&oacute;lo se aplic&oacute; Bmp. Si adem&aacute;s de RF y Bmp se inocul&oacute; con bacterias solubilizadoras de K (BSK) y se adicion&oacute; illita (como polvo), el tratamiento increment&oacute; los contenidos de N, P y K en los tallos y en las ra&iacute;ces. Este &uacute;ltimo tratamiento tambi&eacute;n aument&oacute; la fotos&iacute;ntesis foliar en 20% en el aj&iacute; y 16% en las plantas de piment&oacute;n en relaci&oacute;n con el control (Han y otros, 2006).</p>      <p>En el mismo experimento, los ensayos en campo, demostraron tambi&eacute;n un efecto ben&eacute;fico de las MSF. Cuando se aplic&oacute; RF y Bmp como inoculante al suelo en dos a&ntilde;os consecutivos, se obtuvieron en aj&iacute;, incrementos significativos en la biomasa total y rendimiento de fruta. Estos rendimientos no fueron estad&iacute;sticamente diferentes de los logrados con la aplicaci&oacute;n de un fertilizante altamente soluble, los cuales incrementaron las variables entre el 21% y el 35% (Han y otros, 2006). Solas o en combinaci&oacute;n con BSK, RF y polvo de Illita, las Bmp aumentaron adem&aacute;s, la tasa fotosint&eacute;tica, el &aacute;rea foliar y los contenidos de N, P y K en las plantas tratadas.</p>      <p>Otros resultados demuestran adem&aacute;s que con frecuencia, la inoculaci&oacute;n con mezclas de microorganismos de diferentes caracter&iacute;sticas, tales como solubilizadores de P, combinados con diaz&oacute;trofos o con hongos micorr&iacute;cicos arbusculares, arrojan efectos superiores a la inoculaci&oacute;n con &uacute;nicamente el MSF (Valverde y otros, 2007; Babana y Antoun, 2007).</p>      <p>Leaungvutiviroj y otros (2010) hallaron que en invernadero, la inoculaci&oacute;n de ma&iacute;z y br&oacute;coli chino con una mezcla de una cepa solubilizadora de P de <i>Burkholderia unamae</i> + <i>Bacillus subtilis</i> (BSK) + el diaz&oacute;trofo <i>Azotobacter tropicalis</i> + la cepa KJB9, productora de auxinas, gener&oacute; un incremento del peso seco de 4.14 a 8.76 g planta<Sup>-1</sup> en el caso del ma&iacute;z, y de 11.1 a 40.8 g planta<Sup>-1</sup> en el caso del br&oacute;coli. Cuando, adem&aacute;s de la mezcla de los microorganismos se adicion&oacute; RF y polvo de feldespatos, la masa seca aument&oacute; a 10.2 g planta<Sup>-1</sup> en el ma&iacute;z, y 79.9 g planta<Sup>-1</sup> en el caso del br&oacute;coli, un aumento de casi 4 y 7 veces, respectivamente.</p>      <p>En fr&iacute;jol, Collavino y otros (2010) no encontraron efectos sobre el peso de la materia seca de la ra&iacute;z o del tallo, o sobre el tama&ntilde;o del &aacute;rea foliar, cuando <i>Bulkholderia</i> se aplic&oacute; sola o en combinaci&oacute;n con una fuente de f&oacute;sforo. Sin embargo, la relaci&oacute;n de materia seca de la ra&iacute;z/materia seca del tallo present&oacute; un menor valor absoluto, lo que hace presumir que la planta invirti&oacute; menos fotosintatos en desarrollo del sistema radical, dado que hab&iacute;a mayor disponibilidad de nutrientes, especialmente P, en la zona rizosf&eacute;rica.</p>      <p>Valverde y otros (2007) estudiaron el efecto de la inoculaci&oacute;n con <i>Pseudomonas jessenii</i> PS06, bacteria solubilizadora de P, y el diaz&oacute;trofo <i>Mesorhizobium ciceri </i>C-2/2, solos o en combinaci&oacute;n, sobre el crecimiento de garbanzo. En invernadero, la inoculaci&oacute;n con s&oacute;lo C-2/2 produjo la m&aacute;s alta masa seca en la planta (24% mayor al testigo sin inocular) y la inoculaci&oacute;n con PS06 result&oacute; en una masa seca 14% mayor que el testigo no inoculado, aunque no se detect&oacute; correlaci&oacute;n con el contenido de P en los tallos. La coinoculaci&oacute;n con las dos cepas produjo a su vez reducci&oacute;n en la masa seca del garbanzo, en relaci&oacute;n con la inoculaci&oacute;n con &uacute;nicamente C-2/2. En condiciones de campo, las plantas inoculadas con C-2/2 solo o en combinaci&oacute;n, produjeron una mayor masa fresca de los n&oacute;dulos, mayor n&uacute;mero de n&oacute;dulos y m&aacute;s alto contenido de N. Aunque la inoculaci&oacute;n con PS06 no tuvo efecto significativo sobre el crecimiento de las plantas, la co-inoculaci&oacute;n produjo mayor rendimiento en semillas (54% mayor al testigo sin inocular) y mayor masa fresca de los n&oacute;dulos. Los resultados contrastantes de la coinoculaci&oacute;n en invernadero y campo pueden deberse, seg&uacute;n los autores, a diferencias en el sustrato (perlita vs. suelo) de siembra y/o a las condiciones clim&aacute;ticas.</p>      <p>Estudios registrados por Babana y Antoun (2007), demostraron que el uso simult&aacute;neo de hongos vesiculo arbusculares (VAM) y diferentes MSF como inoculantes, produjo respuestas positivas en varios par&aacute;metros agron&oacute;micos evaluados sobre plantas de trigo fertilizadas con roca fosf&oacute;rica. Otros resultados similares han sido informados por Rodr&iacute;guez y Fraga (1999) para el caso de bacterias y por Whitelaw (2000), Khan y otros (2007; 2010) y Sahoo y Gupta (2014) en el caso de hongos solubilizadores de fosfato.</p>      <p>Por &uacute;ltimo, conviene se&ntilde;alar que el potencial de uso de los MSF como alternativas a la fertilizaci&oacute;n tradicional ya ha tenido &eacute;xito comercial en varios casos. En Australia, <i>Penicillium bilaiae </i>y<i> Penicillium radicum </i>se han liberado exitosamente como inoculantes comerciales (Wakelin y otros, 2004) y en Canad&aacute;, <i>Penicillium bilaiae</i>, se comercializ&oacute; bajo la marca JumpStart&reg;. El producto comercial se registr&oacute; para uso en trigo en 1990, a&ntilde;o en el cual s&oacute;lo se utiliz&oacute; en unas pocas hect&aacute;reas. Para el 2002, aproximadamente un mill&oacute;n de hect&aacute;reas sembradas con los principales cultivos de Canad&aacute; utilizaban el biofertilizante (Leggett y otros, 2007). En Cuba, Fosforina&reg; es un bioinoculante a base de <i>Pseudomonas fluorescens</i> aplicado principalmente en tomate (Uribe y otros, 2010). En Colombia, actualmente se comercializa Fosfosol&reg;, cuyo ingrediente activo es P<i>enicillium janthinellum</i>, dirigido especialmente al cultivo del arroz, con incrementos del rendimiento entre el 5% y el 38%, con respecto a cultivos no inoculados (Rojas y Moreno, 2008; Moreno y otros, 2007).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>8. Conclusiones y recomendaciones</b></font></p>      <p>La solubilizaci&oacute;n de los fosfatos no biodisponibles del suelo por diferentes microorganismos es una capacidad natural que por sus caracter&iacute;sticas y ventajas, puede explotarse como una tecnolog&iacute;a alternativa o subsidiaria a la fertilizaci&oacute;n qu&iacute;mica tradicional, dentro del contexto de una agricultura sostenible. El amplio conocimiento de las bases biol&oacute;gicas de la solubilizaci&oacute;n del P alcanzado en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, hace prever una utilizaci&oacute;n m&aacute;s generalizada, debida a los mayores esfuerzos para el mejoramiento de la capacidad a trav&eacute;s de pr&aacute;cticas de mejoramiento tradicional, y tambi&eacute;n por medio de aproximaciones de ingenier&iacute;a gen&eacute;tica.</p>      <p>Aunque en el pa&iacute;s se ha avanzado en algunos estudios b&aacute;sicos y de aplicaci&oacute;n pr&aacute;ctica, es necesario profundizar en los aspectos b&aacute;sicos de distribuci&oacute;n biogeogr&aacute;fica de los taxones, ecolog&iacute;a, gen&eacute;tica y efecto agron&oacute;mico en diferentes cultivos, entre otros, s&oacute;lo as&iacute; se puede suponer un adecuado desarrollo de la tecnolog&iacute;a, que redunde en una mayor competitividad de nuestra producci&oacute;n agr&iacute;cola.</p>      <p><b>Conflicto de intereses:</b> Los autores declaran no tener ning&uacute;n conflicto de intereses.</p>  <hr>      <p><b>Notas</b></p>      <p><sup><a href="#nu1" name="num1">1</a></sup> Art&iacute;culo de revisi&oacute;n asociado al proyecto de investigaci&oacute;n &ldquo;Solubilizaci&oacute;n de fosfatos por poblaciones bacterianas aisladas de un suelo del Valle del Cauca. An&aacute;lisis gen&eacute;tico y de biodiversidad&rdquo;</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Referencias Bibliogr&aacute;ficas</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. ANTOUN, Hani. Beneficial microorganisms for the sustainable use of phosphates in agriculture. In: Procedia Engineering, 2012, vol. 46, p. 62 - 67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S1900-3803201400020001800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. ARAI, Yuji and SPARKS, Donald. Phosphate reaction dynamics in soils and soil components: a multiscale approach. In: Advances in Agronomy, 2007, vol. 94, p. 135-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S1900-3803201400020001800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. ARCHANA, Gayatri; BUCH, A. and KUMAR, Naresh. Pivotal Role of Organic Acid Secretion by Rhizobacteria in Plant Growth Promotion. In: Microorganisms in Sustainable Agriculture and Biotechnology, 2012. p. 35-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S1900-3803201400020001800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. AWASTHI, Rashmi; TEWARI, R. and NAYYAR, Harsh. Synergy between plants and P-solubilizing microbes in soils: effects on growth and physiology of crops. In: International Research Journal of Microbiology, 2011, vol. 2, no. 12, p. 484-503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1900-3803201400020001800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>5. AZZIZ, Gaston; BAJSA, Natalia; HAGHJOU, Tandis; TAUL&Eacute;, Cecilia, VALVERDE, &Aacute;ngel and IGUAL, Jos&eacute; Mariano. Abundance, diversity and prospecting of culturable phosphate solubilizing bacteria on soils under crop-pasture rotations in a no-tillage regime in Uruguay. In: Appl. Soil Ecol., 2012, vol. 61, p. 320-326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1900-3803201400020001800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <p>6. BABANA, A. H. and ANTOUN, Hani. 2007. Effect of Tilemsi phosphate rock-solubilizing microorganisms on phosphorus uptake and yield of field-grown wheat (Triticum aestivum L.) in Mali. In: First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization. Springer, 2007. p. 51-58.</p>      <p>7. BOUCHARD, Daniel. Influence des propri&eacute;t&eacute;s physico-chimiques et biochimiques du sol sur la pr&eacute;sence des microorganismes dissolvant le phosphore inorganique. M&eacute;moire de maitrise, Universit&eacute; Laval, 2002. p. 109.</p>      <p>8. B&Uuml;NEMANN, Else; PRUSISZ, Bartlomiej and EHLERS, Knut. 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<body><![CDATA[<p>9. CHABOT, Rock; ANTOUN, Hani and CESCAS, Michael. Stimulation de la croissance du ma&iuml;s et de la laitue romaine par des microorganismes dissolvant le phosphore inorganique. In: Can. J. Microbiol., 1993, vol. 39. p. 941-947.</p>      <p>10. CHUANG, Chun Chao, KUO, Yu Lin; CHAO, Chen Ching and CHAO, Wei Liang. Solubilization of inorganic phosphates and plant growth promotion by Aspergillus niger. In: Biol. Fert. Soils, 2007, vol. 43. p. 575-584.</p>      <p>11. COLLAVINO, M&oacute;nica; SANSBERRO, Pedro; MROGINSKI, Luis and AGUILAR, Mario. Comparison of in vitro solubilization activity of diverse phosphate-solubilizing bacteria native to acid soil and their ability to promote Phaseolus vulgaris growth. In: Biology and Fertility of Soils, 2010, vol. 46, no. 7. p. 727-738.</p>      <p>12. CONDRON, Leo. Phosphorus - surplus and deficiency. In: Managing Soil Quality: Challenges in Modern Agriculture: CAB International, 2004. p. 69-84.</p>      <p>13. GERRETSEN, F. C. The influence of microorganisms on the phosphate intake by the plant. In: Plant Soil, 1948, vol. 1. p. 51-81.</p>      <p>14. GOJON, Alain; NACRY, Philippe and DAVIDIAN, Jean Claude. Root uptake regulation: a central process for NPS homeostasis in plants. In: Current Opinion in Plant Sciences, 2009, vol. 12. p. 328-338.</p>      <p>15. GOLDSTEIN, Alan. Involvement of the quinoprotein glucose dehydrogenase in the solubilization of exogenous phosphates by Gram-negative bacteria. In: Phosphate in Microorganisms: Cellular and Molecular Biology. ASM Press, Washington, DC, 1996. p. 197-203.</p>      <p>16. GOLDSTEIN, Alan and KRISHNARAJ, P. Phosphate solubilizing microorganisms vs. phosphate mobilizing microorganisms: what separates a phenotype from a trait? In: First International meeting on microbial phosphate solubilization: Springer, Dordrecht, 2007, p. 203-213.</p>      <p>17. GOLDSTEIN, Alan and LIU, S. Molecular cloning and regulation of a mineral phosphate solubilizing (mps) gene from Erwinia herbicola. In: Bio/technology, 1987, vol. 5. p. 72-74.</p>      <p>18. HAN, Hyo-Shim; SUPANJANI, S and LEE, Kyung. Effect of co-inoculation with phosphate and potassium solubilizing bacteria on mineral uptake and growth of pepper and cucumber. In: Plant Soil Environ, 2006, vol. 52, no. 3. p. 130-136.</p>      ]]></body>
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